ĆWICZENIE 1 BUDWA I WŁAŚCIWŚCI AMINKWASÓW 1.1. CEL ĆWICZENIA Zapoznanie się z budową i właściwościami aminokwasów i białek. Identyfikacja aminokwasów za pomocą reakcji charakterystycznych. 1.2. AMINKWASY BIAŁKWE Aminokwasy są związkami organicznymi zawierającymi co najmniej jedną grupę karboksylową -C oraz co najmniej jedną grupę aminową -N 2. W zależności od położenia grupy aminowej względem karboksylowej wyróżniamy α-, β- i γ-aminokwasy. W przyrodzie występuje ponad 300 różnych aminokwasów, ale tylko 20 z nich wchodzi w skład białek (tzn. są kodowane w kodzie genetycznym). Wszystkie aminokwasy białkowe są α-aminokwasami, w których grupa aminowa znajduje się przy atomie węgla bezpośrednio są siadującym z grupą karboksylową (tzw. atomie węgla α). Wyjątek stanowi prolina, która posiada grupę aminową wbudowaną w pierścień. Aminokwasy niebiałkowe także często pełnią istotne funkcje biologiczne np. β-alanina wchodzi w skład koenzymu A, a kwas γ-aminomasłowy jest neuroprzekaźnikiem. Ciekawym aminokwasem niebiałkowym, który powstaje w wyniku modyfikacji istniejącego łańcucha polipeptydowego jest hydroksyprolina występująca w niektórych białkach (np. w kolagenie). gólna struktura α-aminokwasów oraz przykładowe β- i γ-aminokwasy zostały przedstawione na rys 1.1. Cα β α 2 N C 2 N C 2 2 N C 2 Cα C 2 C- C 2 C 2 R β γ α-aminokwas β-alanina kwas γ-masłowy (GABA) forma L pracowanie: M.Wielechowska Rys. 1.1. Aminokwasy Wśród białkowych aminokwasów tylko glicyna (R = ) jest achiralna. Wszystkie pozostałe aminokwasy mają cztery różne podstawniki przy węglu α (asymetrycznym), są zatem cząsteczkami chiralnymi, mogącymi występować jako enancjomery określane umownie jako L i D (projekcja Fischera). Wszystkie chiralne aminokwasy białkowe należą do szeregu L (wyjątek stanowi prolina). Z punktu widzenia konfiguracji absolutnej (projekcja Newmana wg zasady Cahna, Ingolda i Preloga) wszystkie aminokwasy na atomie węgla α mają konfigurację (S) (z wyjątkiem (R)-cysteiny) (rys. 1.2). Chiralne aminokwasy wykazują czynność optyczną, czyli skręcają płaszczyznę światła spolaryzowanego o pewien kąt, charakterystyczny dla danego aminokwasu. Znak skręcalności (() lub (-)) jest jedyną wielkością, która pozwala rozróżnić enancjomery danego aminokwasu, ponieważ wszystkie pozostałe właściwości fizyczne i chemiczne są identyczne. 1
2 N C C C C N 2 C 3 C C C C C 3 C 3 C 3 N 2 N 2 L-alanina D-alanina (S)-alanina (R)-alanina projekcja Fischera projekcja Newmana Rys. 1.2. Konfiguracja aminokwasów na przykładzie alaniny Niektóre aminokwasy takie jak izoleucyna i treonina, zawierają dodatkowe centrum chiralne i mogą występować jako diastereoizomery. Z białek wyizolować można tylko po jednym z czterech izomerów tych aminokwasów tj. (2S,3S)-izoleucynę i (2S,3R)-treoninę. Te izomery dla uproszczenia nazywa się L-izoleucyną i L-treoniną. Diasteroizomery (2S,3R)-izoleucyny i (2S,3S)-treoniny nazywają się L-alloizoleucyną i L-allotreoniną i nie są aminokwasami białkowymi (Rys. 1.3). Rys. 1.3. Stereoizomery izoleucyny i treoniny L-Aminokwasy, zależnie od