ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

Podobne dokumenty
Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

OZNACZENIE JAKOŚCIOWE I ILOŚCIOWE w HPLC

12 ZASAD ZIELONEJ CHEMII

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II. OznaczanieBTEX i n-alkanów w wodzie zanieczyszczonej benzyną metodą GC/FID oraz GC/MS 1

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

BADANIE ZAWARTOŚCI WIELOPIERŚCIENIOWYCH WĘGLOWODORÓW AROMATYCZNYCH (OZNACZANIE ANTRACENU W PRÓBKACH GLEBY).

ANALIZA INSTRUMENTALNA

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Analiza instrumentalna

Rys. 1. Chromatogram i sposób pomiaru podstawowych wielkości chromatograficznych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

KALIBRACJA BEZ TAJEMNIC

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok OAM

KALIBRACJA. ważny etap procedury analitycznej. Dr hab. inż. Piotr KONIECZKA

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Zastosowanie spektrofotometrii (UV-VIS) do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie

Oznaczanie herbicydów z grupy triazyn z zastosowaniem techniki HPLC

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Ćwiczenie 4 Zastosowanie metody wzorca wewnętrznego do analizy ilościowej techniką GC-FID

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Dobór metody analitycznej

Cz. 5. Podstawy instrumentalizacji chromatografii. aparatura chromatograficzna w skali analitycznej i modelowej - -- w części przypomnienie -

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

IDENTYFIKACJA SUBSTANCJI W CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

Techniki immunochemiczne. opierają się na specyficznych oddziaływaniach między antygenami a przeciwciałami

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Wysokosprawna chromatografia cieczowa dobór warunków separacji wybranych związków

Ćwiczenie 3: Ocena fizykochemiczna nawozów stałych fosforowych różne formy P 2 O 5

PRZEWODNIK PO PRZEDMIOCIE

JAK WYZNACZA SIĘ PARAMETRY WALIDACYJNE

Data wydruku: Dla rocznika: 2015/2016. Opis przedmiotu

WYMAGANIA DO KOLOKWIUM

Zastosowanie spektrofotometrii w nadfiolecie i świetle widzialnym (UV-VIS) do oznaczania fenoli w wodzie

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 3

OZNACZANIE WYBRANYCH FARMACEUTYKÓW W PRÓBACH WODY.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

ĆWICZENIE 11. ANALIZA INSTRUMENTALNA KOLORYMETRIA - OZNACZANIE Cr(VI) METODĄ DIFENYLOKARBAZYDOWĄ. DZIAŁ: Kolorymetria

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Spis treści. Wstęp. Twardość wody

Data wydruku: Dla rocznika: 2015/2016. Opis przedmiotu

Klasa czystości I II III IV V

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

gdzie m w określa masę węglowodoru, a m r masę całego roztworu. Wyniki zanotować w tabeli. cpods

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

Inżynieria środowiska II stopień (I stopień / II stopień) ogólnoakademicki (ogólno akademicki / praktyczny)

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 2

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

Formularz opisu kursu (sylabus przedmiotu) na rok akademicki 2011/2010

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

Ćwiczenie 4 Porównanie wydajności różnych technik ekstrakcji w układzie ciało stałeciecz. 1. Wstęp

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

BADANIE ZAWARTOŚCI ZWIĄZKÓW AZOTU. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO(V) METODĄ KOLORYMETRYCZNĄ.

Przebieg ćwiczeń z Oceanografii Chemicznej w roku akademickim 2012/2013

TECHNIKA SPEKTROMETRII MAS ROZCIEŃCZENIA IZOTOPOWEGO (IDMS)-

Analiza i monitoring środowiska

HPLC? HPLC cz.1. Analiza chromatograficzna. Klasyfikacja metod chromatograficznych

ZAKŁAD CHEMII ANALITYCZNEJ

2-Metyloazirydyna. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Sylabus modułu: Laboratorium badań materiałów (0310-CH-S1-015)

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 2

Glifosat. Numer CAS:

Wydział Budownictwa i Inżynierii Środowiska. Poziom i forma studiów. Ścieżka dyplomowania: przedmiotu: 0) Semestr: W - 15 C- 0 L- 30 P- 0 Ps- 0 S- 0

Prof. dr hab. inż. M. Kamiński 2006/7 Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny PG. Ćwiczenie: LC / GC. Instrukcja ogólna

Inżynieria środowiska II stopień (I stopień / II stopień) ogólnoakademicki (ogólno akademicki / praktyczny)

EKSTRAKCJA KOFEINY Z PRÓBEK KAWY

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne. Nie dotyczy

Numer CAS: o C (101,3 kpa)

