PCR PCR. Model replikacji semikonserwatywnej

Podobne dokumenty
PCR PCR. Model replikacji semikonserwatywnej

KŁOPOTY Z POLIMERAZĄ KŁOPOTY Z POLIMERAZĄ KŁOPOTY Z POLIMERAZĄ. SPECYFICZNOŚĆ (Specificity)

Biologia medyczna, materiały dla studentów

PCR - ang. polymerase chain reaction

Powodzenie reakcji PCR wymaga właściwego doboru szeregu parametrów:

PCR łańcuchowa reakcja polimerazy

PCR - ang. polymerase chain reaction

PCR. Aleksandra Sałagacka

POLIMERAZY DNA- PROCARYOTA

PCR - ang. polymerase chain reaction

TaqNovaHS. Polimeraza DNA RP902A, RP905A, RP910A, RP925A RP902, RP905, RP910, RP925

Genetyczne modyfikowanie organizmów Kierunek OCHRONA ŚRODOWISKA, II rok semestr letni 2015/16

PCR - ang. polymerase chain reaction

Glimmer umożliwia znalezienie regionów kodujących

POLIMERAZY DNA- PROCARYOTA

Markery klasy II -Polimorfizm fragmentów DNA (na ogół niekodujących): - RFLP - VNTR - RAPD

SCENARIUSZ LEKCJI BIOLOGII Z WYKORZYSTANIEM FILMU PCR sposób na DNA.

Definicje. Białka rekombinowane (ang. recombinant proteins, r-proteins) Ukierunkowana mutageneza (ang. site-directed/site-specific mutagenesis)

TaqNova-RED. Polimeraza DNA RP20R, RP100R

Genetyka, materiały dla studentów Pielęgniarstwa

Farmakogenetyka Biotechnologia Medyczna I o

DNA i RNA ENZYMY MODYFIKUJĄCE KOŃCE CZĄSTECZEK. DNA i RNA. DNA i RNA

Replikacja DNA. Materiały dydaktyczne współfinansowane ze środków Unii Europejskiej w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego.

GRADIENT TEMPERATUR TOUCH DOWN PCR. Standardowy PCR RAPD- PCR. RealTime- PCR. Nested- PCR. Digital- PCR.

Biologia Molekularna z Biotechnologią ===============================================================================================

Prowadzący: dr Lidia Boss znacznik fluorescencyjny (np. SYBR Green II)

Wstęp. Jak programować w DNA? Idea oraz przykład. Problem FSAT charakterystyka i rozwiązanie za pomocą DNA. Jak w ogólności rozwiązywać problemy

Biologia Molekularna Podstawy

Instrukcja ćwiczeń Biologia molekularna dla II roku Analityki Medycznej. Reakcja odwrotnej transkrypcji. Projektowanie starterów do reakcji PCR.

Mieszanina trójfosforanów deoksyrybonukleotydów (dntp: datp, dgtp, dctp, dttp) Bufor reakcyjny zapewniający odpowiednie warunki reakcji

Zarówno u organizmów eukariotycznych, jak i prokariotycznych proces replikacji ma charakter semikonserwatywny.

Najważniejsze z nich to: enzymy restrykcyjne wektory DNA inne enzymy np. ligazy, fosfatazy, polimerazy, nukleazy

2. Enzymy pozwalające na manipulację DNA a. Polimerazy DNA b. Nukleazy c. Ligazy

Najważniejsze z nich to: enzymy restrykcyjne wektory DNA inne enzymy np. ligazy, fosfatazy, polimerazy, kinazy, nukleazy

Mikrosatelitarne sekwencje DNA

Klonowanie molekularne Kurs doskonalący. Zakład Geriatrii i Gerontologii CMKP

Inżynieria Genetyczna ćw. 3

7. Metody molekularne jako źródło informacji botanicznej i lichenologicznej

Najważniejsze z nich to: enzymy restrykcyjne wektory DNA inne enzymy np. ligazy, fosfatazy, polimerazy, nukleazy

METODY MOLEKULARNE STOSOWANE W TAKSONOMII

Kwasy Nukleinowe. Rys. 1 Struktura typowego dinukleotydu

Ćwiczenie 3 PCR i trawienie DNA enzymami restrykcyjnymi

Inżynieria genetyczna- 6 ECTS

WPROWADZENIE DO GENETYKI MOLEKULARNEJ

Ćwiczenie 3 Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6 metodą PCR w czasie rzeczywistym (rtpcr) przy użyciu sond typu TaqMan

wykład dla studentów II roku biotechnologii Andrzej Wierzbicki

Badanie próbek żywności na obecność Genetycznie Zmodyfikowanych Organizmów. Rozdział 9

