DEZINTEGRACJA ULTRADŹWIĘKOWA

Podobne dokumenty
Wydział Chemiczny Politechniki Gdańskiej Katedra Technologii Leków i Biochemii. Biologia Komórki - laboratorium PORÓWNANIE METOD DEZINTEGRACJI KOMÓREK

Homogenizacja. Instrukcja do ćwiczeń opracowana w Katedrze Chemii Środowiska Uniwersytetu Łódzkiego.

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

ĆWICZENIE 5 MECHANIZMY PROMUJĄCE WZROST ROŚLIN

Novabeads Food DNA Kit

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

POLITECHNIKA ŁÓDZKA INSTRUKCJA Z LABORATORIUM W ZAKŁADZIE BIOFIZYKI. Ćwiczenie 3 ANALIZA TRANSPORTU SUBSTANCJI NISKOCZĄSTECZKOWYCH PRZEZ

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona

Odczynnik do izolacji RNA z tkanek zwierzęcych, roślinnych oraz linii komórkowych

fix RNA Roztwór do przechowywania i ochrony przed degradacją próbek przeznaczonych do izolacji RNA kat. nr. E0280 Sierpień 2018

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Instrukcje do ćwiczeń oraz zakres materiału realizowanego na wykładach z przedmiotu Inżynieria bioprocesowa na kierunku biotechnologia

Spis treści. Aparatura

GRAWITACYJNE ZAGĘSZCZANIE OSADÓW

Deproteinizacja jako niezbędny etap przygotowania próbek biologicznych

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

ALGALTOXKIT F Procedura testu

Uniwersalny zestaw do izolacji DNA (GeDI)

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

E.coli Transformer Kit

Genomic Maxi AX zestaw do izolacji genomowego DNA wersja 0616

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Genomic Midi AX. 20 izolacji

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

6. Wykorzystanie tyrozynazy otrzymywanej z pieczarki dwuzarodnikowej (Agaricus Bisporus) do produkcji L-DOPA

ĆWICZENIE NR 3 BADANIE MIKROBIOLOGICZNEGO UTLENIENIA AMONIAKU DO AZOTYNÓW ZA POMOCĄ BAKTERII NITROSOMONAS sp.

Genomic Mini AX Bacteria+ Spin

Izolowanie DNA i RNA z komórek hodowlanych. Ocena jakości uzyskanego materiału

Dezintegracja osadów planowane wdrożenia i oczekiwane efekty

Zestaw przeznaczony jest do całkowitej izolacji RNA z bakterii, drożdży, hodowli komórkowych, tkanek oraz krwi świeżej (nie mrożonej).

Genomic Maxi AX Direct

Biologia Molekularna ĆWICZENIE I PREPARATYKA RNA

data ĆWICZENIE 7 DYSTRYBUCJA TKANKOWA AMIDOHYDROLAZ

Budowa tkanki korzeni buraków cukrowych

Syngen Fungi DNA Mini Kit

PathogenFree DNA Isolation Kit Zestaw do izolacji DNA Instrukcja użytkownika

StayRNA bufor zabezpieczający RNA przed degradacją wersja 0215

AmpliTest Babesia spp. (PCR)

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

Saccharomyces Transformer Kit zestaw do przygotowywania i transformacji komórek kompetentnych Saccharomyces cerevisiae. Metoda chemiczna.

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA Farmacja 2016

Wyznaczanie krzywej progresji reakcji i obliczenie szybkości początkowej reakcji katalizowanej przez β-fruktofuranozydazy

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Technika radioimmunologicznego oznaczania poziomu hormonów (RIA) dr Katarzyna Knapczyk-Stwora

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

E.coli Transformer Zestaw do przygotowywania i transformacji komórek kompetentnych Escherichia coli

bi ~ Zestaw dydal<tyczny umożliwiający przeprowadzenie izolacji genomowego DNA z bakterii EasyLation Genomie DNA INSTRUI<CJA DLA STUDENTÓW

ODWADNIANIE OSADÓW PRZY POMOCY WIRÓWKI SEDYMENTACYJNEJ

Zestaw do izolacji totalnego DNA z bakterii. Nr kat. EM02 Wersja zestawu:

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

Sposób otrzymywania białek o właściwościach immunoregulatorowych. Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania fragmentów witellogeniny.