WYSOKOSPRAWNA CHROMATOGRAFIA CIECZOWA (HPLC) - ZAGADNIENIA DO OPRACOWANIA SEMESTR IV

Ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

ĆWICZENIE 3: CHROMATOGRAFIA PLANARNA

Ćwiczenie 1 Analiza jakościowa w chromatografii gazowej Wstęp

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok WF (kierunek farmacja)

Metody spektroskopowe:

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

Analiza środowiskowa, żywności i leków CHC l

Transkrypt:

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II Ćwiczenie 1 Przygotowanie próbek do oznaczania ilościowego analitów metodami wzorca wewnętrznego, dodatku wzorca i krzywej kalibracyjnej 1. Wykonanie ćwiczenia 1.1. Oznaczanie ilościowe wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych (WWA) metodą wzorca wewnętrznego i technikami chromatograficznymi Oznaczanie ilościowe WWA w glebie metodą wzorca wewnętrznego poprzez wydzielenie frakcji węglowodorów przy użyciu cieczowej chromatografii adsorpcyjnej i oznaczenie właściwe wykonane techniką chromatografii gazowej obejmuje następujące etapy: a) uśrednienie próby gleby, b) odważenie próbki na oznaczanie suchej masy gleby (o masie 5 g) i wyznaczenie suchej masy gleby. c) odważenie próbki analitycznej (o masie 5 g), d) dodanie roztworu wzorca wewnętrznego (o stężeniu 0,45 g/ml) do próbki analitycznej, e) ekstrakcja próbki analitycznej 50 ml eteru naftowego (wydajność ekstrakcji ok. 65%), f) zatężenie ekstraktu, g) wydzielanie frakcji WWA z ekstraktu metodą adsorpcyjnej chromatografii cieczowej (wydajność ok. 80%), h) zatężenie frakcji WWA,

Przygotowanie próbek do oznaczania ilościowego analitów 2 i) analiza GC/FID zatężonej frakcji WWA analiza właściwa, j) wyznaczenie współczynników detekcji, k) obliczenie wyników. Wzorcem wewnętrznym jest 2-metyloantracen, ilość wzorca wewnętrznego w próbce analitycznej powinna być 1,5-2 razy większa niż analitu. Zakłada się, że stężenie poszczególnych WWA w glebie wynosi od 0,1 0,3 ppm. Zadaniem studenta jest obliczenie wg powyższych danych ilości wzorca wewnętrznego jaką należy dodać do próbki analitycznej, przygotowanie próbki gleby do analizy (patrz: punkty a-f), wyznaczenie współczynników detekcji na podstawie Rys.1 oraz obliczenie na podstawie Rys.2 zawartości WWA w glebie. Rys. 1. Chromatogram wzorców WWA do wyznaczania współczynników odpowiedzi uzyskany z analizy GC (stężenie każdego WWA 1 mg/ml, stężenie wzorca wewnętrznego 2 mg/ml) Wyznaczenie suchej masy gleby: Naważyć około 5g próbki gleby do naczynka wagowego z dokładnością do 0,0001g (zanotować tarę naczynka) i wysuszyć próbkę w suszarce w 105 C. Po wystygnięciu naczynka w eksykatorze ponownie je zważyć i wyznaczyć wilgotność wagową gleby określoną jako stosunek masy wody zawartej w glebie Mw do suchej masy gleby Ms (%). Obliczyć zawartość suchej masy gleby w próbce pobranej do ekstrakcji.

Przygotowanie próbek do oznaczania ilościowego analitów 3 Rys. 2. Chromatogram WWA wyizolowanych z gleby uzyskany z analizy GC (wz-wzorzec wewnętrzny) 1.2. Oznaczanie herbicydów z grupy triazyn: symazyny, atrazyny i propazyny metodą dodatku wzorca i techniką wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC) z detektorem spektrofotometrycznym UV Herbicydy z grupy triazyn stanowią grupę zanieczyszczeń środowiska bardzo często występujących zarówno w wodach powierzchniowych jak i gruntowych. Ich największe stężenia rejestruje się przeważnie w okresie spływu wód roztopowych oraz wykonywania zabiegów agrochemicznych. Z uwagi na ich bardzo dobrą rozpuszczalność w wodzie związki te znacznie szybciej przenikają do wód gruntowych i powierzchniowych. Zawartość herbicydów w wodzie można oznaczyć z wykorzystaniem metody HPLC w układzie faz odwróconych przy długości fali w zakresie 220-450 nm (najczęściej 270nm).