zdolności organizmu do syntezy, dzieli się na endogenne oraz egzogenne. Człowiek może syntezować jedynie część podstawowego zestawu aminokwasów, które są nazywane aminokwasami endogennymi. Pozostałe (egzogenne) muszą być dostarczane z pożywieniem. Są to walina, leucyna, izoleucyna (o rozgałęzionych łańcuchach bocznych), fenyloalanina, tryptofan (zawierające pierścień aromatyczny), lizyna, treonina i metionina, a u dzieci także histydyna i arginina. D-Aminokwasy występują w stanie wolnym w ścianie komórkowej bakterii oraz w antybiotykach peptydowych i są nieprzyswajalne dla zwierząt i człowieka. Właściwości chemiczne aminokwasów wynikają z jednoczesnej obecności dwóch grup funkcyjnych aminowej i karboksylowej. Powoduje to, że aminokwasy są związkami amfoterycznymi, czyli mogą reagować zarówno jak kwasy i jak zasady. W roztworach wodnych pracowanie: M.Wielechowska 2
cząsteczki aminokwasów występują w formie niezjonizowanej tylko w ilości 0,1%, natomiast reszta cząsteczek to jony. Sumaryczny ładunek cząsteczki aminokwasu zależy od p środowiska. W roztworach wodnych występuje równowaga kwasowo zasadowa pomiędzy kationem i anionem oraz jonem obojnaczym (zwitterionem) powstałym w wyniku oddziaływania grup funkcyjnych w obrębie tej samej cząsteczki (rys. 1.4). Rys. 1.4. Równowaga kwasowo-zasadowa [1] W środowisku silnie kwasowym aminokwasy występują jako kationy, w środowisku silnie zasadowym jako aniony. Stałe równowagi (pk a ) tych przemian są charakterystyczne dla poszczególnych aminokwasów. Dodatkowo dla aminokwasów zasadowych i kwasowych określa się także pk a grup bocznych. Istnieje także takie p roztworu w którym ładunek sumaryczny cząsteczki jest równy zeru, a aminokwas występuje w formie jonu obojnaczego. Takie p nosi nazwę punktu izoelektrycznego (pi). Dla większości aminokwasów białkowych pi jest średnią arytmetyczną pk a1 i pk a2, a wartość pi bliskie jest 6. W przypadku aminokwasów posiadających dodatkowe grupy aminowe lub karboksylowe punkt izoelektryczny ulega przesunięciu z uwagi na dodatkową jonizację tych grup (tabela 1.1), pi dla aminokwasów kwaśnych jest średnią pk a1 i pk ar, dla aminokwasów zasadowych pi jest średnią pk a2 i pk ar. Stałe dysocjacji i wartość punktu izoelektrycznego wyznacza się przez miareczkowanie roztworami silnych kwasów i zasad (Rys. 1.5. i Rys. 1.6.). Tabela 1.1. Przykładowe wartości pi i pk a aminokwasów aminokwas pi pk a1 pk a2 pk ar Ala 6,02 2,35 9,87 Leu 5,98 2,33 9,74 Ser 5,68 2,19 9,21 is 7,74 1,80 9,33 6,04 Arg 10,76 1,82 8,99 12,48 Lys 9,74 2,16 9,06 10,54 Asp 2,87 1,99 9,90 3,90 Glu 3,22 2,10 9,47 4,07 pracowanie: M.Wielechowska 3
Rys. 1.5. Krzywa miareczkowania glicyny [2] Rys. 1.6. Krzywe miareczkowania Glu i is [2] pracowanie: M.Wielechowska 4
