SYLABUS 1.1. PODSTAWOWE INFORMACJE O PRZEDMIOCIE/MODULE Nazwa przedmiotu/ modułu Analityka biochemiczna Kod przedmiotu/ modułu* Wydział (nazwa jednostki prowadzącej kierunek) Nazwa jednostki realizującej przedmiot Kierunek studiów Poziom kształcenia Profil Forma studiów Wydział Biologiczno-Rolniczy Katedra Biochemii i Biologii Komórki Biologia / biologia stosowana Drugi stopień Ogólnoakademicki Stacjonarne Rok i semestr studiów Rok II semestr 3 Rodzaj przedmiotu Koordynator Specjalnościowy dr hab. prof.. UR Izabela Sadowska-Bartosz Imię i nazwisko osoby dr hab. prof. UR Izabela Sadowska-Bartosz (wykład) prowadzącej / osób dr hab. prof. UR Izabela Sadowska-Bartosz (ćw.) prowadzących * - zgodnie z ustaleniami na wydziale 1.2.Formy zajęć dydaktycznych, wymiar godzin i punktów ECTS Wykł. Ćw. Konw. Lab. Sem. ZP Prakt. Inne ( jakie?) Liczba pkt ECTS 10 - - 24 - - - - 2 1.3. Sposób realizacji zajęć zajęcia w formie tradycyjnej zajęcia realizowane z wykorzystaniem metod i technik kształcenia na odległość 1.4. Forma zaliczenia przedmiotu/ modułu zaliczenie z oceną 2.WYMAGANIA WSTĘPNE Podstawowe wiadomości z zakresu przedmiotów: biochemia, biologia komórki, genetyka, fizjologia roślin, fizjologia zwierząt, podstawy statystyki dla przyrodników 3. CELE, EFEKTY KSZTAŁCENIA, TREŚCI PROGRAMOWE I STOSOWANE METODY DYDAKTYCZNE
3.1. Cele przedmiotu/modułu C1 Zapoznanie studentów ze wszystkimi zagadnieniami wymienionymi w treściach programowych wykładu. C2 Zaznajomienie studentów z zaawansowanymi technikami analizy i procedur analitycznych wybranych biomolekuł i markerów biochemicznych. C3 Wyrobienie umiejętności projektowania eksperymentu naukowego. 3.2 EFEKTY KSZTAŁCENIA DLA PRZEDMIOTU/ MODUŁU EK (efekt kształcenia) EK_01 Treść efektu kształcenia zdefiniowanego dla przedmiotu (modułu) Student: umie określić ogólną problematykę biochemii analitycznej oraz scharakteryzować podstawy teoretyczne wybranych metod bioanalitycznych, zakresy ich zastosowań i zasady działania stosowanej aparatury Odniesienie do efektów kierunkowych (KEK) K_W01, K_W05 EK_02 rozumie specyfikę materiału biologicznego, jego poziomy organizacji oraz znaczenie zaawansowanych procedur preparatywno-analitycznych K_W04 EK_03 zna zasady posługiwania się metodami statystycznymi w opracowywaniu wyników analiz biochemicznych K_W06 EK_04 zna zasady ergonomii, organizacji, bezpieczeństwa i higieny pracy laboratoryjnej K_W09 EK_05 potrafi zastosować wybrane techniki bioanalityczne, m.in. elektronowy rezonans paramagnetyczny, spektroskopię UV/VIS, fluorymetrię, chromatografię cieczową i elektroforezę do identyfikacji i oznaczeń ilościowych wybranych substancji pochodzenia biologicznego oraz określenia aktywności metabolicznej organizmów K_U03, K_U05 EK_06 wykonuje eksperymenty stosując podstawowy sprzęt laboratoryjny oraz złożone metody i techniki badawcze K_U01, K_U03, K_U06, K_U07 EK_07 potrafi pracować samodzielnie oraz współpracować K_K02
w zespole. 3.3 TREŚCI PROGRAMOWE A. Problematyka wykładu Treści merytoryczne Materiał badawczy, sposoby jego pobierania oraz przechowywanie. Metody spektroskopowe używane w analityce biochemicznej. Metody immunochemiczne używane w analityce biochemicznej. Metody używane w patomorfologii. Co to są biomarkery w diagnostyce medycznej?. Badanie równowagi zasadowo-kwasowej i gospodarki wodno-elektrolitowej. Badanie zaburzeń układu hormonalnego. Substancje szkodliwe dla zdrowia w produktach spożywczych. B. Problematyka ćwiczeń audytoryjnych, konwersatoryjnych, laboratoryjnych, zajęć praktycznych Treści merytoryczne Przegląd procedur analitycznych stosowanych w oznaczaniu wybranych biomolekuł (proste cząsteczki organiczne, kwasy nukleinowe białka). Metody izolacji materiału (chromatograficzne metody separacji, elektroforetyczne metody separacji). Metody immunochemiczne (western blot, ELISA). Przykładowe interpretacje danych analitycznych (markery nowotworowe, markery zakażeń bakteryjnych i wirusowych). Izolacja DNA. Transformacja komórek kompetentnych. Analiza otrzymanych produktów reakcji PCR metodą elektroforezy agarozowej.