Co ma wspólnego ludzka dwunastnica z proszkiem do. prania?

data ĆWICZENIE 6 IZOLACJA BIAŁEK I ANALIZA WPŁYWU WYBRANYCH CZYNNIKÓW NA BIAŁKA Doświadczenie 1

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Zestaw do izolacji genomowego DNA z bakterii

K1. KONDUKTOMETRYCZNE MIARECZKOWANIE STRĄCENIOWE I KOMPLEKSOMETRYCZNE

Zakład Biologii Molekularnej, Wydział Farmaceutyczny, WUM.

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Zakład Biologii Molekularnej, Wydział Farmaceutyczny, WUM.

Techniki molekularne ćw. 1 1 z 6

Zestaw do izolacji plazmidowego DNA

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

C 6 H 12 O 6 2 C 2 O 5 OH + 2 CO 2 H = -84 kj/mol

Wrocław, 17/12/2012 Strona 1/7 RAPORT Z BADAŃ

Genomic Mini AX Milk Spin

Badanie termostabilności oraz wpływu aktywatorów i inhibitorów na działanie α-amylazy [EC ]

Zestaw do izolacji genomowego DNA z drożdży

Zestaw do izolacji plazmidowego DNA. Nr kat. EM01 Wersja zestawu:

Genomic Mini AX Plant Spin

AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR)

Separacja komórek w gradiencie gęstości PRAKTIKUM Z BIOLOGII KOMÓRKI (BT 231)

AmpliTest Salmonella spp. (Real Time PCR)

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

ODWADNIANIE OSADÓW PRZY POMOCY WIRÓWKI SEDYMENTACYJNEJ

ZAKRES TREŚCI: 1. budowa chemiczna organizmów 3. lokalizacja DNA w komórce 2. budowa i funkcjonowanie komórki 4. budowa i właściwości DNA.

K02 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Ćwiczenie 1. Izolacja genomowego DNA różnymi metodami

Zestaw o zwiększonej wydajności do izolacji plazmidów niskoi wysokokopijnych. Procedura z precypitacją DNA. wersja 0217

Utylizacja osadów ściekowych

Polimeraza Taq (1U/ l) 1-2 U 1 polimeraza Taq jako ostatni składniki mieszaniny końcowa objętość

Zestaw do izolacji totalnego DNA z drożdży

UWAGA NA WRZĄCY OLEJ!!!!

Zestaw do izolacji genomowego DNA z drożdży

data ĆWICZENIE 12 BIOCHEMIA MOCZU Doświadczenie 1

POLITECHNIKA GDAŃSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

ROZPORZĄDZENIA. (4) Środki przewidziane w niniejszym rozporządzeniu są zgodne z opinią Komitetu ds. Wspólnej Organizacji Rynków Rolnych, Artykuł 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Transkrypt:

DEZINTEGRACJA ULTRADŹWIĘKOWA Ćwiczenie nr 4 Dezintegracja ultradźwiękowa Cel ćwiczenia: Celem ćwiczenia jest zbadanie wpływu ultradźwięków na komórki bakterii Bacillus substilis Wstęp Metody dezintegracji drobnoustrojów. Dezintegracja- rozkład lub dekompozycja jednolitej nierozłącznej struktury; Dezintegracja komórek-proces powodujący utratę lub osłabienie integralności komórek; Utrata albo osłabienie spójności ściany komórkowej lub błony komórkowej, oddzielającej komórki od środowiska zewnętrznego, powoduje uwolnienie ich zawartości. Dezintegracja komórek służy pozyskaniu z komórek pożądanego materiału (Rysunek 1.). Pożądanym materiałem mogą być organella komórkowe enzymy czy też inne związki chemiczne. Wybór metody (techniki oraz procedury) dezintegracji komórek zależy od dalszego wykorzystania wyizolowanego z komórki materiału. Niekiedy krytyczną właściwością decydującą o przydatności wyizolowanego z komórki materiału jest zachowanie przez niego aktywności enzymatycznej(natywnej struktury). Wydajność i efektywność procesu dezintegracji zależy zaś od wykorzystanego urządzenia, doboru parametrów jego działania, akcesoriów a także kontroli środowiska reakcji. Rysunek 1. Schemat przedstawiający najpopularniejsze metody dezintegracji. Na postawie grafiki Garland Publishing, 1996. 1. Wpływ ultradźwięków na organizmy żywe Wpływ ultradźwięków na organizmy żywe jest różny w zależności od ich natężenia - wiązka o małym natężeniu pobudza rozmnażanie komórek i wzrost, przy dużym natężeniu fali ultradźwiękowej

