QUANTA Lite h-ttg/dgp Screen Do diagnostyki in vitro Złożoność CLIA: Wysoka

Transkrypt

1 QUANTA Lite h-ttg/dgp Screen Do diagnostyki in vitro Złożoność CLIA: Wysoka Przeznaczenie Test badania przesiewowego QUANTA Lite TM h-ttg/dgp jest testem immunoabsorpcji enzymatycznej (ELISA) do półilościowego wykrywania przeciwciał IgA i IgG syntetycznych, deamidowanych peptydów gliadyny (DGP) oraz ludzkiej transglutaminazy tkankowej (h-ttg) w ludzkiej surowicy. Obecność przeciwciał gliadyny może być wykorzystywana w połączeniu z objawami klinicznymi i innymi badaniami laboratoryjnymi w celu pomocy w diagnostyce celiakii z wystarczającym lub niewystarczającym poziomem IgA. Podsumowanie i wyjaśnienie testu Celiakia lub enteropatia związana z nadwrażliwością na gluten to choroba przewlekła, której główne cechy obejmują stan zapalny i charakterystyczne histologiczne spłaszczenie błony śluzowej przewodu pokarmowego, którego skutkiem jest zespół złego wchłaniania. Dokładna etiologia choroby pozostaje nieznana, ale gliadyna lub rozpuszczalna w alkoholu frakcja glutenu pszennego jest zdecydowanie czynnikiem toksycznym. 1 Pierwotnie do diagnozowania celiakii i powiązanych zaburzeń stosowano serię biopsji jelitowych. Ostatnio zasugerowano wykonywanie badań serologicznych jako badań przesiewowych wykonywanych u pacjentów z podejrzeniem enteropatii wrażliwej na gluten, jak również do monitorowania przestrzegania diety. 2-5 Europejskie Towarzystwo Gastroenterologii Pediatrycznej (European Society of Pediatric Gastroenterology and Nutrition (ESPGAN)) w celu zmniejszenia liczby biopsji jelita potrzebnych do postawienia rozpoznania zaleciło stosowanie markerów serologicznych, takich jak gliadyna, jak również przeciwciał przeciwko retikulinie (białko tkanki łącznej układu chłonnego) i śródmięsnej (endomysium). 6 Niedawne prace ujawniły, że reaktywne przeciwciała gliadyny pacjentów z celiakią wiążą bardzo ograniczoną liczbę swoistych epitopów na cząsteczce gliadyny. 7,8 Te same badania ujawniły później, że selektywna deamidacja gliadyny przez enzym związany z celiakią (transglutaminaza tkankowa) powoduje silniejsze wiązanie przez przeciwciała przeciw-gliadynowe. Na podstawie powyższych obserwacji wykazano, że testy wykorzystujące deamidowane i określone peptydy mają wyższą dokładność diagnostyczną celiakii niż 9, 10, 11 standardowe testy przeciw-gliadynowe i ttg. U pacjentów z enteropatią związaną z nadwrażliwością na gluten wykrywano zarówno przeciwciała IgA oraz IgG gliadyny. 2,3 Strategia czułych badań przesiewowych w populacji wysokiego ryzyka obejmuje badanie przeciwciał IgG i IgA, ponieważ u znacznej części pacjentów z celiakią występuje niedobór przeciwciał IgA. 12 Przeciwciała IgA gliadyny są interesujące ze względu na przebieg choroby w czasie oraz monitorowanie przestrzegania diety bezglutenowej. 5 Antygen śródmięsnej został zidentyfikowany jako enzym sieciujący białka, znany jako transglutaminaza tkankowa (ttg). 13,14 Badania ELISA pod kątem antygenów obejmujące ttg stanowią rzetelną i obiektywną metodę wobec tradycyjnych immunofluorescencyjnych badań obejmujących cienkie skrawki przełyku naczelnych jako substrat Badanie ELISA może być przystosowane do dużych jak i małych ilości próbek pacjentów. W ciągu ostatnich dwóch lat przy użyciu techniki rekombinacji wytworzono antygen ludzkiego ttg. Rekombinowany antygen ludzki może mieć pewne zalety w stosunku do bardziej tradycyjnego antygenu wątroby świnki morskiej. 15,16,18 Dwoma kolejnymi innowacjami w zakresie serologii celiakii jest użycie pierwotnej ludzkiej transglutaminazy tkankowej wyizolowanej z krwinek czerwonych oraz użycie testów umożliwiających wykrywanie transglutaminazy tkankowej klasy IgG. Użycie pierwotnych ludzkich czerwonych krwinek ttg zamiast krwinek świnki morskiej lub rekombinowanego antygenu ludzkiego zapewnia korzyści związane z ułatwieniem oczyszczania oraz umożliwia uzyskanie preparatów pozbawionych bakterii, insektów oraz innych zanieczyszczających białek Badania ELISA ludzkiego antygenu ttg, które są przedstawiane w literaturze cieszą się dobrą opinią w porównaniu z bardziej tradycyjnymi testami bazującymi na antygenie 15, 16, świnki morskiej. Zestaw przeciwciał gliadyny klasy IgG jest już używany od jakiegoś czasu, przede wszystkim w celu zapewnienia pomocy w badaniu osób z niedoborem IgA. Liczne przeprowadzone badania wykazały zdatność kliniczną wykrywania przeciwciał klasy IgG wobec ttg. 16,18,19 W jednym z badań