Stosuje się różne kryteria klasyfikacji aminokwasów. Biorąc pod uwagę budowę łańcuchów bocznych aminokwasy możemy podzielić na: alifatyczne obojętne, alifatyczne hydroksyaminokwasy, siarkowe, zasadowe, kwasowe i ich monoamidy oraz aminokwasy z pierścieniem aromatycznym. Poza wymienionymi grupami podziału znajduje się pozbawiona łańcucha bocznego glicyna. 1.2.1. Aminokwasy niepolarne Do tej grupy należą: alanina, walina, leucyna, izoleucyna oraz metionina zawierająca ugrupowanie SC 3. Do tej grupy zaliczana jest także prolina, która jest iminokwasem, a także najprostsza glicyna. Aminokwasy te zawierają alifatyczny, niepolarny, a w przypadku waliny, leucyny, izoleucyny i metioniny hydrofobowy łańcuch boczny, co ma istotne znaczenie w stabilizacji struktury przestrzennej białek. Wzory strukturalne aminokwasów niepolarnych przedstawione są na Rys. 1.7. N 3 C 3 - C 3 N 3 3 C - N 2 - Alanina (Ala, A) Walina (Val, V) Prolina (Pro, P) C 3 3 C - 3 C - S 3 C - C 3 N 3 N 3 N 3 Leucyna (Leu, L) Izoleucyna (Ile, I) Rys. 1.7. Aminokwasy niepolarne Metionina (Met, M) 1.2.2. Aminokwasy z pierścieniem aromatycznym Do tej grupy należą aminokwasy zawierające podstawnik aromatyczny (Rys. 1.8) czyli: fenyloalanina, tyrozyna i tryptofan. ydrofobowa fenyloalanina jest pochodną alaniny zawierająca jak nazwa wskazuje podstawnik fenylowy zamiast atomu wodoru. Tyrozyna zawiera dodatkowo grupę hydroksylową w pierścieniu, która jest dosyć reaktywna (właściwości kwasowe fenoli) i zmniejsza właściwości hydrofobowe. Tryptofan jest aminokwasem heteroaromatycznym zawierającym układ indolu, którego ugrupowanie N także osłabia hydrofobowość. becność pierścienia aromatycznego jest niezwykle istotne dla oznaczeń ilościowych, ponieważ warunkuje zdolność do pochłaniania promieniowania UV w zakresie 260 290 nm (właściwość ta jest wykorzystywana w metodach ilościowego oznaczania białka). pracowanie: M.Wielechowska 5
- - N 3 N 3 N 3 N Fenyloalanina (Phe, F) Tyrozyna (Tyr, Y) Tryptofan (Trp, W) - 1.2.3. Aminokwasy polarne obojętne Rys. 1.8. Aminokwasy aromatyczne Pięć aminokwasów zawiera grupy polarne, które zwiększają hydrofilowość i reaktywność (Rys. 1.9.). Alifatyczne hydroksyaminokwasy to seryna i treonina. Ich łańcuchy boczne są neutralne (pozbawione ładunku) i polarne dzięki obecności grupy hydroksylowej. Do tej grupy zalicza się także glutaminę i asparaginę, amidy aminokwasów kwasowych. Każdy z nich zwiera terminalne polarne ugrupowanie karboksyamidowe (-CN 2 ). Cysteina jest strukturalnie podobna do seryny, zawiera jednak bardziej reaktywną grupę sulfhydrylową (-S). Aminokwas ten łatwo ulega utlenieniu do cystyny (Cys) 2 z wytworzeniem wiązania disiarczowego i jest to bardzo ważna reakcja stabilizująca strukturę niektórych białek. C 3 - - N 3 N 3 Seryna (Ser, S) Treonina (Thr, T) 2 N N 3-2 N N 3 - Asparagina (Asn, N) Glutamina (Gln, Q) N 3 S - - C N 3 S S N 3 C - Cysteina (Cys, C) Cystyna (Cys) 2 1.2.4. Aminokwasy kwasowe pracowanie: M.Wielechowska Rys. 1.9. Aminokwasy polarne Do aminokwasów kwasowych (rys 1.10.) zalicza się kwas asparaginowy i kwas glutaminowy. W łańcuchach bocznych tych aminokwasów znajduje się dodatkowa grupa karboksylowa. 6
