Katarzyna Bednarska, Barbara Wachowicz PRO CE S SEKRECJI PŁYTEK KRW I WYWOŁANY PR OM IE NIOW AN IE M UVB

Podobne dokumenty
U N I V E R S I T Ä T IS L O D Z I E N S I S FOLIA BIOCHIMICA ET BIOPHYSICA 15, 2001

WPŁYW ZWIĄZKÓW PLATYNY NA GENEROWANIE ANIONORODNIKA PONADTLENKOWEGO W PŁYTKACH KRWI ŚWINI

ACTA UNIVERSIT ATIS LODZIENSIS. Beata Olas, Barbara Wachowicz ZMIANY AKTYWACJI PŁYTEK KRWI WYWOŁANE DZIAŁANIEM LEKU ANTYNOWOTWOROWEGO - CISPLATYNY

Halina M. Żbikowska, Tadeusz Krajewski, Barbara Wachowicz

WPŁYW SELENINU SODOWEGO NA BIAŁKA PŁYTEK KRWI ŚWINI

Strona 1 z 3 P/LAB/70 -F2 Lista badań prowadzonych w ramach zakresu elastycznego Wersja: I Data wydania: Nazwa i adres MEDYCZNE LABORATORIU

PEROKSYDACJA LIPIDÓW PŁYTEK KRWI ŚWINI STYMULOWANA DZIAŁANIEM CIS- I TRANSPLATYNY

Doktorantka: Żaneta Lewandowska

Zaburzenia krzepnięcia diagnostyka w systemie przyłóżkowym

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

POLITECHNIKA ŁÓDZKA INSTRUKCJA Z LABORATORIUM W ZAKŁADZIE BIOFIZYKI. Ćwiczenie 3 ANALIZA TRANSPORTU SUBSTANCJI NISKOCZĄSTECZKOWYCH PRZEZ

- oznaczenia naukowo-badawcze. - jedna z podstawowych technik. - oznaczenia laboratoryjnodiagnostyczne. Elektroforeza. badawczych.

(12) TŁUMACZENIE PATENTU EUROPEJSKIEGO (19) PL (11) PL/EP (96) Data i numer zgłoszenia patentu europejskiego:

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

Biologiczna ocena wyrobów medycznych Testy in vitro

Sirtuiny - eliksir młodości nowej generacji?

ĆWICZENIE 5 MECHANIZMY PROMUJĄCE WZROST ROŚLIN

OCZYSZCZANIE ŚCIEKÓW PRZEMYSŁOWYCH O DUŻEJ ZAWARTOŚCI OLEJÓW NA ZŁOŻU BIOLOGICZNYM

Technika fluorescencyjnego oznaczania aktywności enzymów. Wstęp:

Temat ćwiczenia: Techniki stosowane w badaniach toksyczności in vitro

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

Sposób otrzymywania białek o właściwościach immunoregulatorowych. Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania fragmentów witellogeniny.

Interakcje między abiotycznymi i biotycznymi czynnikami stresowymi: od teorii do praktyki Elżbieta Kuźniak Joanna Chojak

Tab.1. Charakterystyka materiału do badań w Pracowni Hemostazy LDH

Oznaczanie aktywności cytotoksycznej chemoterapeutyków wobec komórek nowotworowych

Antyoksydanty pokarmowe a korzyści zdrowotne. dr hab. Agata Wawrzyniak, prof. SGGW Katedra Żywienia Człowieka SGGW

Nitraty -nitrogliceryna

Dr hab. Anna Bębenek Warszawa,

Dotyczy zamówienia publicznego ogłoszonego w trybie przetargu nieograniczonego pod nazwą: Dostawa systemów do pozyskiwania osocza bogatopłytkowego

Dane mikromacierzowe. Mateusz Markowicz Marta Stańska

Roztwory buforowe (bufory) (opracowanie: dr Katarzyna Makyła-Juzak)

FOLIA BIOCHIMICA ET BIOPHYSICA 6, 1988

Wpływ promieniowania na wybrane właściwości folii biodegradowalnych

EKSPERT OD JAKOŚCI SKÓRY

In vino veritas, in RESVERATROLUM sanitas

EKSTRAHOWANIE KWASÓW NUKLEINOWYCH JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

O NIEKTÓRYCH NIEDIAGNOSTYCZNYCH ZASTOSOWANIACH CYTOMETRII PRZEPŁYWOWEJ

Fizjologia nauka o czynności żywego organizmu

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM MEDYCZNEGO Nr AM 006

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

Cukry. C x H 2y O y lub C x (H 2 O) y

Techniki immunoenzymatycznego oznaczania poziomu hormonów (EIA)