Metody odczytu kolejności nukleotydów - sekwencjonowania DNA

Metody: PCR, MLPA, Sekwencjonowanie, PCR-RLFP, PCR-Multiplex, PCR-ASO

WPROWADZENIE DO GENETYKI MOLEKULARNEJ

Prokariota i Eukariota

TECHNIKI ANALIZY RNA TECHNIKI ANALIZY RNA TECHNIKI ANALIZY RNA

Hybrydyzacja kwasów nukleinowych

Hybrydyzacja kwasów nukleinowych

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

AmpliQ 5x HOT EvaGreen HRM Mix (ROX)

AmpliTest Babesia spp. (PCR)

REPLIKACJA, NAPRAWA i REKOMBINACJA DNA

Biologia medyczna II, materiały dla studentów kierunku lekarskiego

dr hab. Beata Krawczyk Katedra Mikrobiologii PG

WYBRANE RODZAJE REAKCJI PCR. RAPD PCR Nested PCR Multipleks PCR Allelo-specyficzny PCR Real Time PCR

Ligazy. Zastosowanie ligazy w inżynierii genetycznej:

Generator testów Biochemia wer / Strona: 1

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Biologia molekularna genu - replikacja

Numer pytania Numer pytania

Nośnikiem informacji genetycznej są bardzo długie cząsteczki DNA, w których jest ona zakodowana w liniowej sekwencji nukleotydów A, T, G i C

Ćwiczenia 1 Wirtualne Klonowanie Prowadzący: mgr inż. Joanna Tymeck-Mulik i mgr Lidia Gaffke. Część teoretyczna:

AmpliTest Salmonella spp. (Real Time PCR)

Dr. habil. Anna Salek International Bio-Consulting 1 Germany

Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6: wykrywanie liczby kopii genu

Przykładowe zadania. przygotowujące do egzaminu maturalnego

Zastosowanie transferu energii rezonansu fluorescencji (FRET) w ilościowej metodzie oznaczania ekspresji genów na przykładzie sondy TaqMan

AmpliQ 5x HOT EvaGreen qpcr Mix Plus (ROX)

Zastosowanie metody RAPD do różnicowania szczepów bakteryjnych

Wykład 14 Biosynteza białek

Ampli-LAMP Babesia canis

Zarys biologii molekularnej genu. Replikacja i stabilność genomu

AmpliTest GMO screening-nos (Real Time PCR)

Metody analizy DNA. molekularnych (np. hybrydyzacja, ligacja czy PCR) zostały zaadaptowane na potrzeby analizy aberracji chromosomowych.

Jaka jest lokalizacja genu na chromosomie? Jakie jest jego sąsiedztwo?

Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6: wykrywanie liczby kopii genu

Biologia molekularna genu. Replikacja i stabilność genomu

Inżynieria genetyczna Ćwiczenie 3

ŁAŃCUCHOWA REAKCJA POLIMERAZY Z ANALIZĄ W CZASIE RZECZYWISTYM (RT-PCR) REAL-TIME POLYMERASE CHAIN REACTION (RT-PCR)

Substancje stosowane do osadzania enzymu na stałym podłożu Biotyna (witamina H, witamina B 7 ) Tworzenie aktywnej powierzchni biosensorów

Podstawy inżynierii genetycznej

Ćwiczenia 1 Wirtualne Klonowanie. Prowadzący: mgr Anna Pawlik i mgr Maciej Dylewski. Część teoretyczna:

W związku z wydzieleniem pakietów i dodaniem nowych zmianie ulegają zapisy SIWZ.