organizmu obumierają (mają na to wpływ zarówno kawitacja ja i depolimeryzacja łańcuchów białkowych). Odpowiednio określone natężenie wiązki pozwala zniszczyć drobnoustroje chorobotwórcze np. pałeczki duru brzusznego, streptokoki, enterokoki. Wiązka ultradźwiękowa o odpowiedniej długości fali i częstotliwości potrafi również likwidować nasiona grzybków pleśni i drożdży. 2) Izolacja białek z komórki Aby wyizolować białka otrzymane np. w systemach nadekspresji w komórkach drobnoustrojów potrzebne są odpowiednie metody, które pozwolą na uzyskanie tego białka i jednoczesne zachowaniu jego własności np. aktywności enzymatycznej, struktury itp. Ściana komórkowa, którą posiadają pleśnie, drożdże, jak i komórki roślinne jest odporna na lizę komórkową, co utrudnia izolację białek i innych składników komórkowych. Izolacja białek z komórki składa się z następujących etapów: przemycia masy komórkowej (np. z pozostałości pożywki) liza komórek (w celu uwolnienia frakcji cytozolowej oddzielenie frakcji komórkowych od siebie. Do rozdziału tych frakcji używa się najczęściej metod sedymentacyjnych. Ekstrakt komórkowy otrzymany po lizie nazywamy homogenatem. Po oddzieleniu składników nierozpuszczalnych otrzymuje się nadsącz (surowy ekstrakt) i osad zawierający frakcję błon. Nadsącz może być dalej oczyszczany a zawarte w nim białka rozdzielane np. na kolumnach chromatograficznych czy kolumnach powinowactwa. Wyróżniamy następujące sposoby dezintegracji różnych rodzajów komórek i tkanek: 1) Sonifikacja Jest to metoda używana do dezintegracji komórek bakteryjnych np. Escherichia coli, Bacillus subtilis, Klebsiella pneumoniae i inne. W metodzie tej wykorzystuje się fale kawitacji (wibracje) wywoływane w roztworze przez ultradźwięki, które mechanicznie uszkadzają ścianę komórkową. Poziom wibracji musi być taki aby nie powodować tworzenia się piany ponieważ wywołuje to natlenienie roztworu co z kolei może prowadzić do denaturacji białek. Sonifikator składa się z sondy i układu elektronicznego kontrolującego poziom ultradźwięków. Metoda ta wymaga spełnienia określonych warunków, po pierwsze ilość komórek, która podlega sonifikacji nie może przekroczyć ok 1g na cykl. Drugi z nich to temperatura: w czasie sonifikacji konieczne jest chłodzenie zawiesiny komórek np. przez zanurzenie naczynia w mieszaninie woda-lód. 2) Prasa French'a (French Pressure Celi) Metoda ta polega na poddaniu zawiesiny komórek wysokiemu ciśnieniu, po czym gwałtownym uwolnieniu do ciśnienia atmosferycznego w specjalnym typie prasy. Zmiana ciśnienia doprowadza do rozpadu komórek. Metoda ta pozwala na dezintegrację z wysoką wydajnością zawiesin komórek o objętości do 30 ml, ale staje się technicznie trudna dla mniejszych objętości i zbyt czasochłonna dla objętości większych.