WŁASNOŚCI SPEKTRALNE NUKLEOTYDÓW PIRYDYNOWYCH (NAD +, NADP + ) OZNACZANIE AKTYWNOŚCI TRANSAMINAZY ALANINOWEJ

października 2013: Elementarz biologii molekularnej. Wykład nr 2 BIOINFORMATYKA rok II

AE/ZP-27-03/16 Załącznik Nr 6

Podstawy biogospodarki. Wykład 7

Joanna Bereta, Aleksander Ko j Zarys biochemii. Seria Wydawnicza Wydziału Bio chemii, Biofizyki i Biotechnologii Uniwersytetu Jagiellońskiego

TaqNovaHS. Polimeraza DNA RP902A, RP905A, RP910A, RP925A RP902, RP905, RP910, RP925

OCENA TOKSYCZNOŚCI PRODUKTÓW FOTODEGRADACJI CHLORPROMAZYNY PRZY UŻYCIU TESTÓW OSTRYCH NA BRACHIONUS CALYCIFLORUS (WROTKI)

Prof. dr hab. Czesław S. Cierniewski

JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

Składniki diety a stabilność struktury DNA

STRESZCZENIE Słowa kluczowe: Wstęp Cel pracy

Tematy- Biologia zakres rozszerzony, klasa 2TA,2TŻ-1, 2TŻ-2

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM MEDYCZNEGO Nr AM 006

Źródła energii dla mięśni. mgr. Joanna Misiorowska

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM MEDYCZNEGO Nr AM 006

Bliskie spotkania z biologią. METABOLIZM część II. dr hab. Joanna Moraczewska, prof. UKW

Laboratorium Wirusologiczne

STRESZCZENIE PRACY DOKTORSKIEJ

Nowoczesne techniki stosowane w preparatyce. Monika Słomczyńska Nazimek Dział Preparatyki RCKiK Kraków

Metody badania ekspresji genów

WYKŁAD: 4. Sirtuiny - eliksir młodości nowej generacji? Dieta niskokaloryczna (calorie restriction,cr)

SPIS TREŚCI OD AUTORÓW... 5

BIOLOGIA klasa 1 LO Wymagania edukacyjne w zakresie podstawowym od 2019 roku

g % ,3%

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona

Uczeń: omawia cechy organizmów wyjaśnia cele, przedmiot i metody badań naukowych w biologii omawia istotę kilku współczesnych odkryć.

Rumex. Rumex SC Oferta dla wymagających

Mechanizmy działania i regulacji enzymów

Zastosowanie metody Lowry ego do oznaczenia białka w cukrze białym

ALGALTOXKIT F Procedura testu

SKUTECZNOŚĆ IZOLACJI JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

SYLABUS DOTYCZY CYKLU KSZTAŁCENIA

Wpływ egzogennych fosfolipidów na HDL

Biochemia Ćwiczenie 4

Eukariota - błony wewnątrzkomórkowe. Błony wewnętrzne stanowiące granice poszczególnych. przedziałów komórki i otaczające organelle komórkowe

ZAKŁAD DIAGNOSTYKI LABORATORYJNEJ I IMMUNOLOGII KLINICZNEJ WIEKU ROZOJOWEGO AM W WARSZAWIE.

Dr inż. Marta Kamińska

Wprowadzenie do cytometrii przepływowej: metody znakowania komórek

Recenzja rozprawy doktorskiej mgr inż. Artura Zajkowicza

mechanizmach latencji i onkogenezy BLV. Wykazano, że zakażenie BLV powoduje wzrost aktywności telomerazy i skracanie sekwencji telomerowych we

CORAZ BLIŻEJ ISTOTY ŻYCIA WERSJA A. imię i nazwisko :. klasa :.. ilość punktów :.

Techniki znakowania cząsteczek biologicznych - opis przedmiotu

Wydział Przyrodniczo-Techniczny UO Kierunek studiów: Biotechnologia licencjat Rok akademicki 2009/2010

Badanie dynamiki białek jądrowych w żywych komórkach metodą mikroskopii konfokalnej

Woltamperometryczne oznaczenie paracetamolu w lekach i ściekach

DOZYMETRIA BIOLOGICZNA W XXI WIEKU - KAŻDY NOSI W SOBIE DAWKOMIERZ OSOBISTY

Technika radioimmunologicznego oznaczania poziomu hormonów (RIA) dr Katarzyna Knapczyk-Stwora

