Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

Podobne dokumenty
wiczenie - Oznaczanie stenia magnezu w surowicy krwi metod kolorymetryczn

Oznaczanie kwasu moczowego kolorymetryczn metod enzymatyczn z urykaz i peroksydaz

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

Krew należy poddać hemolizie, która zachodzi pod wpływem izotonicznego odczynnika Drabkina.

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

data ĆWICZENIE 7 DYSTRYBUCJA TKANKOWA AMIDOHYDROLAZ

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

data ĆWICZENIE 12 BIOCHEMIA MOCZU Doświadczenie 1

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

WŁASNOŚCI SPEKTRALNE NUKLEOTYDÓW PIRYDYNOWYCH (NAD +, NADP + ) OZNACZANIE AKTYWNOŚCI TRANSAMINAZY ALANINOWEJ

ANALIZA INSTRUMENTALNA

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

OZNACZANIE STĘŻENIA GLUKOZY WE KRWI METODĄ ENZYMATYCZNĄ-OXY

3. Badanie kinetyki enzymów

Próba kontrolna (PK) 1000 l 1000 l

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Oznaczanie bilirubiny cakowitej w pynach ustrojowych metod utleniania z uyciem wanadanu jako czynnika utleniajacego

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie nr 5 - Reaktywne formy tlenu

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

Oznaczenie aktywności aminotransferazy alaninowej.

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Laboratorium 4. Określenie aktywności katalitycznej enzymu. Wprowadzenie do metod analitycznych. 1. CZĘŚĆ TEORETYCZNA

ĆWICZENIE 3. I. Analiza miareczkowa mocnych i słabych elektrolitów

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

d[a] = dt gdzie: [A] - stężenie aspiryny [OH - ] - stężenie jonów hydroksylowych - ] K[A][OH

Biochemia Ćwiczenie 7 O R O P

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Dobór metody analitycznej

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

ABX Pentra Urea CP. Wersja aplikacji a. Metoda (3) Zastosowanie a. Odczynniki b. Aspekty kliniczne (1, 2) Chemia kliniczna

Oznaczanie aktywności - i β- amylazy słodu metodą kolorymetryczną

Oczyszczanie oraz badanie aktywności dehydrogenazy glutaminianowej

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

Ćwiczenie 7. Wyznaczanie stałej szybkości oraz parametrów termodynamicznych reakcji hydrolizy aspiryny.

ĆWICZENIE 11. ANALIZA INSTRUMENTALNA KOLORYMETRIA - OZNACZANIE Cr(VI) METODĄ DIFENYLOKARBAZYDOWĄ. DZIAŁ: Kolorymetria

Reakcje charakterystyczne aminokwasów

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

Zastosowanie spektrofotometrii (UV-VIS) do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

a) hydroliza octanu n-butylu b) hydroliza maślanu p-nitrofenylu 4/7 O O PLE bufor ph 7,20 OH H 2 aceton O PLE O N O N O bufor ph 7,20 acetonitryl

Biochemia Ćwiczenie 4

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

Deproteinizacja jako niezbędny etap przygotowania próbek biologicznych

BADANIE WŁAŚCIWOŚCI FIZYKOCHEMICZNYCH AMINOKWASÓW

Sprawozdzanie z ćwiczenia nr 3 - Kinetyka enzymatyczna

Farmakologia w diagnostyce. Część czwarta parametry azotu pozabiałkowego

46 Olimpiada Biologiczna

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

ĆWICZENIE 5 MECHANIZMY PROMUJĄCE WZROST ROŚLIN

Zakład Biologii Sanitarnej i Ekotechniki ĆWICZENIE 2 BUDOWA I FUNKCJE ENZYMÓW. ZASTOSOWANIE BADAŃ ENZYMATYCZNYCH W INŻYNIERII ŚRODOWISKA.

SPRAWOZDANIE 2. Data:... Kierunek studiów i nr grupy...

ĆWICZENIE NR 3 BADANIE MIKROBIOLOGICZNEGO UTLENIENIA AMONIAKU DO AZOTYNÓW ZA POMOCĄ BAKTERII NITROSOMONAS sp.

Klasa czystości I II III IV V

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

BADANIE ZAWARTOŚCI ZWIĄZKÓW AZOTU. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO(V) METODĄ KOLORYMETRYCZNĄ.