Transformacja pośrednia składa się z trzech etapów:

Informacje dotyczące pracy kontrolnej

DNA - niezwykła cząsteczka. Tuesday, 21 May 2013

PL B1. UNIWERSYTET PRZYRODNICZY W LUBLINIE, Lublin, PL BUP 26/11

AmpliTest TBEV (Real Time PCR)

AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR)

ODCZYNNIKI DO BIOLOGII MOLEKULARNEJ

PL B1. Sposób amplifikacji DNA w łańcuchowej reakcji polimerazy za pomocą starterów specyficznych dla genu receptora 2-adrenergicznego

DHPLC. Denaturing high performance liquid chromatography. Wiktoria Stańczyk Zofia Kołeczko

PL B1. UNIWERSYTET PRZYRODNICZY W LUBLINIE, Lublin, PL BUP 04/14. SYLWIA OKOŃ, Dąbrowica, PL KRZYSZTOF KOWALCZYK, Motycz, PL

Transkrypt:

PCR Łańcuchowa reakcja polimerazy (Polymerase Chain Reaction) amplifikacja (namnożenie wielu kopii cząsteczki kwasu nukleinowego) w pierwotnej wersji wykorzystująca model replikacji semikonserwatywnej występującej in vivo w komórkach Eucaryota służy do powielania wybranych fragmentów kwasów nukleinowych in vitro Model replikacji semikonserwatywnej zakłada, że obie nici macierzystej cząsteczki DNA są matrycą dla nowych, dosyntetyzowywanych nici REPLIKACJA każda z dwóch cząsteczek DNA powstałych po replikacji zawiera jedną nić starą oraz jedną nić nową PCR 1950 opisanie pierwszej polimerazy (Kornberg) 1960 synteza pierwszych oligonukleotydów (Khorana) 1970 odkrycie termostabilnej polimerazy Taq otrzymanie pierwszej polimerazy, która nie ma właściwości nukleazy (buduje lecz nie niszczy)- (Klenow) 1980 opracowanie reakcji PCR (1984) i rozpowszechnienie jej przydatności 1993 Nagroda Nobla Brock & Freeze, 1969 1

Nazewnictwo Matryca: (matrix) DNA/RNA/ssDNA, który ma zostać powielony Starter (primer) sens/antysens; forvard/reverse Denaturacja matrycy (denaturation) Hybrydyzacja starterów/ przyłączanie starterów do matrycy (annealing/ primer hybrydisation) Wydłużanie starterów- (extension) Synteza nowej nici- (amplification) Uzyskany produkt- amplikon (amplicon) PCR matryca DNA startery MgCl 2 Taq polimeraza DNA bufor dttp datp dgtp dctp -trifosforany deoksyrybonukleozydów Helikaza rozplata podwójną strukturę DNA 2

Widełki replikacyjne CYKL 1 denaturacja 94 C jednoniciowa matryca DNA Replikacja na nici wiodącej Polimerazy DNA przyłączają deoksynukleozydotrójfosforany zawsze od końca do Uwalnia się energia 3

Replikacja na nici opóźnionej Poszczególne fragmenty łączone są ze sobą przy pomocy ligazy Fragmenty Okazaki CYKL 1 przyłączenie startera do matrycy 40-65 C starter F starter R CYKL 1 wydłużanie startera 72 C starter 1 starter 2 powstają cząsteczki dłuższe od sekwencji docelowej 4

CYKL 2 denaturacja matrycy 94 C matryca DNA, który powstał w cyklu 1 CYKL 2 przyłączenie startera do matrycy 40-65 C CYKL 2 wydłużanie starterów 72 C powstają cząsteczki dłuższe od sekwencji docelowej powstają cząsteczki o długości sekwencji docelowej 5

Długość amplifikowanego fragmentu będzie zależna od miejsca przyłączenia starterów do matrycy W reakcji PCR amplifikuje się fragment ograniczony położeniem starterów na obu niciach Forward Reverse Długość amplifikowanego fragmentu= długość amplikonu 94 C 94 C 94 C 94 C 72 C 72 C 72 C TEMPERATURA 55 C 55 C 55 C JEDEN CYKL CZAS 6