wrażliwość testu została zwiększona z 91,5 dla przeciwciał IgA do 98,5% przy rozpatrywaniu wyników IgA i IgG. 16 Badanie przesiewowe QUANTA Lite h-ttg/dgp jest czułym i swoistym badaniem na obecność celiakii. Umożliwia ono jednoczesne wykrywanie przeciwciał IgA i IgG przeciw selektywnie deamidowanym syntetycznym peptydom oraz h-ttg oraz umożliwia wykrywanie celiakii nawet z jednoczesnym niedoborem IgA. Zasada badania Oczyszczone syntetyczne deamidowane peptydy gliadyny (DGP lub gliadyna II) oraz pierwotna ludzka transglutaminaza tkankowa (h-ttg) są wiązane z dołkami polistyrenowej płytki z mikrodołkami w warunkach, które pozwalają na zachowanie antygenu w stanie natywnym. Wstępnie rozcieńczone kontrole oraz surowice pacjentów są dodawane do oddzielnych dołków, umożliwiając związanie wszelkich występujących przeciwciał peptydu gliadyny oraz/lub IgG i h-ttg IgA z unieruchomionym antygenem. Niezwiązana próbka jest wypłukiwana i do każdego dołka dodawany jest koniugat znakowanego enzymem koniugatu przeciwciał przeciw-ludzkich IgA i IgG. Druga inkubacja umożliwia przeciwciałom przeciw-ludzkim IgA i IgG znakowanych enzymem związanie się z dowolnymi przeciwciałami pacjenta, które zostały przytwierdzone do mikrodołków. Po wypłukaniu wszelkich niezwiązanych przeciwciał przeciw-ludzkich IgA i IgG znakowanych enzymem, aktywność pozostałego enzymu bada się dodając substrat chromogeniczny i mierząc intensywność powstałej barwy. Badanie może zostać ocenione spektrofotometrycznie, poprzez zmierzenie i porównanie intensywności barwy, która powstaje w dołkach z próbkami od pacjenta z barwą dołków kontrolnych. 1

2 Odczynniki 1. Polistyrenowa płytka z mikrodołkami ELISA pokryta oczyszczonym antygenem peptydów gliadyny i h-ttg (12-1 x 8 dołków), z uchwytem w torebce foliowej zawierającej osuszacze 2. Kontrola negatywna testu ELISA, 1 fiolka buforu zawierająca środek konserwujący i surowicę ludzką bez przeciwciał ludzkiego IgA lub IgA przeciwko peptydom gliadyny lub h-ttg, wstępnie rozcieńczona, gotowa do użycia, 1,2 ml 3. Słabo pozytywne badanie przesiewowe ELISA h-ttg/dgp, 1 fiolka buforu zawierającego środek konserwujący oraz przeciwciała IgA i IgG surowicy ludzkiej przeciwko peptydom gliadyny oraz/lub h- ttg, wstępnie rozcieńczona, gotowa do użycia, 1,2 ml 4. Silnie pozytywne badanie przesiewowe ELISA h-ttg/dgp, 1 fiolka buforu zawierającego środek konserwujący oraz przeciwciała IgA i IgG surowicy ludzkiej przeciwko peptydom gliadyny oraz/lub h- ttg, wstępnie rozcieńczona, gotowa do użycia, 1,2 ml 5. Rozcieńczalnik do próbek HRP, 1 fiolka zabarwienie różowe, zawiera sól fizjologiczną buforowaną TRIS, Tween 20, stabilizatory białka i konserwant, 50 ml 6. Koncentrat do płukania HRP, 1 fiolka koncentratu 40x zabarwienie czerwone, zawiera sól fizjologiczną buforowaną TRIS i Tween 20, 25 ml. Instrukcje dotyczące rozcieńczania można znaleźć w sekcji Metody. 7. Koniugat HRP h-ttg/dgp IgG/IgA badania (kozi), przeciwciała przeciw-ludzkie IgG i IgA, 1 fiolka bezbarwny, zawiera bufor, stabilizatory białka i konserwant, 10 ml 8. Chromogen TMB, 1 fiolka zawierająca stabilizatory, 10 ml 9. Roztwór zatrzymujący HRP, kwas siarkowy 0.344M, 1 fiolka bezbarwny, 10 ml Ostrzeżenia 1. OSTRZEŻENIE: Ten produkt zawiera substancję chemiczną (chloramfenikol 0,02%) w rozcieńczalniku do próbek, kontrolach i koniugacie, która według stanu Kalifornii wywołuje raka. 2. Wszystkie materiały pochodzenia ludzkiego używane w przygotowywaniu kontroli dla tego produktu zostały przetestowane i na podstawie metod zatwierdzonych przez FDA stwierdzono że nie zawierają przeciwciał przeciwko HIV, HBsAg i HCV. Jednak żadna metoda testowania nie może całkowicie zagwarantować braku obecności HIV, HBV, HCV lub innych czynników zakaźnych. Z tego powodu słabo pozytywna kontrola testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp, wysoko pozytywna kontrola testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp i kontrola negatywna testu ELISA powinny być przeprowadzane w taki sam sposób jak materiał potencjalnie zakaźny Jako konserwant stosowany jest azydek sodu. Azydek sodu jest trucizną i może być toksyczny w przypadku połknięcia lub wchłonięcia przez skórę lub oczy. Azydek sodu może wchodzić w reakcję z ołowianą lub miedzianą instalacją wodociągową, tworząc potencjalnie wybuchowe azydki metali. Jeśli do usuwania odczynników używane są zlewy, należy przepłukiwać je dużą ilością wody, aby nie dopuścić do gromadzenia się azydku. 