Prezentacja: Katarzyna Świtoń

PROGRAM NAUCZANIA PRZEDMIOTU (ĆWICZENIA LABORATORYJNE) CHEMIA KLINICZNA

INICJACJA ELONGACJA TERMINACJA

PROJEKT WSPÓŁFINANSOWANY PRZEZ UNIĘ EUROPEJSKĄ Z EUROPEJSKIEGO FUNDUSZU ROZWOJU REGIONALNEGO 1 z 7

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Podkowiańska Wyższa Szkoła Medyczna im. Z. i J. Łyko. Syllabus przedmiotowy 2016/ /2019

KARTA KURSU. Kod Punktacja ECTS* 2

Transkrypt:

ACTA UNI VERS ITA TIS LODZIENSIS FOLIA BIOCHIMICA ET BIOPHYSICA 15, 2001 Katarzyna Bednarska, Barbara Wachowicz PRO CE S SEKRECJI PŁYTEK KRW I WYWOŁANY PR OM IE NIOW AN IE M UVB Badano w warunkach in vitro wpływ dwóch dawek promieniowania UVB (1,08 J/cm 2 oraz 4,32 J/cm2) o niskiej mocy (1,2 mw/cm2) na sekrecję nukleotydów adeninowych i białka z płytek krwi oraz ekspresję selektyny P, uwalnianej w procesie aktywacji, na powierzchni błony płytkowej. Promieniowanie UVB w zakresie stosowanych dawek powoduje uwalnianie nukleotydów adeninowych z ziarnistości o dużej gęstości elektronowej, natomiast w niewielkim stopniu indukuje uwalnianie białek z ziarnistości a płytek krwi świni. Stwierdzono również, że promieniowanie UVB obniża ekspresję selektyny P na powierzchni płytek krwi człowieka. WSTĘP Ekspozycja kom órek krwi na promieniowanie UV wiąże się z występowaniem różnorodnych efektów biologicznych. W zależności od dawki, mocy i czasu ekspozycji, promieniowanie UV może prowadzić do degradacji struktur kom órkowych (sieciowanie białek, sieciowanie i utlenianie lipidów), bądź do modyfikacji ich aktywności biologicznej [4]. Wysokoenergetyczne promieniowanie UV uszkadza przede wszystkim składniki błony i jądra kom órkowego [1]. Promieniowanie UV o niskiej energii oddziałuje przede wszystkim ze strukturam i molekularnymi związanymi z przekazywaniem sygnału komórkowego i może modulować aktywność kom órek [2]. Płytki krwi odpowiadają na działanie agonistów zmianą kształtu kom órki, sekrecją zmagazynowanych związków, adhezją i agregacją. Uw alnianie białek, w tym specyficznego białka płytkowego - selektyny P, z ziarnistości a jest czułym markerem aktywacji płytek krwi [8]. Do sekrecji białek może dochodzić w wyniku działania słabych agonistów (np. ADP, kolagen) oraz w wyniku spontanicznej aktywacji płytek krwi spowodowanej długim przechowywaniem preparatów płytkowych. Silniejsi agoniści, jak trom bina,

powodują, obok sekrecji białek, również uwalnianie związków zmagazynowanych w ziarnistościach o dużej gęstości elektronowej i lizosomach [7]. Promieniowanie UVB o niskiej mocy jest uważane za czynnik powodujący zmiany procesu aktywacji płytek krwi [5]. Celem prezentowanych badań było określenie wpływu niskoenergetycznego promieniowania UVB na uwalnianie nukleotydów adeninowych i białka z płytek krwi. Ponadto badano wpływ promieniowania UVB na ekspresję selektyny P. Działanie promieniowania UVB na ekspresję selektyny P porównano z działaniem trombiny. MATERIAŁ I METODY Płytki krwi świni otrzymywano m etodą wirowania różnicowego krwi pobranej na roztwór ACD (65 mm kwas cytrynowy, 85 mm cytrynian sodu, 110 mm glukoza). Płytki krwi człowieka otrzymywano m etodą filtracji żelowej na złożu Sepharoza 2B. Zawiesinę kom órek (5 mg białka/ /ml) w zmodyfikowanym buforze Tyroda (0,15 M NaCl w 0,014 M Tris - HCl, 5 mm glukoza, ph 7,4) poddawano ekspozycji na promieniowanie UVB (1,2 mw/cm2) o dawkach 1,08 J/cm 2 oraz 4,32 J/cm 2 (czas naświetlania 15 oraz 60 m inut, tem peratura 28 C). W supernatantach zawiesiny płytek krwi świni oznaczano stężenie nukleotydów adeninowych m etodą spektrofotometryczną [10]. Białko oznaczano w supernatantach zawiesiny płytek zmodyfikowaną m etodą Lowry ego [9]. Ekspresję selektyny P na powierzchni płytek krwi człowieka badano m etodą cytofluorymetrii przepływowej z zastosowaniem m onoklonalnych przeciwciał anty-cd62 znakowanych fikoerytryną, region płytek bram kowano przy użyciu m onoklonalnych przeciwciał anty-cd61 firmy Becton Dickinson [6]. Analizę statystyczną przeprowadzono przy użyciu testu par t Studenta oraz testu Wilcoxsona. Wyniki przedstawiono jako wartości średnie ze średnimi błędam i standardow ym i (SEM). Analizę wariancji wykonano m etodą bloków zrandomizowanych. WYNIKI I DYSKUSJA W supernatantach zawiesiny płytek krwi świni eksponowanych na promieniowanie UVB o niskiej mocy (1,2 m W /cm 2) o dawkach 1,08 J/cm 2 oraz 4,32 J/cm 2 stwierdzono wzrost stężenia nukleotydów adeninowych