- - - - N 3 N 3 Kwas asparaginowy (Asp, D) Kwas glutaminowy (Glu, E) Rys. 1.10. Aminokwasy kwaśne Aminokwasy te często nazywane są asparaginianem i glutaminianem, ponieważ w fizjologicznym p występują jako sole. 1.2.5. Aminokwasy zasadowe Aminokwasami zasadowymi (rys. 1.11) są: lizyna (zawierająca na końcu łańcucha bocznego grupę aminową), arginina (zawierająca grupę guanidynową) oraz histydyna (posiadająca silnie zasadowy pierścień imidazolowy). Rys. 1.11. Aminokwasy zasadowe 1.3. WYKNANIE ĆWICZENIA Najbardziej charakterystyczną reakcją barwną α-aminokwasów jest reakcja z ninhydryną. Jest ona uwarunkowana równoczesną obecnością wolnej grupy aminowej i karboksylowej przy tym samym atomie węgla. W reakcjach barwnych uwarunkowanych budową łańcucha bocznego aminokwasu, pozytywne wyniki dają również związki nie będące aminokwasami, których cząsteczki zawierają takie same lub podobne grupy funkcyjne. Białka, zawierające z reguły wszystkie rodzaje aminokwasów, dają również pozytywne odczyny w reakcjach na łańcuchy boczne poszczególnych aminokwasów. Istnieje ponadto szereg reakcji związanych z charakterystycznymi cechami budowy białek. Do reakcji wykorzystujących obecność wiązań peptydowych lub specyficzną budowę przestrzenna cząsteczki należą: reakcja pracowanie: M.Wielechowska 7
Laboratorium Biochemii Ćwiczenie 1 biuretowa i reakcje oparte na wytracaniu białka z roztworu za pomocą różnych czynników denaturujących. Schemat postępowania w celu identyfikacji aminokwasów przy wykorzystaniu barwnych reakcji wskaźnikowych przedstawia rysunek 1.12. Rys. 1.12. Schemat identyfikacji aminokwasów za pomocą reakcji barwnych 8 pracowanie: M.Wielechowska
dczynniki: 1. 1% roztwory aminokwasów: glicyny (Gly), cystyny ([Cys] 2 ), fenyloalaniny (Phe), tyrozyny (Tyr), tryptofanu (Trp), histydyny (is), argininy (Arg) 2. 1% roztwór białka (albuminy lub kazeiny) 3. 0,2M bufor fosforanowy p 6,0 4. 6M Na 5. 10% Na 6. 1% α-naftol w etanolu 7. N 3 stężony 8. 2 S 4 stężony 9. 0,5% roztwór CuS 4 10. 20% kwas trichlorooctowy (TCA) 11. 2% roztwór octanu ołowiu(ii) (Uwaga! Silna trucizna!) 12. odczynnik Millona: 10 g rtęci metalicznej rozpuścić w 14 ml stężonego N 3 i rozcieńczyć dwukrotną objętością wody (Uwaga! Silna trucizna!) 13. roztwór chloranu(i) sodu 14. 36% aldehyd mrówkowy 15. 10% roztwór NaN 2 16. 1% roztwór kwasu sulfanilowego w 1M Cl 17. 10% roztwór Na 2 C 3 18. 1% roztwór ninhydryny w etanolu (96%) 1.3.1. REAKCJE GÓLNE AMINKWASÓW I BIAŁEK A. Reakcja z ninhydryną Aminokwasy pod wpływem ninhydryny ulegają utlenieniu do amoniaku, dwutlenku węgla i aldehydu uboższego o jeden atom węgla. W przypadku reakcji z α-aminokwasami istotną rolę odgrywa grupa karboksylowa. Kondensacja dwóch cząsteczek ninhydryny (zredukowanej i utlenionej) z amoniakiem w środowisku o p wyższym niż 4 daje związki o barwie fioletowoniebieskiej (purpura Rühemana), której natężenie jest proporcjonalne do zawartości azotu aminowego aminokwasu (rysunek 1.13). Reakcja ta znalazła liczne zastosowania zarówno w próbach jakościowych jak i w metodach ilościowego oznaczania aminokwasów. Dodatni wynik reakcji z ninhydryną (oprócz aminokwasów, peptydów i białek) dają także sole amonowe, aminocukry i amoniak. Z tego względu oznaczana próba musi być wolna od tych związków. Do czterech ponumerowanych próbówek odpipetować po 1 ml buforu fosforanowego o p 6 i dodać po 5 kropli roztworów: 1 badany; 2 dowolny aminokwas; 3 białko; 4 woda. Następnie dodać po 2 krople roztworu ninhydryny i ogrzewać przez kilka minut we wrzącej łaźni wodnej. Zanotować wyniki. pracowanie: M.Wielechowska 9