Wydajność reakcji PCR http://www.calabriadna.com/ NUMER CYKLU LICZBA KOPII DNA 0 1 1 2 2 4 3 8 4 16 5 32 6 64 7 128 8 256 9 512 10 1 024 11 2 048 12 4 096 13 8 192 14 16 384 15 32 768 16 65 536 17 131 072 18 262 144 19 524 288 20 1 048 576 21 2 097 152 22 4 194 304 23 8 388 608 24 16 777 216 25 33 554 432 26 67 108 864 27 134 217 728 28 268 435 456 29 536 870 912 30 1 073 741 824 31 1 400 000 000 32 1 500 000 000 33 1 550 000 000 34 1 580 000 000 AMOUNT OF DNA 1600000000 1400000000 1200000000 1000000000 800000000 600000000 400000000 200000000 0 0 5 10 15 20 25 30 35 PCR CYCLE NUMBER Startery- Oligonukleotydy Długość: 16-30 zasad Procent zasad G/C: 20-80 (optimum- 50) Temperatura topnienia (Tm) Melting Temperature to temperatura dysocjacji dupleksu starter-matryca- powinna być identyczna lub bardzo zbliżona Temperaturę topnienia oligonukleotydu można obliczyć wg różnych reguł: reguła 2+4 Tm=2 o C(A+T)+4 o C(G+C) -ATA GGT CTA ACC TGG TTC CAG- A+T=11; G+C=10 Tm= 2*11+4*10=22+40=66 o C reguła fizyczna (termodynamiczna), uwzględniająca zjawiska entalpii i entropii oraz stężenie soli poszczególnych jonów (Na+) oraz % poszczególnych zasad -ATA GGT CTA ACC TGG TTC CAG- Tm=59,5 o C 7

Startery Dopasowanie do matrycy (maximum complementarity) Mamy 4 możliwe nukleotydy A,C,G,T Prawdopodobieństwo przyłączenia do matrycy każdego z nich wynosi tyle samo:0.25 (1/4) zdarzenie Prawdopodobieństwo A 0.25 = 0.25 AT 0.25 x 0.25 = 0.0625 ATA 0.25 x 0.25 x 0.25 = 0.015625 ATAGG (0.25) 5 = 0.0009765 ATAGGTCTAAC (0.25) 11 = 0.000002384 ATAGGTCTAACCTGGT (0.25) 16 =0.0000000002384 Wraz z wydłużaniem się sekwencji startera spada prawdopodobieństwo jego przyłączenia w miejscu innym, niż zaplanowane Startery Dopasowanie do matrycy (maximum complementarity) -AGCGCTTCATCCTAAGAAGC- -TCGCGAAGTAGGATTCTTCGTAGGCATAGCAC- oligonukleotyd matryca -AGCACTTCATCCTACGAAGC- -TCGCGAAGT-GGATTCTTCGTAGGCATAGCAC- -AGCRCTTCATCCTAAGAAGC- -TCGCGAAGT-GGATTCTTCGTAGGCATAGCAC- oligonukleotyd matryca oligonukleotyd zdegenerowany matryca -AGCRCTTCATCCTAAGAAGC- -AGCACTTCATCCTAAGAAGC- -AGCGCTTCATCCTAAGAAGC- Startery Komplementarność końców (-maximum complementarity)- startery muszą wykazywać dopasowanie na końcu do matrycy, ale nie mogą wykazywać dopasowania do drugiego startera z pary! Tworzą wtedy struktury dimeryczne (primer dimer) -AGCGCTTCATCCTAAGAAGC- -TCGCGAAGTAGGATTCTTCTTAGGCATAGCAC- Starter F: -GCTTAGCTTTGCATG- Starter R: -AGCATGCAAAGCTTC- Starter R: -AGCATGCAAAGCTTC- Starter F: -GCTTAGCTTTGCATG- 8

Startery Stabilność końców (-terminal stability)- dotyczy pięciu ostatnich zasad od końca, które determinują dopasowanie startera do matrycy. Stabilność określa parametr δg (kcal/mol)- tabela parametrów termodynamicznych i pokazuje siłę wiązania się startera z matrycą. Koniec (GCGCG) będzie wykazywał zawsze ok 6x większą stabilność od końca (TATAT) i może wiązać się z matrycą niespecyficznie! Dlatego należy unikać nagromadzenia zasad G/C na końcach starterów Startery nie mogą tworzyć struktur spinki do włosów (hairpin) -AGCGCTTCCCCCCCCCAGCGCT- -AGCGCT CCCC C C -TCGCGA CCC C PCR Song Lyrics The PCR Song by Scientists for Better PCR There was a time when to amplify DNA, You had to grow tons and tons of tiny cells. (Oooh) Then along came a guy named Dr. Kary Mullis, Said you can amplify in vitro just as well. Just mix your template with a buffer and some primers, Nucleotides and polymerases too. Denaturing, annealing, and extending, Well it s amazing what heating and cooling and heating will do. [Chorus] PCR when you need to detect mutation (detect mutation) PCR when you need to recombine (recombine) PCR when you need to find out who the daddy is (who s your daddy?) PCR when you need to solve a crime (solve a crime) 9