4. Koniugat HRP zawiera rozcieńczoną trującą/korozyjną substancję chemiczną, która może być toksyczna w przypadku spożycia w dużej ilości. Aby uniknąć potencjalnych oparzeń chemicznych, należy unikać kontaktu ze skórą i oczami. 5. Chromogen TMB zawiera środek drażniący, w który może być szkodliwy w przypadku wdychania, spożycia lub wchłonięcia przez skórę. Aby uniknąć urazów, należy unikać wdychania, spożycia lub kontaktu ze skórą i oczami. 6. Roztwór zatrzymujący HRP składa się z rozcieńczonego roztworu kwasu siarkowego. Unikać wystawienia na działanie zasad, metali lub innych związków, które mogą wchodzić w reakcje z kwasami. Kwas siarkowy jest trucizną i ma właściwości korozyjne. W razie połknięcia może być toksyczny. Aby uniknąć oparzeń chemicznych, należy unikać kontaktu ze skórą i oczami. 7. Podczas pracy z dostarczonymi odczynnikami należy stosować odpowiednie środki ochrony osobistej. 8. Rozlane odczynniki należy natychmiast usunąć. Należy przestrzegać wszystkich krajowych i lokalnych przepisów w zakresie utylizacji odpadów. Środki ostrożności 1. Ten produkt jest przeznaczonych do zastosowań diagnostycznych in vitro. 2. Zastąpienie składników dostarczonych w tym systemie innymi składnikami może skutkować osiągnięciem niespójnych wyników. 3. Niepełne lub nieprawidłowe płukanie i niewystarczające usunięcie płynu z płytek z dołkami ELISA wpłynie negatywnie na precyzję badań i/lub spowoduje wysoki poziom tła. 4. Dostosowanie tego badania do stosowania ze zautomatyzowanymi analizatorami próbek oraz innymi urządzeniami do pracy z płynami, w całości lub w części, może skutkować rozbieżnością wyników w stosunku do badań przeprowadzanych ręcznie. Obowiązkiem każdego laboratorium jest potwierdzenie, że wyniki testów uzyskanych na podstawie zautomatyzowanych badań mieszczą się w akceptowalnych limitach. 5. Na wyniki analizy wpływa wiele różnych czynników. Obejmują one temperaturę początkową odczynników, temperaturę otoczenia, dokładność i powtarzalność techniki pipetowania, dokładność płukania i usuwania płynu z dołków płytek ELISA, fotometr użyty do analizy wyników oraz czasy trwania inkubacji podczas badania. Uzyskanie dokładnych i powtarzalnych wyników wymaga staranności i precyzji. 6. Zalecane jest ścisłe przestrzeganie procedury testowej. 7. Niedokładne zamknięcie torebki z zamknięciem strunowym, zawierającej płytki z mikrodołkami i osuszaczami, spowoduje degradację antygenu i brak precyzji badania. 8. Dwukrotne lub wielokrotne użycie koniugatu HRP z jednej butelki w pewnym okresie czasu może spowodować niedopuszczalnie niski poziom absorbancji. Aby nie dopuścić do takiej sytuacji istotne jest przestrzeganie wszystkich zaleceń dotyczących procedur pracy z koniugatem HRP. 2

3 9. Zanieczyszczenie chemiczne koniugatu HRP może być spowodowane nieprawidłowym czyszczeniem lub płukaniem sprzętu lub narzędzi. Pozostałości typowych laboratoryjnych substancji chemicznych, takich jak formalina, substancja wybielająca, etanol lub detergent, z czasem spowoduje degradację koniugatu HRP. Po użyciu chemicznych substancji czyszczących/dezynfekujących dokładnie wypłukać cały sprzęt i wszystkie narzędzia. Warunki przechowywania 1. Wszystkie odczynniki z zestawu przechowywać w temperaturze 2 8 C. Nie zamrażać. Odczynniki są trwałe do daty ważności, pod warunkiem, że są przechowywane i używane zgodnie z instrukcjami. 2. Nieużyte płytki z mikrodołkami pokrytymi antygenem powinny być starannie zamknięte w torebce foliowej z osuszaczami i przechowywane w temperaturze 2 8 C. 3. Rozcieńczony bufor do płukania zachowuje trwałość przez 1 tydzień w temperaturze 2 8 C. Pobieranie próbek Ta procedura powinna być wykonana z próbką surowicy. Dodanie azydku lub innych konserwantów do próbek analitycznych może mieć negatywny wpływ na wyniki. Nie używać próbek zawierających widoczne zanieczyszczenia, skażonych bakteryjnie lub podgrzanych. Należy unikać całkowicie zhemolizowanej lub lipemicznej surowicy albo próbek. Po pobraniu surowica powinna być oddzielona od skrzepu. Dokument CLSI (NCCLS) H18-A3 zaleca następujące warunki przechowywania próbek: 1) Przechowywać próbki w temperaturze pokojowej nie dłużej niż 8 godzin. 2) Jeśli badanie nie zostanie zakończone w ciągu 8 godzin, schłodzić próbkę do temperatury 2-8 C. 3) Jeśli badanie nie zostanie ukończone w ciągu 48 godzin lub w przypadku transportu próbki, należy zamrozić ją w temperaturze -20 C lub niższej. Zamrożone próbki po rozmrożeniu i przed badaniem muszą zostać dobrze wymieszane. 