R N 3 C - R N 3 C 2 ninhydryna zredukowana ninhydryna p>4 N 3 N 2 N 4 3 2 Rys. 1.13. Reakcja aminokwasu z ninhydryną - B. Reakcja z kwasem azotowym(iii) Aminokwasy wydzielają azot cząsteczkowy w reakcji z kwasem azotowym(iii) w wyniku deaminacji (rysunek 1.14). Reakcję tę wykorzystuje się w gazometrycznej metodzie ilościowego oznaczania α-aminokwasów metodą Van Slyke a. 3 N C - R N C - Rys. 1.14. Schemat reakcji aminokwasów z kwasem azotowym(iii) R N 2 2 Do trzech ponumerowanych próbówek odpipetować po 2 ml 10% NaN 2 i 1 ml 2M C 3 C. Następnie dodać po 0,5 ml roztworów: 1 badanego, 2 glicyny, 3 wody. Dokładnie zamieszać. Wydzielanie się pęcherzyków gazu świadczy o powstawaniu azotu cząsteczkowego. C. Reakcja biuretowa (reakcja Piotrowskiego) Białka i peptydy zawierające co najmniej 2 wiązania peptydowe tworzą z jonami miedzi(ii) w środowisku zasadowym połączenia kompleksowe o barwie fioletowej (Rys.1.15.), natomiast produkty kompleksowego powiązania jonów miedzi(ii) z aminokwasami są niebieskie. Wyjątkiem jest histydyna, która ze względu na budowę swego łańcucha bocznego, daje produkt o barwie fioletowo-niebieskiej. Reakcja biuretowa znalazła zastosowanie w wielu metodach ilościowego oznaczania białek. Nazwa reakcji pochodzi od biuretu najmniejszego związku dającego pozytywny wynik w tej próbie (rys. 1.16.). Rys 1.15. Kompleks jonów miedzi z białkami pracowanie: M.Wielechowska Rys.1.16. Biuret 10
Do 0,5 ml badanego roztworu dodać 10 kropli 6 M Na i 2 krople 0,5% roztworu CuS 4. Przeprowadzić próby z wodą oraz roztworami histydyny, glicyny i albuminy. Zanotować wyniki. D. Wytrącanie białka za pomocą kwasu trichlorooctowego Jednym z powszechniej stosowanych odczynników odbiałczających jest kwas trichlorooctowy (TCA), który w stężeniu 2-10% powoduje wytrącenie większości białek z roztworu. Do 0,5 ml badanego roztworu dodać 3 krople 20% roztworu TCA. Przeprowadzić próby z roztworem albuminy i dowolnego aminokwasu. Zanotować wyniki. 1.3.2. REAKCJE CARAKTERYSTYCZNE NIEKTÓRYC AMINKWASÓW A. Reakcja na obecność aminokwasów siarkowych Związki posiadające grupy sulfhydrylowe (utlenione lub zredukowane), jak cysteina i cystyna, ogrzewane w środowisku zasadowym ulegają rozkładowi, a powstały anion siarczkowy daje z solami ołowiu(ii) czarny lub szary osad siarczku ołowiu(ii). Metionina, której atom siarki uczestniczy w utworzeniu wiązania tioeterowego, nie daje tej reakcji. Schematyczny przebieg reakcji cysteiny z jonami ołowiu(ii) przedstawia rysunek 1.17. Do czterech ponumerowanych próbówek odmierzyć po 10 kropli roztworów: 1 badanego, 2 cystyny, 3 dowolnego aminokwasu, 4 białka. Następnie dodać po15 kropli 6M Na i 5 kropliroztworu (C 3 C) 2 Pb. Próbkę ogrzewać przez kilka minut we wrzącej łaźni wodnej. Zanotować wyniki. 