3) Rozcieranie Ucieranie hodowli bakteryjnych z substancjami ściernymi używane jest do rozbijania komórek organizmów jednokomórkowych. Używane materiały i sprzęt to: moździerz, piasek lub obojętny tlenek glinu. Metoda pozwala na dezintegrację masy komórek do ok. 30 g na cykl. 4) Wytrząsanie z kulkami szklanymi Jest to ulepszona metoda ucierania. Mechaniczne uszkadzanie ściany komórkowej powodują małe kulki szklane, które wytrząsane są w zawiesinie komórek. Metoda ta używana jest głównie w przypadku drożdży. Prowadzi się ją w naczyniach laboratoryjnych, w małej skali (ok. 1 g masy komórek) np. probówkach, przy dużych objętościach zawiesiny komórek wymaga użycia specjalnej aparatury. 5) Trawienie enzymatyczne. Polega na degradacji składników ściany komórkowej i otrzymaniu komórek pozbawionych ściany komórkowej, które łatwo poddać lizie np. przez szok osmotyczny. W przypadku bakterii używa się lizozymu trawiącego bakteryjne peptydoglikany. 6) Liza detergentami. Metoda ta często jest używana do dezintegracji komórek utrzymywanych w hodowli tkankowej. Jest bardzo zachowawcza, jeśli chodzi o własności izolowanych białek jeśli tylko stężenie detergentu użytego do lizy komórek jest niewysokie. Najczęściej używane detergenty to: Triton X-100, NP-40, dodecylan sodowy, siarczan sarkozylu, deoksycholan sodowy i inne. 7) Liza rozpuszczalnikami organicznymi Metoda ta używana jest do rozbijania komórek bakterii, choć ograniczona głównie do lizy komórek na sączkach, które mają być następnie inkubowane z przeciwciałami lub sondami DNA. 8) Zamrażanie/rozmrażanie Wzrost objętości zamarzającej w cytoplazmie wody oraz powstające kryształy lodu powodują uszkadzanie ściany i błony komórkowej oraz organelli komórkowych. Metodę stosuje się podczas izolacji odpornych na denaturację białek ponieważ zamarzanie powoduję częściową utratę wody hydratacyjnej białek co prowadzi do zmian ich własności. Ograniczeniem jest konieczność ochrony białek przed działaniem uwolnionych, głównie z lizosomów, enzymów proteolitycznych 9) Szok osmotyczny Komórki są wrażliwe na szok osmotyczny gdy przetrzymywane są w roztworach hipotonicznych ( o ciśnieniu osmotycznym mniejszym niż w cytoplazmie). Metoda ta ma zastosowanie do lizy czerwonych komórek krwi i komórek pozbawionych ściany komórkowej np. protoplastów bakterii.

DEZINTEGRACJA ULTRADŹWIĘKOWA Wykonanie ćwiczenia: Materiały: zawiesina bakterii roztwór C odczynnik Folina-Ciocalteu'a rozcieńczony 1:1 Sprzęt: dezintegrator ultradźwiękowy spektrofotometr wirówka waga pipety, probówki probówki wirówkowe zlewki statyw do probówek Dezintegracja materiału biologicznego 1. Ustawić 6 probówek wirówkowych na statywie 2. Dodać po 5ml zawiesiny bakteryjnej do każdej 3. Jedną probówkę zostawić na statywie ( bez ultradźwięków), będzie to próbka kontrolna- ilość białka w zerowym czasie dezintegracji 4. Pozostałe 5 probówek poddawać działaniu ultradźwięków przez czas 5, 10, 20, 30, 60min. 5. Po dezintegracji, próbki należy zwirować przy 3000RPM przez czas 5 min (probówki przed wirowaniem należy zrównoważyć) 6. Po zwirowaniu przenieść supernatant do zlewek, oznaczonych odpowiednio 1-6 plastikową pipetą pasterowską 7. Do oznaczenia białka należy pobrać po 2ml każdego supernatantu ze zlewki do probówek szklanych ( 6 probówek szklanych z supernatantem + jedna w wodą destylowaną do kontroli odczynnikowej) 8. Dodać 5ml roztworu C 9. Próbki inkubować przez czas 10 min w temperaturze pokojowej 10. Następnie dodać 0,5ml odczynnika Folina-Ciocalteu'a i zworteksować 11. Pozostawić na 30 min w temperaturze pokojowej od czasu do czasu mieszając 12. Po tym czasie zmierzyć absorbancję przy długości fali 750nm wobec próby kontrolnej 13. Z krzywej wzorcowej, otrzymanej na zajęciach, odczytać zawartość białka Sprawozdanie Na podstawie uzyskanych wyników doświadczenia wykonać wykres zmian ilości białka w zależności od czasu dezintegracji materiału biologicznego oraz opisać wpływ ultradźwięków na komórki.