24 Badanie Dostarczone materiały 1 Płytka z mikrodołkami testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp (12-1 x 8 dołków), z uchwytem 1 1,2 ml wstępnie rozcieńczona kontrola negatywna ELISA 1 1,2 ml wstępnie rozcieńczonej słabo pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp 1 1,2 ml wstępnie rozcieńczonej silnie pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp 1 50 ml rozcieńczalnika do próbek HRP 1 25 ml koncentratu do płukania HRP, koncentrat 40x 1 10 ml HRP h-ttg/dgp IgG/IgA, (koziego), przeciw-ludzkie IgG i IgA 1 10 ml chromogenu TMB 1 10 ml roztworu zatrzymującego HRP, kwas siarkowy 0,344M Wymagane materiały nie dołączone do zestawu Mikropipety na 5, 100, i 500 µl Jednorazowe końcówki mikropipet Probówki do roztworów próbek pochodzących od pacjenta, 4 ml objętości Woda destylowana lub dejonizowana Naczynie o objętości 1 l do rozcieńczonego koncentratu HRP do płukania Czytnik płytek z mikrodołkami umożliwiający pomiar gęstości optycznej przy 450 nm (i przy 620 nm dla odczytów przy dwóch długościach fali) Sposób przygotowania Przed rozpoczęciem 1. Doprowadzić wszystkie odczynniki i próbki do temperatury pokojowej (20-26 o C) i dobrze wymieszać. 2. Rozcieńczyć koncentrat do płukania HRP w stosunku 1:40, dodając zawartość butelki koncentratu do płukania HRP do 975 ml wody destylowanej lub dejonizowanej. Jeśli cała płytka nie zostanie przetworzona w tym czasie, można przygotować mniejszą ilość. W tym celu należy dodać 2,0 ml koncentratu do 78 ml wody destylowanej lub dejonizowanej na każde 16 dołków, które będą użyte. Rozcieńczony bufor zachowuje trwałość przez 1 tydzień w temperaturze 2 8 o C. 3. Przygotować roztwór 1:101 każdej próbki pobranej od pacjenta, dodając 5 µl próbki do 500 µl rozcieńczalnika do próbek HRP. Rozcieńczone próbki muszą być użyte w ciągu 8 godzin od przygotowania. NIE ROZCIEŃCZAĆ słabo pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp, silnie pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp i kontroli negatywnej testu ELISA. 4. Oznaczenie obecności lub braku przeciwciał IgA i/lub IgG h-ttg/dgp z wykorzystaniem jednostek dowolnych wymaga dwóch dołków dla każdej z trzech kontroli lub jednego bądź dwóch dołków dla każdej próbki pacjenta. Zalecane jest wykonanie duplikatów próbek. Procedura badania 1. WSZYSTKIE ODCZYNNIKI PRZED ROZPOCZĘCIEM BADANIA MUSZĄ BYĆ DOPROWADZONE DO TEMPERATURY POKOJOWEJ (20 26 C). Umieścić wymaganą liczbę mikrodołków/pasków w uchwycie. Natychmiast umieścić nieużywane płytki w torebce foliowej zawierającej osuszacz i dobrze ją zamknąć, aby ograniczyć kontakt z parą wodną. 3

4 2. Dodać do dołków 100 µl wstępnie rozcieńczonej słabo pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp, wysoko pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h- ttg/dgp, kontroli negatywnej testu ELISA oraz rozcieńczonych próbek pacjenta. Przykryć dołki i inkubować przez 30 minut w temperaturze pokojowej na równej powierzchni. Czas inkubacji rozpoczyna się po dodaniu ostatniej próbki. 3. Etap płukania: Odessać całkowicie zawartość każdego dołka. Wlać µl rozcieńczonego buforu HRP do płukania do wszystkich dołków, a następnie go odessać. Powtórzyć tę sekwencję jeszcze dwukrotnie, aby łącznie przeprowadzić trzy płukania. Odwrócić płytkę i postukać w nią na materiale pochłaniającym w celu usunięcia pozostałości płynu po ostatnim płukaniu. Ważne jest, aby całkowicie opróżnić każdy dołek po każdym etapie płukania. Zachować tę samą sekwencję odsysania, jak w przypadku dodawania próbki. 4. Do każdego dołka dodać 100 μl koniugatu HRP h-ttg IgG/IgA. Koniugat powinien być usunięty z butelek z zastosowaniem standardowych warunków aseptycznych oraz zalecanych technik laboratoryjnych. Pobrać z butelki jedynie wymaganą do analizy ilość koniugatu. ABY UNIKNĄĆ POTENCJALNEGO ZANIECZYSZCZENIA BAKTERYJNEGO I/LUB CHEMICZNEGO, NIE WOLNO Z POWROTEM WLEWAĆ NIEUŻYTEGO KONIUGATU DO BUTELKI. Inkubować dołki przez 30 minut jak w etapie Etap płukania: Powtórzyć etap Dodać 100 µl chromogenu TMB do każdego dołka i inkubować w ciemności przez 30 minut w temperaturze pokojowej. 7. do każdego dołka dodać 100 µl roztworu zatrzymującego HRP. Zachować tę samą sekwencję i czas dodawania roztworu zatrzymującego HRP, jak w przypadku chromogenu TMB. Delikatnie postukać płytkę palcem, aby dokładnie wymieszać zawartość dołków. 