Przygotowanie próbek do oznaczania ilościowego analitów 4 symazyna atrazyna propazyna Rys.3. Budowa chemiczna omawianych herbicydów [http://www.alanwood.net/pesticides/class_herbicides.html#chlorotriazine_herbicides] Rys. 4. Chromatogram herbicydów wyizolowanych z wody bez dodatku wzorców Rys. 5. Chromatogram herbicydów wyizolowanych z wody po dodaniu mieszaniny wzorców

Przygotowanie próbek do oznaczania ilościowego analitów 5 Oznaczanie symazyny, antrazyny i propazyny w wodzie metodą dodatku wzorca przy użyciu chromatografii cieczowej (HPLC) z detektorem spektrofotometrycznym UV obejmuje następujące etapy: a) uśrednienie próbki wody: należy pobrać po 50 ml wody z próbki A oraz próbki B i wymieszać, b) odmierzenie dwu równoległych próbek analitycznych po 10 ml każda, c) dodanie roztworów wzorcowych do jednej z próbek analitycznych (o stężeniach: symazyna - 0,06 mg/ml, atrazyna 0,05 mg/ml, propazyna 0,04 mg/ml), d) wykonanie analiz chromatograficznych obu próbek analitycznych analiza właściwa, e) obliczenie wyników. Zakłada się, że stężenie poszczególnych analitów wodzie wynosi od 0,15 do 0,25 ppm. Stężenie analitów w próbce po dodaniu wzorców powinno być 1,5-2 razy większe od ich stężenia natywnego. Zadaniem studenta jest obliczenie wg powyższych danych ilości wzorców, jaką należy dodać do próbki analitycznej, przygotowanie próbki wody do analizy od punktu a do c oraz obliczenie zawartości herbicydów w próbce wody na podstawie załączonych wyników analizy (Rys.4 i 5). 1.3. Oznaczanie zawartości żelaza w próbkach wody metodą krzywej kalibracyjnej za pomocą spektrofotometrii UV-Vis Istniejące metody oznaczania żelaza w wodzie nie dają możliwości ilościowego określenia wszystkich postaci żelaza, w jakich występuje ono w przyrodzie. Obecnie znane metody analityczne pozwalają na określenie jedynie ogólnej zawartości żelaza w wodzie, występującego w postaci dwuwartościowego lub trójwartościowego żelaza. Do oznaczania ogólnej zawartości żelaza zastosowanie znajduje metoda kolorymetryczna, która polega na redukcji jonów Fe 3+ do Fe 2+ za pomocą hydroksylaminy i przeprowadzeniu reakcji barwnej z fenantroliną. Jony Fe 2+ tworzą z tym związkiem pomarańczowy kompleks. Intensywność zabarwienia jest proporcjonalna do stężenia żelaza w próbce i oznaczana jest spektrofotometrycznie metodą krzywej kalibracyjnej. Przeprowadzono pomiar absorbancji roztworów żelaza o znanym stężeniu (od 0 do 8 ppm) oraz próbki wody (x), w której należy oznaczyć jego zawartość. Wyniki zestawiono w tabeli 1. Zadaniem studenta jest obliczenie na podstawie danych zestawionych w tabeli 1 zawartości żelaza w próbce analizowanej wody metodą krzywej kalibracyjnej.

Przygotowanie próbek do oznaczania ilościowego analitów 6 Tabela 1. Wyniki pomiaru absorbancji w zależności od zawartości żelaza w próbce Stężenie [ppm] Absorbancja 0 0 0,4 0,00302 0,8 0,00681 1,6 0,01511 4 0,03812 8 0,05360 x 0,02565 1.4. Sporządzenie sprawozdania Sprawozdanie powinno zawierać: zwięzły opis stosowanych metod oznaczania ilościowego, schemat blokowy każdej analizy, schemat obliczeń stosowanych w poszczególnych metodach, obliczenie zawartości analitów wg danych podanych przez prowadzącego, wnioski. 2. Zakres wymaganych wiadomości podstawy chromatografii cieczowej i gazowej metoda krzywej kalibracyjnej, metoda dodatku wzorca, metoda wzorca wewnętrznego, obliczanie stężeń, w tym wyrażonych w ppm. LITERATURA 1. Stepnowski P., Synak E., Szafranek B., Kaczyński Z. Monitoring i analityka zanieczyszczeń w środowisku. Wydawnictwo Uniwersytetu Gdańskiego, Gdańsk 2010. 2. Szczepaniak W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN, W-wa, 1996. 3. Minczewski J., Marczewski Z., Chemia analityczna, tom III, PWN, W-wa, 1986. 4. Ewing G.W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN, W-wa, 1980. 5. Witkiewicz Z., Podstawy chromatografii, WNT, W-wa, 1995, 2005. UWAGA!!! Na zajęcia proszę przynieść kalkulator, ołówek, gumkę i linijkę oraz papier milimetrowy!!!