3 N C - Pb 2-3 N C - PbS S Rys. 1.17. Schemat przebiegu reakcji cysteiny z jonami ołowiu(ii) B. Reakcja ksantoproteinowa na obecność pierścienia benzenowego Pierścienie benzenowe różnych związków ulegają nitrowaniu (rysunek 1.18) pod wpływem tzw. mieszaniny nitrującej (stężony kwas azotowy i stężony kwas siarkowy w stosunku 1:3). Produkty nitrowania mają barwę od jasnożółtej do brązowej, znacznie intensywniejszą po zalkalizowaniu próby. Reakcja zachodzi z różną szybkością i wydajnością w zależności od budowy związku i warunków reakcji. Tyrozyna, tryptofan i białka zawierające te aminokwasy nitrują się łatwo, natomiast do nitrowania fenyloalaniny niezbędne jest intensywne ogrzewanie próbki. pracowanie: M.Wielechowska 11
3 N C - 3 N C - 3 N C - N 3 / 2 S 4 N 2 N 2 N 2 Rys. 1.18. Schemat reakcji ksantoproteinowej z udziałem tyrozyny Ponumerować 6 próbówek i odpipetować po 0,5 ml roztworów: 1 badanego, 2 tyrozyny, 3 tryptofanu, 4 fenyloalaniny, 5 histydyny, 6 białka, 7 glicyny. Dodać 2 krople stężonego kwasu azotowego i 6 kropli stężonego kwasu siarkowego. Mieszaninę ogrzewać przez kilka minut we wrzącej łaźni wodnej, a następnie ostudzić i ostrożnie dodać 2 ml 6M roztworu Na (wlot probówki skierować pod wyciąg). Gdyby zabarwienie nie wystąpiło, reakcję powtórzyć, ogrzewając próbę w płomieniu mikropalnika do momentu pojawienia się brązowych par tlenków azotu (kilka minut). Zanotować wyniki. C. Reakcja Millona na obecność fenoli Związki zawierające grupy fenolowe tworzą w środowisku kwasu azotowego w temperaturze 40 C czerwone kompleksy nitrofenoli z jonami rtęci(ii) i rtęci(i). Jest to reakcja charakterystyczna dla monofenoli, a więc spośród aminokwasów tylko dla tyrozyny. Służy do ilościowego oznaczania tyrozyny metodą fotometryczną. Ponumerować cztery próbówki i dodać po 10 kropli roztworów: 1 badanego, 2 tyrozyny, 3 dowolnego aminokwasu, 4 białka. Następnie dodać po 5 kropli odczynnika Millona i ogrzać kilka minut we wrzącej łaźni wodnej. Zanotować wyniki. D. Wykrywanie układu indolowego w tryptofanie W środowisku kwaśnym tryptofan reaguje z aldehydami, między innymi z kwasem glioksalowym C-C (rekcja Adamkiewicza-opkinsa (inna nazwa reakcja opkinsa-colé)) lub aldehydem mrówkowym (reakcja Voisseneta), dając barwne produkty kondensacji (Rys.1.19). Ponumerować cztery próbówki i dodać po 10 kropli roztworów: 1 badanego, 2 tryptofanu, 3 dowolnego aminokwasu, 4 białka oraz po 4 krople roztworu kwasu glioksalowego lub aldehydu mrówkowego. Następnie wprowadzić ostrożnie po wewnętrznej ściance probówki około 0,5 ml stężonego kwasu siarkowego tak, aby nie wymieszać kwasu z roztworem wodnym. W obecności pochodnych indolu na granicy faz powstanie fioletowe zabarwienie. Zanotować wyniki. pracowanie: M.Wielechowska 12