8. Odczytać absorbancję (gęstość optyczną) każdego dołka przy długości fali 450 nm w ciągu jednej godziny od zatrzymania reakcji. Jeśli wymagane są pomiary bichromatyczne, referencyjną długością fali może być długość 620 nm. Kontrola jakości 1. Z każdą serią próbek należy oznaczać słabo pozytywną kontrolę testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp, wysoko pozytywną kontrolą testu ELISA badania przesiewowego h- ttg/dgp i kontrolą negatywną testu ELISA, aby upewnić się, że wszystkie odczynniki i procedury są prawidłowe. 2. Należy zwrócić uwagę, że słabo pozytywna kontrola testu ELISA badania przesiewowego h- ttg/dgp, wysoko pozytywna kontrola testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp oraz kontrola negatywna testu ELISA są wstępnie rozcieńczone i dlatego nie kontrolują one metod proceduralnych związanych z rozcieńczaniem próbek. 3. Dodatkowe kontrole mogą być przebadane zgodnie z wytycznymi lub wymaganiami lokalnych i/lub krajowych przepisów lub organów normalizacyjnych. Dodatkowe odpowiednie surowice kontrolne można przygotować, dzieląc połączone próbki surowicy ludzkiej i przechowując je w temperaturze < -20 C. 4. Aby wyniki badania mogły być uznane jako ważne, muszą zostać spełnione wszystkie poniższe kryteria. Jeśli jakiekolwiek kryterium nie będzie spełnione, badanie powinno być traktowane jako nieważne i powinno zostać powtórzone. a. Absorbancja wstępnie rozcieńczonej silnie pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp musi być wyższa od absorbancji wstępnie rozcieńczonej słabo pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp, która musi być wyższa od absorbancji wstępnie rozcieńczonej kontroli negatywnej testu ELISA. b. Wstępnie rozcieńczona silnie pozytywna kontrola testu ELISA badania przesiewowego h- ttg/dgp musi mieć absorbancję wyższą niż 1,0, natomiast absorbancja wstępnie rozcieńczonej kontroli negatywnej nie może przekraczać 0,2. c. Absorbancja słabo pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp musi być przynajmniej dwukrotnie wyższa od kontroli negatywnej testu ELISA lub przekraczać 0,25. d. Kontrola negatywna testu ELISA oraz wysoko pozytywna kontrola testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp mają monitorować występowanie poważnych nieprawidłowości związanych z odczynnikami. Wysoko pozytywna kontrola testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp nie zapewni precyzji na poziomie wartości granicznej testu. e. Dodatkowe wytyczne dotyczące odpowiednich praktyk QA można znaleźć w dokumencie CLSI (NCCLS) C24-A3. 25 Obliczanie wyników W pierwszej kolejności jest określana średnia gęstość optyczna każdego zestawu duplikatów. Reaktywność dla każdej próbki można następnie obliczyć dzieląc średnią gęstość optyczną próbki przez średnią gęstość optyczną słabo pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp. Wynik jest mnożony przez liczbę jednostek przypisanych do słabo pozytywnej kontroli testu ELISA badania przesiewowego h- ttg/dgp występującej na etykiecie. Gęstość optyczna próbki słabo pozytywnego testu ELISA badania Wartość próbki = x przesiewowego h-ttg/dgp (jednostki) Gęstość optyczna słabo pozytywnego testu (jednostki) ELISA badania przesiewowego h-ttg/dgp 4

5 Reaktywność w sposób nieliniowy zależy od ilości obecnych przeciwciał. Wzrosty i spadki stężeń przeciwciał u pacjenta będą odzwierciedlone w analogicznym wzroście lub spadku reaktywności, jednak zmiana ta nie jest proporcjonalna (tzn. podwojenie stężenia przeciwciał nie oznacza podwojenia reaktywności). Jeśli wymagane jest dokładniejsze oszacowanie ilości przeciwciał pacjenta, należy przeprowadzić badanie seryjnych rozcieńczeń próbek pochodzących od pacjenta i ostatnie rozcieńczenie w ramach badania z wynikiem pozytywnym powinno być zaraportowane jako miano przeciwciał pacjenta. Interpretacja wyników Każde laboratorium powinno ustalić własny normalny zakres na podstawie własnych technik, kontroli, sprzętu i populacji pacjentów, zgodnie z własnymi ustalonymi procedurami. Próbka następnie może być sklasyfikowana jako negatywna lub pozytywna, zgodnie z poniższą tabelą. Jednostki Negatywna <20 Pozytywne >20 1. Wynik pozytywny wskazuje na obecność przeciwciał IgA i/lub IgG h-ttg i/lub peptydu gliadyny i sugeruje możliwość występowania określonych enteropatii wrażliwości na gluten, takich jak celiakia. 2. Wynik negatywny wskazuje brak przeciwciał IgA lub IgG ttg i/lub peptydu gliadyny lub ich poziom poniżej wartości granicznej testu. 