Tabela 1 Sekrecja białka i nukleotydów adeninowych z płytek krwi świni oraz ekspresja selektyny P na powierzchni płytek krwi człowieka po ekspozycji na promieniowanie UVB (wartość średnia ±S E M ) 1,08 J/cm 2 Dawka UVB 4,32 J/cm 2 + UV -U V -U V -I-UV 108,0 ± 2 0 n= 6 92,0 ± 20,4 Białko (^g/mg białka płytkowego) 50,0 ± 2,5 6 8,0 ± 6, 1* n = 6 Nukleotydy adenino we (nmol/mg białka płytkowego) 6,9 ± 0,9 12,4 ±1,9* 7,3 ± 1,9 n= 8 43,6 ±10,6** n= 8 Ekspresja selektyny P (%) 8,1 ± 0,4 n = 3 3,9 ± 1,1* n = 3 - - * p < 0,05 ** p<0,01. 700 n ukleotyd y a d e n in o w e 600... 500. : jjjjjjjjjjj. ' i Шjjjjjjjjj m 400 CTJ a... TT ш < /> 300... i ii iii ih iii iiiiiii ih iii: 200 h- bia 100 0 T 1,08 4,32 1,08 1 iiilillli i )' < 1 lililiiiiiil 4,32 Я d a w k a pro m ien io w an ia UVB ( J/ c m ) 2 Rys. 1. Uwalnianie białek i nukleotydów adeninowych z płytek krwi świni pod wpływem niskoenergetycznego promieniowania UVB (1,08 J/cm2, 4,32 J/cm 2). Wartości kontrolne przyjęto jako 1 0 0 %

odpowiednio o 80 ± 28% oraz 497 + 45% w stosunku do wartości kontrolnych (rys. 1 i tab. 1). Natomiast w supernatancie zawiesiny płytek krwi naświetlonych promieniowaniem o dawce 1,08 J/cm 2 stwierdzono wzrost stężenia białka jedynie o 28 + 3% w stosunku do kontroli (rys. 1 i tab.l). Po naświetleniu komórek promieniowaniem o dawce 4,32 J/cm 2 nie zaobserwowano uwalniania białek z naświetlonych płytek krwi (rys. 1), chociaż podczas przechowywania płytek kontrolnych (bez ekspozycji na UVB) dochodziło do uwalniania białka z pytek w wyniku ich spontanicznej aktywacji (tab. 1). Ekspresja selektyny P na powierzchni płytek krwi człowieka naświetlonych daw ką 1,08 J/cm 2 osiągała wartości niższe niż na powierzchni płytek kontrolnych przechowywanych w ciemności (3,9 + 1,1% względem wartości kontrolnych 8,1 + 0,4 % ) (tab. 1). Działanie promieniowania UVB na proces uwalniania i/lub ekspresji selektyny P porównywano z działaniem trombiny - silnego aktywatora procesu sekrecji. Zaobserwowano 80 + 10% ekspresji selektyny P wywołanej ekspozyq'ą płytek krwi na trombinę (0,15 u/ml) (rys. 2). 100 90 80 70 a. >. g 60 płytki 50 płytki + UVB 40 płytki + trom bin a o. 30 20 10 0 1,0 8 J/c m Rys 2. Ekspresja selektyny P na powierzchni płytek krwi człowieka naświetlanych i nie naświetlanych promieniowaniem UVB (1,08 J/cm2) oraz eksponowanych na działanie trombiny (0,15 u/ml)