3 N C - N 2 S 4 3 N C - 3 N C N N C - 3 N C - N 2 S 4 3 N C - N N 3 N C - Rys. 1.19. Schemat kondensacji tryptofanu z kwasem glioksalowym i aldehydem mrówkowym E. Reakcja Pauly ego na obecność histydyny Pochodne imidazolu, jak również fenole i aminy aromatyczne, dają z solami diazoniowymi w środowisku zasadowym barwne produkty sprzęgania. Pauly zastosował w tym celu kwas diazobenzenosulfonowy, który przygotowuje się bezpośrednio przed użyciem przez diazowanie kwasu sulfanilowego kwasem azotowym(iii) na zimno. istydyna, tyrozyna i białka dają w reakcji Pauly ego jednakowe, krwistoczerwone zabarwienie. Zmieszać w probówce po 2 ml roztworów kwasu sulfanilowego i azotanu(iii) sodu i zawartość probówki wytrząsać przez kilka minut chłodząc ją jednocześnie pod bieżącą wodą. Następnie ponumerować pięć próbówek i odmierzyć do każdej po 5 kropli odczynnika diazowanego i kolejno po 5 kropli roztworów: 1 badanego, 2 histydyny, 3 tyrozyny, 4 dowolnego aminokwasu, 5 białka oraz po 10 kropli roztworu Na 2 C 3. Zanotować wyniki. F. Reakcja na obecność argininy (Sakaguchi) Grupa guanidynowa argininy z α-naftolem w obecności utleniacza chloranu(i) sodu w środowisku zasadowym tworzy czerwono-pomarańczowy kompleks (Rys. 1.20). W razie dłuższego działania chloranu(i) sodu następuje odbarwienie roztworu, ponieważ barwny produkt ulega dalszym przemianom. Dodatek mocznika może stabilizować utworzony barwnik. Ponumerować 4 próbówki i odpipetować po 1 ml roztworów: 1 badanego, 2 argininy, 3- dowolnego aminokwasu, 4 białka. Następnie dodać kolejno po 0,5 ml 10% Na, 2 krople 1% etanolowego roztworu α-naftolu oraz 2 krople roztworu NaCl. Wymieszać zawartość i zanotować pracowanie: M.Wielechowska 13
wyniki. 2 N N N N 3 C - NaBr 2 N N N 3 C - NaBr N 3 1.4. PRZEDSTAWIENIE WYNIKÓW Rys. 1.20. Schemat reakcji argininy z α-naftolem Uzyskane podczas wykonanych doświadczeń wyniki należy przedstawić w formie zestawienia (tabela 1.2). Uwaga! Wszystkie reakcje należy wykonywać dla roztworu badanego (otrzymanego od prowadzących zajęcia) oraz dla odpowiednich roztworów wzorcowych. Tabela 1.2 Reakcja Gly (Cys) 2 Phe Z ninhydryną Badana próbka 1.5. PYTANIA I ZADANIA 1. Dokonaj klasyfikacji aminokwasów w oparciu o różne kryteria ich podziału: (np. białkowe/niebiałkowe, egzogenne/endogenne, budowa łańcucha bocznego). 2. Narysuj formę L i D wskazanego aminokwasu. 3. Wyjaśnij co to jest punkt izoelektryczny. Podaj przykłady aminokwasów znacznie różniących się od siebie wartościami pi. 4. Narysuj wzory aminokwasów: chiralnego i achiralnego. Podaj ich nazwy i skróty trzyliterowe. 5. pisz reakcję wykorzystywaną w ilościowym oznaczaniu aminokwasów metodą Van Slyke a. 6. Wyjaśnij na czym polega reakcja Pauly ego i jakie aminokwasy można przy jej użyciu wykrywać. 7. Zaproponuj schemat postępowania służący do wykrycia tryptofanu w próbie badanej. 8. Ile gram CuS 4 *5 2 należy odważyć aby przygotować 100 ml roztworu 1%? 9. Ile gram Na należy odważyć aby przygotować 150 ml roztworu 6 M? 10. Ile gram kwasu sulfanilowego i ile ml stężonego kwasu solnego należy użyć do przygotowania 150 ml 1% w/v roztworu w 1M Cl? Gęstość stężonego (36%) kwasu solnego wynosi 1,18 g/ml. 1.6. LITERATURA [1] Berg, J.M.; Stryer, L.; Tymoczko, J.L. Biochemia, 6 edycja, PWN 2011 [2] Garrett, R..; Grisham, C.M. Biochemistry, 5 th edition, 2012 pracowanie: M.Wielechowska 14