SPEKTROFOTOMETRYCZNA ANALIZA

CHARAKTERYSTYKI SPEKTRALNE UTLENIONEJ I ZREDUKOWANEJ FORMY CYTOCHROMU C

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

VI. OCENA NARAŻENIA ZAWODOWEGO I ŚRODOWISKOWEGO NA DZIAŁANIE KSENOBIOTYKÓW

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Techniki immunoenzymatycznego oznaczania poziomu hormonów (EIA)

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

6. Wykorzystanie tyrozynazy otrzymywanej z pieczarki dwuzarodnikowej (Agaricus Bisporus) do produkcji L-DOPA

RSM ROZTWÓR SALETRZANO-MOCZNIKOWY

Reakcje charakterystyczne aminokwasów

Laboratorium z biofizyki

47 Olimpiada Biologiczna

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

Techniki molekularne ćw. 1 1 z 6

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Mechanizm działania buforów *

Zastosowanie spektrofotometrii w nadfiolecie i świetle widzialnym (UV-VIS) do oznaczania fenoli w wodzie

Kinetyka reakcji hydrolizy sacharozy katalizowanej przez inwertazę

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

OZNACZANIE INDEKSU FENOLOWEGO W WODZIE

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

ANALIZA MOCZU FIZJOLOGICZNEGO I PATOLOGICZNEGO I. WYKRYWANIE NAJWAŻNIEJSZYCH SKŁADNIKÓW NIEORGANICZNYCH I ORGANICZNYCH MOCZU PRAWIDŁOWEGO.

Transkrypt:

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej Wprowadzenie: Większość lądowych organizmów kręgowych część jonów amonowych NH + 4, produktu rozpadu białek, wykorzystuje w biosyntezie związków azotowych. Nadmiar wydalany jest w postaci mocznika, produkowanego w wątrobie w cyklu mocznikowym. Zawartość mocznika we krwi wyraża się często jako azot mocznikowy krwi - BUN (Blood Urea Nitrogen). W warunkach fizjologicznych stanowi on 50% azotu niebiałkowego. Zawartość mocznika kształtuje się na poziomie 15-40 mg/100ml (2.49-6.64 mmol/l). Podwyższony poziom tego składnika krwi towarzyszy najczęściej chorobom nerek. Może być również rezultatem odwodnienia, diety wysokobiałkowej, nadmiernego ketabolizmu białek w ustroju. Powodem obniżonego stężenia mocznika we krwi może być dieta niskobiałkowa lub głodzenie, nadmierne nawodnienie, a także uszkodzenie wątroby. Metody enzymatyczne, katalizowane przez ureazę, opierają się na pomiarze stężenia produktów reakcji hydrolizy mocznika zgodnie z równaniem: CO(NH 2 ) 2 + 3H 2 O ureaza 2NH 4 + + CO 2 + 2OH - Cel ćwiczenia: Celem ćwiczenia jest oznaczenie zawartości mocznika w płynach ustrojowych kinetyczną metodą enzymatyczną, z ureazą i dehydrogenazą glutaminianową. CO(NH 2 ) 2 + 2H 2 O NH 4 + + 2-oksoglutaran + NADH ureaza GLDH 2NH 4 + + CO 3 2- L-glutaminian + NAD + + H 2 O Ureaza katalizuje hydrolizę mocznika do amoniaku i dwutlenku węgla. Amoniak z 2-oksoglutaranem w obecności formy zredukowanej dinukleotydu nikotynoamidoadeninowego (NADH) pod wpływem dehydrogenazy glutaminianowej

przekształca się w L-glutaminian. W metodzie tej diagnostyczne jest pasmo przy długości fali 340 nm, pochodzące od NADH. W trakcie ćwiczenia obserwujemy zmniejszenie intensywności tego pasma, związane ze zmianą maksimum absorpcji światła formy utlenionej koenzymu. Obserwowana zmiana jest wprost proporcjonalna do zawartości mocznika w badanej próbce. Sprzęt i materiały: Roztwór wzorcowy mocznika o stężeniu 7,13 mmol/l (42,8mg/dl) 3-STANDARD, Surowica krwi ludzkiej, Zestaw diagnostyczny do oznaczania stężenia mocznika Lquick Cor-UREA składa się z dwóch oddzielnych odczynników 1-UREA i 2-UREA. Skład i stężenie składników w odczynniku roboczym : Bufor Tris (ph 7.8) 96 mmol/l ADP 0,6 mmol/l Ureaza 266,7 µkat/l GLDH 16 µkat/l NADH 0,25 mmol/l 2-Oksoglutaran 9 mmol/l 7 Probówek typu eppendorf, Pipety automatyczne, końcówki do pipet, 1 Kuweta polistyrenowa (poj. 800 l) do pomiarów spektrofotometrycznych (d = 10 mm), Wytrząsarka typu Vortex, Spektrofotometr CECIL 2501. Ostrzeżenia i uwagi: Odczynniki są konserwowane azydkiem sodu (0,09%). Unikać kontaktu odczynnika ze skórą i błonami śluzowymi.