W odpowiedzi na działanie silnego agonisty, takiego jak trom bina, dochodzi w aktywowanych płytkach krwi do sekrecji białek z ziarnistości a oraz nukleotydów adeninowych. Nukleotydy adeninowe z puli niemetabolicznej zmagazynowane w ziarnistościach o dużej gęstości elektronowej stanowią ok. 65% całkowitej ich zawartości w płytkach krwi [10]. Przeprowadzone badania wykazały, że promieniowanie UVB o niskiej m ocy m oże być induktorem procesu sekrecyjnego z ziarnistości o dużej gęstości elektronowej. Zaobserwowano bowiem uwalnianie nukleotydów adeninowych z płytek krwi naświetlonych promieniowaniem UVB o dawkach nie powodujących wycieku dehydrogenazy mleczanowej (LDH), m arkera cytosolu [2]. Badania wykazały również, że promieniowanie UVB o niższej dawce (1,08 J/cm 2) powoduje niewielką, lecz statystycznie istotną sekrecję białek płytkowych, podczas gdy promieniowanie UVB o dawce wyższej (4,32 J/c m 2) nie powoduje uwalniania białka. Dalsze badania mechanizmu tego zjawiska pozwolą na zweryfikowanie hipotezy o ewentualnym przyłączaniu się uwolnionych białek do zmienionej powierzchni błony płytkowej w wyniku długotrwałej ekspozycji płytek krwi na promieniowanie UVB. Selektyna P jest m arkerem początkowej fazy aktywacji płytek krwi i reakcji uwalniania z ziarnistości a indukowanej działaniem agonistów, takich jak np. trombina (rys. 2). Badania ekspresji selektyny P na powierzchni płytek krwi człowieka z zastosowaniem przeciwciał monoklonalnych wykazały jednak spadek ekspresji tej glikoproteiny na powierzchni kom órek eksponowanych na niskoenergetyczne promieniowanie UVB. Można przypuszczać, że prom ieniowanie UVB, będąc słabym induktorem uwalniania białka z płytek krwi, może jednocześnie zmieniać strukturę eksponowanej na powierzchni płytek selektyny P, której epitop staje się nierozpoznawalny dla przeciwciał m onoklonalnych anty-cd62. Promieniowanie nadfioletowe, jako czynnik fizyczny, może modulować aktywację płytek krwi przy udziale różnych mechanizmów wew nątrzkom órkowych. Indukowanie sekrecji nukleotydów adeninowych przy słabym uwalnianiu białka sugeruje odmienny mechanizm działania prom ieniowania UVB na proces aktywacji płytek krwi, niż działanie klasycznych agonistów, takich jak trombina. BIBLIOGRAFIA [1] A n a n y h a s w a m y N. H., P i e r c e a l W. E. (1990), Photochera. Photobiol., 52, 1119-1136. [2] B e d n a r s k a K., W a c h o w i c z B. (1999), J. Photochem. Photobiol. B: Biology, 49, 187-191.

[3] G o d a r D. E., B e e r J. Z., Biological Responses to UVA Radiation, ed. F. Urbach, 1992, Valdemar Publ. Co., Overland Park, KS, 65-73. [4] G o d a r D. E., T h o m a s D. P., M i l l e r S. A., L e e W. (1993), Photochem. Photobiol., 57, 1018-1026. [5] L a w l e r J. W., C h a о F. C., F a n g P. H. (1979), Thrombos. Res., 14, 1140-1143. И M i c h e l s on A. D. (1996), Blood, 12, 4925^1936. [7] O l a s B W a c h o w i c z В. (1995), Post. Biol. Kom., 22, 359-378. [8 ] S t a r J., R o s e ne K., F er l a n d J., D i l e o n e G., H o g a n J., K e s t i n A. (1997), Platelet Activation, 4, 562-568. [9] V a t a s a r y G. T., S m i t h W. T. (1987), Analyt. Biochem., 167, 411-417. [10] W a c h o w i c z В. (1984), Cell Biochem. Function, 2, 167-170. Katedra Biochemii Ogólnej Uniwersytetu Łódzkiego Katarzyna Bednarska, Barbara Wachowicz SECRETORY PROCESS IN BLOOD PLATELETS INDUCED BY UVB RADIATION The effects of two doses of UVB radiation (1.08 J/cm 2 and 4.32 J/cm2; 1.2 mw/cm2) on blood platelets secretion of adenine nucleotides and proteins and P selectin expression were studied. The effect of UVB radiation on P selectin expression (marker of platelet activation) was compared with the effect of thrombin, which is a strong platelet agonist. The obtained results showed that exposure of blood platelet to UVB radiation caused the release of adenine nucleotides, but proteins in a small amount. Moreover, UVB radiation caused decrease of P selectin expression on blood platelets, in opposite to the effect of thrombin. It seems that UVB radiation can partly activate blood platelets, but the mechanism is needed to be explain.