Wykrywanie substancji szkodliwych dla zdrowia w materiale roślinnym (szczawianów, tiocyjanianów, kofeiny). 3.4 METODY DYDAKTYCZNE Wykład - wykład z prezentacją multimedialną. Ćwiczenia laboratoryjne - praca w grupach; wykonywanie i planowanie doświadczeń; sprawozdania. 4 METODY I KRYTERIA OCENY 4.1 Sposoby weryfikacji efektów kształcenia Symbol efektu Metody oceny efektów kształcenia Forma zajęć dydaktycznych EK_ 01, EK_02 egzamin, kolokwium w, ćw. EK_ 03, EK_04, EK_05 kolokwium, obserwacja w trakcie zajęć, wypowiedź ustna, sprawozdania ćw. EK_ 06 obserwacja w trakcie zajęć, sprawozdania ćw. EK_ 07 obserwacja w trakcie zajęć. ćw. 4.2 Warunki zaliczenia przedmiotu (kryteria oceniania) Zaliczenie ćwiczeń na podstawie ocen z kolokwiów cząstkowych oraz kolokwium zaliczeniowego, zaliczenia sprawozdań. Ocena końcowa z ćwiczeń uzależniona od procentu uzyskanych punktów (>50% maksymalnej liczby punktów): dst 51-60%, dst plus 61-70%, db 71-80%, db plus 81-90%, bdb 91-100%). Zaliczenie wykładu na podstawie pisemnego zaliczenia z oceną: odpowiedzi na 30 pytań otwartych: 51-60% punktów - ocena dostateczna, 61-70% - ocena dostateczna plus, 71-80% - ocena dobra, 81-90% - ocena dobra plus, 91-100% - ocena bardzo dobra.
5. CAŁKOWITY NAKŁĄD PRACY STUDENTA POTRZEBNY DO OSIĄGNIĘCIA ZAŁOŻONYCH EFEKTÓ5 W GODZINACH ORAZ PUNKTACH ECTS Aktywność godziny zajęć wg planu z nauczycielem Liczba godzin/ nakład pracy studenta 34 (10w +14ćw) przygotowanie do zajęć 8 przygotowanie sprawozdań 8 udział w konsultacjach - przygotowanie do zaliczenia pisemnego 8 udział w zaliczeniu pisemnym 2 SUMA GODZIN 60 SUMARYCZNA LICZBA PUNKTÓW ECTS 2 6. PRAKTYKI ZAWODOWE W RAMACH PRZEDMIOTU/ MODUŁU wymiar godzinowy - zasady i formy odbywania praktyk - 7. LITERATURA Literatura podstawowa: J.J. Tomaszewski, Diagnostyka laboratoryjna, podręcznik dla studentów medycyny, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa, 2001. Marphy R.K. Granner D.K. Rodwell V.W., Biochemia Harper, Wydawnictwo Naukowe PZWL, Warszawa, 2011. A. Dembińska-Kieć JW. Naskalski, Diagnostyka laboratoryjna z elementami biochemii klinicznej, Urban &Partner, Wrocław, 2002. Bartosz G. Druga twarz tlenu. Wolne rodniki w przyrodzie. Wydawnictwo Naukowe PWN. Warszawa, 2003. Literatura uzupełniająca: Berg JM., Tymoczko JL., Stryer L., Biochemia, Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa, 2007. Kryściak J.: Chemiczna analiza instrumentalna, PZWL, Warszawa 1999. Kęcki Z.: Podstawy spektroskopii molekularnej, PWN, Warszawa 1998. Walkowiak B.: Techniki chromatografii cieczowej. Przykłady zastosowań. Amersham Pharmacia Biotech. MORPOL, Lublin 2000. Wprowadzenie do chemii białek. Red. A. Dubin. Wydział Biotechnologii UJ, Kraków 2003. Proteomika. Red. A. Kraj, J. Silberring. Wydział Chemii UJ, Kraków 2004. Rasch D., Herrendorfer G.: Statystyczne planowanie doświadczeń. PWN, Warszawa 1991. Harris E.L.V., Angal S.: Protein purification methods. A practical approach, IRL Press, Oxford-UK 1995. Akceptacja Kierownika Jednostki lub osoby upoważnionej