Wykonanie ćwiczenia: Próba Odczynnikowa Wzorcowa Badana Składnik (PO) (PW) (PB) próbki 1-UREA 1 ml 1 ml 1 ml Ogrzać do 25-30 C. Następnie dodać: Roztwór wzorcowy --- 10 µl --- Roztwór badany --- --- 10 µl Dokładnie wymieszać, inkubować ok. 5 min. Następnie dodać: 2-UREA 250 µl 250 µl 250 µl Dokładnie wymieszać i przenieść 800 l roztworu do kuwetki. Po upływie ok. 1 min. odczytać absorbancję A1 próby wzorcowej i badanej względem próby dokładnie po 1 min. zmierzyć absorbancję A2 próby wzorcowej i badanej względem próby odczynnikowej. 1. Próba odczynnikowa: do probówki typu eppendorf dodać 1 ml odczynnika do oznaczeń 1-UREA. Ogrzać do temperatury oznaczenia 25-30 C. Następnie dodać 250 µl odczynnika do oznaczeń 2-UREA. Dokładnie wymieszać i przenieść 800 l roztworu do kuwetki. Wykonać pomiary absorbancji A1 i A2 próby wzorcowej i badanej względem próby odczynnikowej przy długości fali 340 nm. 2. Próba wzorcowa: do probówki typu eppendorf dodać 1 ml odczynnika do oznaczeń 1-UREA. Ogrzać do temperatury oznaczenia 25-30 C. Następnie dodać 10 µl roztworu wzorcowego. Dokładnie wymieszać i inkubować ok. 5 min. Następnie dodać 250 µl odczynnika do oznaczeń 2-UREA. Dokładnie wymieszać i przenieść 800 l roztworu do kuwetki. Po upływie ok. 1 min. od dodania odczynnika odczytać absorbancję A1 próby wzorcowej względem próby

dokładnie po 1 min. zmierzyć absorbancję A2 próby wzorcowej względem próby odczynnikowej. Obliczyć A/min. (A1 A2). Pomiar wykonać trzykrotnie. 3. Próba badana: do probówki typu eppendorf dodać 1 ml odczynnika do oznaczeń 1-UREA. Ogrzać do temperatury oznaczenia 25-30 C. Następnie dodać 10 µl roztworu wzorcowego. Dokładnie wymieszać i inkubować ok. 5 min. Następnie dodać 250 µl odczynnika do oznaczeń 2-UREA. Dokładnie wymieszać i przenieść 800 l roztworu do kuwetki. Po upływie ok. 1 min. od dodania odczynnika odczytać absorbancję A1 próby badanej względem próby dokładnie po 1 min. zmierzyć absorbancję A2 próby badanej względem próby odczynnikowej. Obliczyć A/min. (A1 A2). Pomiar wykonać trzykrotnie. Opracowanie wyników: Obliczyć A = A1 A2 dla obydwu prób; Obliczyć stężenie mocznika w badanej próbie korzystając ze wzoru: Stężenie mocznika = A(PB) / A(PW) x stężenie wzorca 1 mg mocznika odpowiada 0,467 mg azotu mocznikowego (BUN) WARTOŚCI PRAWIDŁOWE Surowica, osocze <50mg/dl (<8,3 mmol/l) Mocz: zbiórka dobowa 20-35 g/24h (300-550 mmol/24h) Zalecane jest opracowanie przez każde laboratorium własnych zakresów wartości prawidłowych charakterystycznych dla lokalnej populacji. Przeprowadzić analizę statystyczną wyników, obliczając średnią zawartość mocznika w próbce, odchylenie standardowe oraz procentowy błąd oznaczenia. Literatura uzupełniająca: 1. W. Szczepaniak, Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN Warszawa 1996. 2. L. Kłyszejko-Stefanowicz, Ćwiczenia z biochemii, PWN Warszawa 1999. 3. L. Stryer, Biochemia, PWN Warszawa 1999.

Zagadnienia: 1. mocznik (budowa, poznanie zagrożeń wynikających z zachwiania równowagi mocznika w organizmie, kolorymetryczne i enzymatyczne metody oznaczania mocznika we krwi). 2. Spektrofotometria UV-Vis (prawa absorpcji i odchylenia od tych praw, aparatura). 3. Opracowanie wyników i ich ocena statystyczna.