3. Zalecane jest, aby wyniki raportowane przez laboratorium zawierały oświadczenie: Następujące wyniki uzyskano za pomocą testu INOVA QUANTA Lite badania przesiewowego h-ttg/dgp. Wartości peptydu gliadyny i ttg IgG/IgA uzyskane przy użyciu metod testowania różnych producentów nie mogą być stosowane zamiennie. Rząd wielkości poziomów raportowanego przeciwciała nie może być skorelowany z mianem punktu końcowego. Ograniczenia badania 1. Wynik negatywny u nieleczonego pacjenta nie wyklucza całkowicie enteropatii wrażliwości na gluten. 2. U pacjentów leczonych, u których znana jest ekspresja IgA, poziomy przeciwciał IgA gliadyny stanowią lepszy wskaźnik przestrzegania diety niż stężenia przeciwciał IgG gliadyny Możliwe są wyniki fałszywie pozytywne (wysokie poziomy przeciwciał bez charakterystycznych wyników histologicznych). Mogą być przeprowadzone inne specyficzne testy serologiczne na celiakię, takie jak śródmięśniowy peptyd gliadyny (EMA) w celu potwierdzenia pozytywnych wyników. Mogą być również mierzone poziomy surowicy IgA w celu sprawdzenia niedoboru IgA. 4. Pozytywne wyniki mogą wystąpić nawet, jeśli poszczególne badania na h-ttg i II gliadyny są negatywne. W związku z tym, że to badanie przesiewowe wykrywa przeciwciała IgG i IgA przeciw h- ttg oraz gliadynie II, może wystąpić dodatni efekt na skutek wielu wysoko negatywnych wyników w przypadku wielu poszczególnych badań. 5. W związku z tym, że w tym zestawie używany jest połączony koniugat, który jednocześnie wykrywa przeciwciała IgA i IgG, nie można ustalić, czy pozytywny wynik jest spowodowany IgG, IgA, czy też oboma przeciwciałami. Jeśli wymagane jest indywidualne oznaczanie i określenie swoistych przeciwciał IgA lub IgG, należy użyć oddzielnych zestawów przeciwciał IgA i IgG do h-ttg i gliadyny II. Wartości oddzielnej jednostki IgG gliadyny i IgA gliadyny nie odpowiadają wartościom jednostek uzyskanych w ramach badać h-ttg/dgp, ponieważ używany jest mieszany koniugat IgG i IgA. 6. Wyniki tych badań należy używać razem z wynikami klinicznymi. 7. Do tego badania muszą być użyte próbki surowicy. Spodziewane wartości Normalny zakres 496 losowych bezobjawowych, zdrowych osób mieszkających na terenie USA poddano badaniom pod kątem przeciwciał h-ttg/dgp. Wśród nich 299 dawców mieściło się w zakresie wieku od 14 do 78 lat i grupa obejmowała 150 mężczyzn i 149 kobiet. Siedem próbek (1,4%) wypadło powyżej 20-jednostkowej wartości granicznej. 5 próbek było pozytywnych i miało wartość 20,2, 22,1, 23,4, 29,2 i 36,5 jednostki. Dwa inne pozytywne badania miały 46,1 i 39,0 jednostek i zostały sklasyfikowane jako prawdziwa celiakia, ponieważ wyniki h-ttg IgA wynosiły odpowiednio 57,2 i 72,4. Wartość średnia 496 próbek wyniosła 6,2 jednostki. Standardowe odchylenie próbek wyniosło 3,8 jednostki. Średnia wartość to trzy odchylenia standardowe poniżej wartości granicznej 20 jednostek. Specyficzna charakterystyka wyników Porównanie z urządzeniami predykatowymi 99 próbek z 3 referencyjnych laboratoriów celiakii zostało przebadanych wewnętrznie za pomocą badań przesiewowych h-ttg/dgp ELISA QUANTA Lite Celiac DGP Screen, QUANTA Lite h-ttg IgA, QUANTA Lite h-ttg IgG oraz QUANTA Lite. Te wyniki oraz 496 normalnych przedstawiono poniżej. Próbka została potraktowana jako pozytywna przez urządzenia predykatowe, jeśli występował pozytywny wynik w jednym z 3 urządzeń predykatowych (wynik nie musiał być pozytywny w przypadku wszystkich trzech urządzeń). Próbka została potraktowana jako negatywna przez urządzenia predykatowe, jeśli występował negatywny wynik we wszystkich trzech urządzeniach predykatowych. 5

6 N = 595 Badanie przesiewowe h-ttg/dgp Badanie przesiewowe DGP oraz/lub h-ttg na celiakię Pozytywn Negatywny a Pozytywna 48 4* Negatywny 7** 536 Procentowa zgodność wyników pozytywnych: 48/55 (87,3%), przedział ufności 95%: od 75,5% do 94,7% Procentowa zgodność wyników negatywnych 536/540 (99,3%), przedział ufności 95%: od 98,1% do 99,8% Ogólna zgodność: 584/595 (98,2%), przedział ufności 95%: od 96,7% do 99,1% *Z 4 próbek sklasyfikowanych jako pozytywne w ramach badania przesiewowego h-ttg/dgp, ale sklasyfikowanych jako negatywne w ramach obu badań DGP i h-ttg na celiakię, 3 pochodziły z normalnego badania. Czwarty pacjent był chory na celiakię na diecie bezglutenowej, 22,1 jednostki. **Z siedmiu próbek negatywnych w zestawie badania przesiewowego h-ttg/dgp, ale pozytywnych z dowolnym z zestawów DGP na celiakię lub h-ttg, 5 pochodziło ze zwykłego badania. Z pozostałych, jeden był pacjentem chorym na celiakię na diecie bezglutenowej, 21,5 jednostki na IgA h-ttg. Inna próbka bała krewnego pierwszego stopnia, 20,2 jednostki w przypadku badania przesiewowego DGP na celiakię. Badania kliniczne Próbki określone klinicznie jako pochodzące od pacjentów z nieleczoną celiakią (139 to pacjenci pediatryczni z celiakią), od pacjentów z celiakią z niedoborem IgA, od pacjentów z celiakią utajoną, od pacjentów z celiakią odporną na leczenie, od pacjentów z celiakią będących na diecie bezglutenowej, krewnych pierwszego stopnia pacjentów z celiakią, kontroli z niedoborem IgA oraz pacjentów nie cierpiących na celiakię badano w wewnętrznych oraz zewnętrznych badaniach klinicznych z użyciem badania przesiewowego h-ttg/dgp QUANTA Lite. Poniżej podano podsumowanie dla określonych klinicznie próbek i próbek z zakresu normalnego przedstawionych powyżej. Grupa pacjentów Liczba Pozytywne h-ttg/dgp % Celiakia nieleczona (pediatryczne) 185 (139) 183 (139) 99% (100%) Niedobór przeciwciał IgA w celiakii % Celiakia, utajona 11 10* 91% Celiakia, oporna na leczenie 9 8** 89% Celiakia, na diecie bezglutenowej % Krewni 1. stopnia % Kontrole choroby % Ludzie zdrowi *** 2,2% *8 z 11 przypadków celiakii utajonej to były pozytywne ttg IgA, a 9 pozytywne EMA **Żaden z tych 9 przypadków celiakii opornej na leczenie nie był pozytywny EMA i jedynie 2 (22%) były pozytywne ttg ***Przynajmniej 2 z 20 pozytywnych zostały stwierdzone jako pozytywne przy pojedynczych testach ELISA h-ttg i DGP oraz również pozytywne dla ttg przy użyciu fazy płynnej RIA. Wyniki badania przesiewowego ELISA h-ttg/dgp diagnoza celiakii: QUANTA LITE h-ttg/dgp Przesiewowe Diagnoza* Pozytywne (celiakia nieleczona, pediatryczne, Negatywny (krewni 1. stopnia, kontrole Łącznie niedobór IgA, utajona i oporna na leczenie) chorych i kontrole zdrowych) Pozytywna Negatywny Łącznie *Nie obejmuje 120 pacjentów z celiakią na diecie bezglutenowej. Wrażliwość: 98,6% (207/210), przedział ufności 95%: od 95,9% do 99,7% Swoistość: 97,0% (978/1008); przedział ufności 95% (CI): od 95,8% do 98,0% Czułość całkowita czułość w przypadku celiakii jest obliczana przez zgrupowanie wyników dla wszystkich pacjentów celiakii oprócz tych, którzy obecnie już są na diecie bezglutenowej. Całkowita liczba chorych na celiakię wynosi 210, z czego 207 lub 98,6% ma wyniki pozytywne. Swoistość swoistość może być obliczona przez zgrupowanie wyników 914 normalnych pacjentów, 76 kontroli choroby oraz 18 krewnych pierwszego stopnia. Ta grupa liczy łącznie 1008 próbek. Z nich tylko 30 próbek było pozytywnych, dając swoistość wynoszącą 97,0%. 6

7 Reaktywność krzyżowa W celu oceny potencjalnych problemów związanych z reaktywnością krzyżową z innymi autoprzeciwciałami, za pomocą zestawu QUANTA Lite badania przesiewowego h-ttg/dgp oznaczono szereg próbek o wysokim mianie autoprzeciwciał. Ogółem, przeprowadzono badania dla 83 próbek. Wiele próbek stanowiło wysoko pozytywną kontrolę z innych zestawów testowych autoprzeciwciał INOVA QUANTA Lite. Swoistości obejmowały aktynę (4), chromatynę (7), dsdna (4), M2 (4), MPO (5), centromer (7), CCP3 (5), GBM (9), Ribo P (4), RF IgG (4), SS-B (4), RNP (4), Scl-70 (4), Jo-1 (4), Sm (4), SS-A (6) i TPO (4). Średnia wartość dla tych 83 próbek wyniosła 4,51 jednostek. Wszystkie próbki były negatywne w teście QUANTA Lite badania przesiewowego h-ttg/dgp. Średnia wartość wynosi 4,4 standardowych odchyleń poniżej 20- jednostkowej wartości granicznej. Precyzja w ramach laboratorium Wydajność w obrębie badania dla testu ELISA QUANTA Lite badania przesiewowego h-ttg/dgp oceniano, testując 12 próbek po 5 razy każdą. Ten test był przeprowadzony przez pojedynczego operatora w INOVA Diagnostics przy użyci jednej partii zestawu.wyniki przedstawiono poniżej. Wyniki w obrębie badania testu ELISA QUANTA Lite badania przesiewowego h-ttg/dgp Jednostki średnie SD CV % Zmienność pomiędzy badaniami oceniono przeprowadzając badanie zdublowane panelu 12 próbek dwa razy dziennie (rano i popołudniu) przez 3 dni. Ten test był przeprowadzony przez pojedynczego operatora w INOVA Diagnostics przy użyci jednej partii zestawu. Podsumowanie tych wyników przedstawiono poniżej. Wyniki pomiędzy badaniami testu ELISA QUANTA Lite badania przesiewowego h-ttg/dgp A B C D E F G H I J K L Jednostki średnie SD CV% Zmienność pomiędzy seriami Sprawdzanie zmienności pomiędzy serami zostało przeprowadzone w INOVA Diagnostics przez trzech różnych operatorów przy użyciu trzech różnych serii zestawów w ciągu trzech różnych dni. Podsumowanie tych wyników przedstawiono poniżej. Jednostki Próbka Seria 1 Seria 2 Seria 3 średnie Std. odchyl. CV % Wysoka pozytywna kontrola Pozytywne Pozytywne Pozytywne Pozytywne Pozytywne Pozytywne Pozytywne Pozytywne Pusty odczynnik Negatywna kontrola Negatywne Negatywne Negatywne Negatywne

8 Piśmiennictwo 1. Trier JS: Celiac Sprue. New England Journal of Medicine 325: , Troncone R and Ferguson A: Antigliadin antibodies. J Pediatr Gastroenterol Nutr 12: , McMillan SA, Haughton DJ, et al.: Predictive value for celiac disease of antibodies to gliadin, endomysium and jejunum in patients attending for jejunal biopsy. BMJ 303: , Lindh E, Ljunghall S, et al.: Screening for antibodies against gliadin in patients with osteoporosis. Journal of Internal Medicine 241: , Burgin-Wolff A, Gaze H, et al.: Antigliadin and antiendomysium antibody determination for celiac disease. Arch Dis Child 66: , Working Group of European Society of Paediatric Gastroenterology and Nutrition. Revised criteria for diagnosis of celiac disease. Arch Dis Child 65: , Osman AA, et al.: B-Cell epitopes of gliadin. Clin Exp Immunol 121: , Aleanzi M, et al.: Celiac disease: Antibody recognition against native and selectively deamidated gliadin peptides. Clinical Chemistry 47: , Schwertz E, et al.: Serologic assay based on gliadin-related nonapeptides as a highly sensitive and specific diagnostic aid in celiac disease. Clinical Chemistry 50: , Prince HE: Evaluations of the INOVA Diagnostics Enzyme-Linked Immunosorbent Assay Kits for Measuring Serum Immunoglobulins G (IgG) and IgA to Deamidated Gliadin Peptides. Clinical and Vaccine Immunology 13: , Sugai E, et al.: Accuracy of Testing Antibodies to Synthetic Gliadin-Related Peptides in Celiac Disease. Clinical Gastroenterology and Hepatology 4: , Collin P, et al.: Selective IgA deficiency and celiac disease. Scand Journal Gastroenterology 27: , Dieterich W, Ehnis T, Bauer M, et al.: Identification of tissue transglutaminase as the autoantigen of celiac disease. Nature Medicine 3: , Sollid LM, Molberg O, McAdam S, Lundin K, et al.: Autoantibodies in celiac disease: tissue transglutaminase guilt by association? Gut 41: , Sardy M, et al.: Recombinant human tissue transglutaminase ELISA for the diagnosis of gluten-sensitive enteropathy. Clin Chem 45: 2142, Sblattero D, et al.: Human recombinant tissue transglutaminase ELISA : an innovative diagnostic assay for celiac disease. Am J Gastroenterology 95: 1253, Sugai E, et al.: Tissue transglutaminase antibodies in celiac disease: assessment of a commercial kit. Am J Gastro 95: , Lampasona V, et al.: Tissue transglutaminase and combined screening for celiac disease and type 1 diabetes-associated autoantibodies. Lancet 352: , Hansson T, et al.: Antibody reactivity against human and guinea pig tissue transglutaminase in children with celiac disease. J Pediatric Gastroenterology and Nutrition 30: 379, Andersson AS, et al.: Inhibition of endomysial staining with human tissue transglutaminase. Ninth International Symposium on Celiac Disease. J Pediatric Gastroenterology and Nutrition 31: S16, Axiö-Frekricksson UB, et al.: Differences in human and guinea pig tissue transglutaminase. Ninth International Symposium on Celiac Disease. J Pediatric Gastroenterology and Nutrition 31: S16, Signorini M, et al.: Human erythrocyte transglutaminase: Purification and preliminary characterization. Biological Chemistry 369: 275, Biosafety in Microbiological and Biomedical Laboratories. Centers for Disease Control and Prevention/National Institutes of Health, Fifth Edition, CLSI (NCCLS). Procedures for the Handling and Processing of Blood Specimens; Approved Guidline-Third Edition. CLSI Document H18-A3, Vol 24(38), CLSI (NCCLS). Statistical Quality Control for Quantitative Measurement Procedures: Principles and Definitions; Approved Guideline- 3rd edition NCCLS Document C24-A3, Vol. 26(25), QUANTA Lite jest zastrzeżonym znakiem handlowym firmy INOVA Diagnostics, Inc. Copyright Wszelkie prawa zastrzeżone Wyprodukowano przez: POL Luty 2011 Wersja 0 INOVA Diagnostics, Inc Old Grove Road San Diego, CA Stany Zjednoczone Ameryki Pomoc techniczna (tylko na terenie Stanów Zjednoczonych i Kanady): Pomoc techniczna (poza terenem Stanów Zjednoczonych): support@inovadx.com Autoryzowani przedstawiciele na terenie Unii Europejskiej: Medical Technology Promedt Consulting GmbH Altenhofstrasse 80 D St. Ingbert, Niemcy Tel.: Faks.: