POLITECHNIKA GDAŃSKA

Podobne dokumenty
ĆWICZENIE 3 LUMINOFORY ORAZ ZJAWISKA WYGASZANIA LUMINESCENCJI

Techniki analityczne. Podział technik analitycznych. Metody spektroskopowe. Spektroskopia elektronowa

PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

ĆWICZENIE 3 LUMINOFORY ORGANICZNE I NIEORGANICZNE.

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

PRACOWNIA PODSTAW BIOFIZYKI

X + hv X* X + ciepło + hv. Ze względu na czynnik, który wywołuje to promieniowanie, luminescencję dzielimy na:

rodzaje luminescencji (czym wywołana?)

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Instrukcje opracowane przez: dr inż. Urszulę Kucharską dr hab. inż. Joannę Leszczyńską

Ćwiczenie 1. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp. Część teoretyczna.

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok OAM

Metody spektroskopowe:

SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie ryboflawiny.

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

PRODUKTY CHEMICZNE Ćwiczenie nr 3 Oznaczanie zawartości oksygenatów w paliwach metodą FTIR

Cel ćwiczenia: Celem ćwiczenia jest zapoznanie z właściwościami optycznymi tkanek i wybranych chromoforów.

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

SKUTECZNOŚĆ IZOLACJI JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie Al w postaci chelatowego kompleksu glinu z moryną.

Zakresy promieniowania. Światło o widzialne. długość fali, λ. podczerwień. ultrafiolet. Wektor pola elektrycznego. Wektor pola magnetycznego TV AM/FM

EKSTRAHOWANIE KWASÓW NUKLEINOWYCH JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

ANALIZA INSTRUMENTALNA

Metody optyczne w medycynie

METODYKA POMIARÓW WIDM FLUORESCENCJI (WF) NA MPF-3 (PERKIN-HITACHI)

Jan Drzymała ANALIZA INSTRUMENTALNA SPEKTROSKOPIA W ŚWIETLE WIDZIALNYM I PODCZERWONYM

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

ĆWICZENIE 2 WYZNACZANIE WYDAJNOŚCI KWANTOWYCH ORAZ CZASÓW ZANIKU LUMINESCENCJI ZWIĄZKÓW W ROZTWORZE ORAZ CIELE STAŁYM, CZ. II.

Pracownia Spektroskopii Molekularnej A Wydział Chemii Uniwersytetu Warszawskiego. Semestr zimowy 2010/2011. Widma fluorescencyjne chininy

Kierunek: TOWAROZNAWSTWO, sem.iii ĆWICZENIE 8

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

SPEKTROFOTOMETRIA UV-Vis. - długość fali [nm, m], - częstość drgań [Hz; 1 Hz = 1 cykl/s]

Dobór warunków dla poprawnego pomiaru widm emisji i wydajności kwantowych emisji

Ćwiczenie 30. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna w zakresie UV-VIS, prawa absorpcji, budowa i. Wstęp

Widmo promieniowania

Ćwiczenie 31. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp

SPEKTROMETRIA CIEKŁOSCYNTYLACYJNA

2. Metody, których podstawą są widma atomowe 32

SPEKTROSKOPIA MOLEKULARNA 2015/16 nazwa przedmiotu SYLABUS A. Informacje ogólne

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Potencjometryczna metoda oznaczania chlorków w wodach i ściekach z zastosowaniem elektrody jonoselektywnej

ĆWICZENIE NR 3 POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE

Katedra Chemii Nieorganicznej i Analitycznej Uniwersytet Łódzki ul.tamka 12, Łódź

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

PRACOWNIA PODSTAW BIOFIZYKI

Atomowa spektrometria absorpcyjna i emisyjna

Spektroskopia emisyjna. Fluorescencja i Fosforescencja

Repeta z wykładu nr 11. Detekcja światła. Fluorescencja. Eksperyment optyczny. Sebastian Maćkowski

Fizykochemiczne metody w kryminalistyce. Wykład 7

Instrukcja do ćwiczeń

Ćwiczenie 3 Pomiar równowagi keto-enolowej metodą spektroskopii IR i NMR

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

SF5. Spektroskopia absorpcyjna i emisyjna cząsteczek organicznych

PRACOWNIA CHEMII. Równowaga chemiczna (Fiz2)

Spektrofotometria ( SPF I, SPF II ) Spektralna analiza emisyjna ( S ) Fotometria Płomieniowa ( FP )

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

MIKROSKOP FLUORESCENCYJNY. POMIAR WYDAJNOŚCI KWANTOWEJ FLUORESCENCJI ANTRACENU, PERYLENU ORAZ 9,10-DIFENYLOANTRACENU W ROZTWORZE

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Spektroskopia molekularna. Spektroskopia w podczerwieni

Ćw. 11 wersja testowa Wyznaczanie odległości krytycznej R 0 rezonansowego przeniesienia energii (FRET)

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Nowoczesne metody analizy pierwiastków

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

Zakres wymagań przedmiotu Analiza instrumentalna

WYZNACZANIE ODLEGŁOŚCI KRYTYCZNEJ POMIĘDZY CZĄSTECZKAMI DONORA I AKCEPTORA W PROCESIE REZONANSOWEGO PRZENIESIENIA ENERGII (FRET)

KINETYKA INWERSJI SACHAROZY

Mikroskopia fluorescencyjna

Rozświetlone laboratorium. mgr inż. Aleksandra Korbut dr inż. Ewelina Ortyl dr inż. Sonia Zielińska Jerzy Dąbrowski

PODSTAWY LABORATORIUM PRZEMYSŁOWEGO. ĆWICZENIE 3a

WYZNACZANIE PARAMETRÓW WYGASZANIA FLUORESCENCJI AKRYDYNY PRZEZ ZWIĄZKI TIOORGANICZNE METODAMI STACJONARNYMI (A) I CZASOWO ROZDZIELCZYMI (B)

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Przewaga klasycznego spektrometru Ramana czyli siatkowego, dyspersyjnego nad przystawką ramanowską FT-Raman

Spektroskopowe metody identyfikacji związków organicznych

Ćw. 5 Absorpcjometria I

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE

POLICJA KUJAWSKO-POMORSKA WYBRANE ZJAWISKA OPTYKI W BADANIACH KRYMINALISTYCZNYCH

Analiza instrumentalna

POLITECHNIKA GDAŃSKA

Laboratorium Podstaw Biofizyki

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Zastosowanie spektroskopii UV/VIS do określania struktury związków organicznych

spektropolarymetrami;

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

Derywatyzacja tioli (ćwiczenia I i II)

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

Polarymetryczne oznaczanie stężenia i skręcalności właściwej substancji optycznie czynnych

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

Zakres wymagań z przedmiotu CHEMIA ANALITYCZNA dla II roku OML

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Transkrypt:

PLITECHIKA GDAŃSKA WYDZIAŁ CHEMICZY KATEDRA TECHLGII CHEMICZEJ Ćwiczenia laboratoryjne CHEMIA I TECHLGIA MATERIAŁÓW BARWYCH SPEKTRFLURYMETRIA GDAŃSK RK 2011

1. Cel ćwiczenia Celem ćwiczenia jest zapoznanie Studentów z podstawami fizycznymi zjawiska fluorescencji oraz właściwościami fizykochemicznymi substancji wykazujących fluorescencję. Zilustrowane zostaną także czynniki wpływające na intensywność fluorescencji. Studenci zapoznają się z podstawowymi czynnościami i sprzętem stosowanym w analizie ilościowej przy wykorzystaniu spektrofluorymetrii. Zostaną zaprezentowane możliwości wykorzystania odpowiedniego oprogramowania spektrofluorymetru do obróbki uzyskanych danych i prowadzenia pomiarów w różnych trybach. 2. Wprowadzenie 2.1. Informacje ogólne Luminescencją określamy ogólnie promieniowanie, które nie jest pochodzenia termicznego. W zależności od rodzaju wzbudzenia można wyróżnić: fotoluminescencję, katodoluminescencję, radioluminescencję, rentgenoluminescencję, elektroluminescencję, tryboluminescencję, sonoluminescencję, chemiluminescencję, elektrochemiluminescencję oraz bioluminescencję. Fotoluminescencja, będąca tematem ćwiczenia, jest luminescencją wywołaną absorpcją promieniowania świetlnego w zakresie ultrafioletowym i widzialnym. W zależności od czasu pomiędzy pochłonięciem a wyemitowaniem energii wyróżnia się fluorescencję i fosforescencję. Z fluorescencją mamy do czynienia, gdy od pochłonięcia światła przez cząsteczkę do emisji nie upłynęło więcej niż 10-8 s. Jeśli czas pomiędzy pochłonięciem energii a jej emisją jest dłuższy niż 10-8 s mówimy wówczas o fosforescencji. Zjawisko fluorescencji i fosforescencji ilustruje diagram Jabłońskiego. Diagram Jabłońskiego 2

Zdolność luminescencji posiada wiele substancji m.in. cząsteczki aromatyczne i heterocykliczne, cząsteczki licznych barwników (np. fluoresceina, eozyna), cząsteczki o znaczeniu biologicznym (aromatyczne aminokwasy, zasady nukleinowe, chlorofil i karotenoidy oraz niektóre witaminy i hormony). Przykłady związków wykazujących fluorescencję zamieszczono poniżej. H 2 C 2 H 5 H 2 CH 3 rywanol -metyloakrydon antracen perylen H (C 2 H 5 ) 2 + (C 2 H 5 ) 2 Cl _ CH CH fluoresceina rodamina B CH=CH 2 CH 3 H CH chinina kumaryna Przykłady związków wykazujących fluorescencję. Świecenie roztworów charakteryzują: - widma absorpcji i emisji - wydajność - czas trwania (czas zaniku świecenia) - anizotropia emisji (polaryzacja). Zależność pomiędzy widmami absorpcyjnymi i emisyjnymi ustalili Stokes i Lommel. Pasmo fluorescencji i jego maksimum są przesunięte w stronę długofalową względem pasma absorpcji i jego maksimum. Dodatkowo stwierdzili, że pasma fluorescencji i absorpcji częściowo się nakrywają. Dodatkowo Stokes stwierdził, że częstość światła fluorescencji jest zawsze mniejsza niż częstość światła wzbudzającego. Reguła Stokesa jest spełniona, gdy stosujemy światło wzbudzające leżące w obszarze widma absorpcji. Gdy fluorescencja jest wzbudzana światłem o częstości w obszarze nakładania się widm absorpcji i fluorescencji reguła Stokesa jest naruszona. 3

Cechą charakterystyczną fotoluminescencji jest widmo promieniowania absorbowanego i emitowanego. Pasma absorpcji i fluorescencji wieloatomowych cząsteczek mają się do siebie jak zwierciadlane odbicia. Reguła ta została odkryta przez icholsa i Merrita, a zbadana szczegółowo przez Lewszyna. Ilustruje ją poniższy, bardzo schematyczny, rysunek. Symetria zwierciadlana widm absorpcji i fluorescencji Ścisła symetria zwierciadlana widm absorpcji i fluorescencji jest obserwowana tylko w nielicznych przypadkach. Istnieje wiele czynników, które wpływają na obniżenie wydajności kwantowej fluorescencji danej substancji. W ciekłych roztworach zjawisko to zależy m.in. od: - natury rozpuszczalnika, - temperatury - stężenia substancji luminezującej - natury i stężenia obcych domieszek (tzw. wygaszaczy) - ph. Możemy mówić o zjawiskach statycznego i dynamicznego wygaszania fluorescencji. Procesy statyczne związane są m.in. z asocjacją dwóch lub więcej molekuł substancji w stanie podstawowym. Dimery nie wykazują właściwości fluorescencyjnych. W odróżnieniu od statycznego procesu wygaszania, dynamiczne wygaszanie fluorescencji zależy od prędkości dyfuzji i stężenia substancji luminezującej. Molekuła wzbudzona spotyka się z molekułą gaszącą, niezdolną do fluorescencji. a skutek tego substancja fluoryzująca traci bezpromieniście swoją energię ( traci fluorescencję ). Zależność pomiędzy stężeniem wygaszacza a zmianą intensywności fluorescencji opisuje równanie Sterna-Volmera: 4

Io = 1+ K I gdzie: I oraz I o intensywność fluorescencji odpowiednio w obecności i nieobecności substancji wygaszającej, K sv stała Sterna-Volmera, [Q]- stężenie substancji wygaszającej. Z dynamicznym wygaszaniem fluorescencji mamy także do czynienia w niskich temperaturach, gdzie lepkość rozpuszczalnika jest większa, co powoduje mniejszą ruchliwość molekuł aniżeli w wyższych temperaturach. W wielu układach statyczne i dynamiczne gaszenie fluorescencji może zachodzić jednocześnie. Schemat blokowy spektrofluorymetru z ustawieniem prostopadłym detektora ilustruje rysunek poniżej. SV [Q] Aparatura do pomiaru natężenia fluorescencji może różnić się określonymi rozwiązaniami w zależności od producenta. ie mniej jednak zasadniczymi elementami aparatu są: - Źródło promieniowania wzbudzającego: najczęściej lampy rtęciowe i ksenonowe. - Monochromator promieniowania wzbudzającego. Monochromator przepuszcza promieniowanie z zakresu nadfioletu, zatrzymuje natomiast emitowane przez lampę promieniowanie widzialne. - Uchwyt próbek - Monochromator promieniowania emitowanego. Zadaniem tego monochromatora jest przepuszczenie widzialnego promieniowania fluorescencyjnego i zaabsorbowanie promieniowania nadfioletowego, które może być rozproszone w kierunku detektora. 5

- Detektor. Jako detektory stosowane są: fotoogniwa, fotokomórki, fotopowielacze elektronowe. Te ostatnie stosowane są w spektrofluorymetrach. Spektrofluorymetr aparat zaopatrzony w siatki dyfrakcyjne. Fluorymetr układ uproszczony, gdzie zastosowano filtry interferencyjne jako monochromatory. 2.2. Charakterystyka metod fluorymetrycznych Spektrofluorymetria opiera się na pomiarze natężenia promieniowania fluorescencyjnego emitowanego po odpowiednim wzbudzeniu substancji badanej. W analityce wykorzystuje się zależność natężenia fluorescencji od stężenia analitu. Co jest oczywiste, metody te mogą być zastosowane do oznaczania substancji wykazujących fluorescencję np. oznaczanie wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych. Znane i stosowane są odczynniki, które zdolne są do selektywnego oddziaływania z analitem (kationy metali, aniony organiczne i nieorganiczne, obojętne cząsteczki, związki biologicznie czynne), w wyniku czego zmienia się obraz fluorescencji: następuje jej wzmocnienie lub wygaszanie. Pomiary fluorescencyjne mają zastosowanie do oznaczania analitów na niskim poziomie stężeń (nawet 0,01 ppm). ie mogą być zastosowane do oznaczania substancji stanowiących podstawowe składniki próbek. Zalety: - duża czułość (przewyższająca metody spektrofotometryczne). - dobra precyzja - dokładność - selektywność. Między innymi z tych powodów w wielu tzw. technikach sprzężonych np. w wysokosprawnej chromatografii stosuje się detektory spektrofluorymetryczne. 2.3. Literatura 1. W. Szczepaniak Metody instrumentalne w analizie chemicznej. PW, W-wa, 2007. 2. D. Kealey, P.J. Haines Chemia analityczna. PW, W-wa, 2005. 3. T. Pluciński: Doświadczenia chemiczne Wydawnictwo Adamantan, W-wa 1997. 6

3. Metodyka badawcza W trakcie ćwiczenia do pomiarów spektrofluorymetrycznych zostanie wykorzystany spektrofluorymetr Aminco Bowman Series 2000. Do rejestracji widm absorpcyjnych zostanie wykorzystany spektrofotometr UV-Vis UICAM UV 300 series. Wszystkie pomiary zostaną wykonane w kuwetach kwarcowych o drodze optycznej 1 cm. Roztwory robocze zostaną przygotowane w kolbach miarowych o określonej pojemności z użyciem wody demineralizowanej jako rozpuszczalnika. 4. Wykonanie doświadczeń dczynniki Fluoresceina Jodek potasu Bromek potasu Chinina Rywanol tabletki Kwas siarkowy Wodorotlenek sodu Szkło miarowe (kolby, pipety), gruszki do zasysania roztworów Aparatura Spektrofluorymetr Aminco Bowman Series 2000. 4.1. Wygaszanie fluorescencji fluoresceiny przez jony halogenkowe. a. Przygotować roztwór podstawowy fluoresceiny (ok. 7 10-4 M) w 0,1 M ah. Przygotować roztwory robocze w kolbach miarowych o pojemności 25 ml przez odpowiednie rozcieńczenie roztworu podstawowego tj. 2 ml roztworu podstawowego. Jeden z roztworów uzupełnić do kreski wodą demineralizowaną. b. Zarejestrować widmo absorpcyjne fluoresceiny. a tej podstawie określić parametry pomiaru widma emisyjnego (długość fali wzbudzenia). c. Zarejestrować widmo emisyjne fluoresceiny. d. Przygotować 0,5 M roztwór jodku potasu (25 ml) w wodzie. e. Przygotować serię roztworów (kolby miarowe 25 ml) zawierających 2 ml roztworu podstawowego fluoresceiny oraz kolejno: 0,1; 0,25; 0,5; 1; 2; 3; 4; 5 ml 0,5 M roztworu jodku potasu. 7

f. Przygotować 0,5 M roztwór chlorku/bromku potasu (wskaże prowadzący ćwiczenie). Przygotować analogiczną serię roztworów jak w przypadku jodku potasu. Zarejestrować widma emisyjne dla przygotowanych roztworów. 4.2. Wygaszanie stężeniowe. Sporządzić roztwór rywanolu w wodzie (tabletka 100 mg w 1 l ciepłej wody). 10 ml, 1 ml oraz 0,1 ml przygotowanego roztworu rywanolu rozcieńczyć do 100 ml wodą. Porównać intensywność świecenia poszczególnych roztworów w świetle ultrafioletowym. Zarejestrować widmo absorpcyjne roztworu rywanolu. kreślić długość fali wzbudzenia i zarejestrować widmo emisyjne. Porównać widma emisyjne roztworów o różnych stężeniach. 4.3. Intensywność fluorescencji a ph Przyłączenie lub odszczepienie protonu może wpływać na zmianę właściwości spektroskopowych w tym także fluorescencji. Wpływ ph na właściwości fluorescencyjne zostanie zilustrowany na przykładzie roztworu chininy. We wskazanych fiolkach umieścić przygotowany roztwór chininy. Do jednego z roztworów dodać 1 ml roztworu ah. Porównać fluorescencję obu roztworów w świetle lampy UV. astępnie do zalkalizowanego roztworu dodawać kroplami (nie mieszając) roztwór kwasu siarkowego. bserwować zmianę fluorescencji w świetle ultrafioletowym. 5. pracowanie wyników 5.1. Wygaszanie fluorescencji fluoresceiny przez jony halogenkowe. a podstawie przeprowadzonych pomiarów ocenić zdolność wygaszania fluorescencji fluoresceiny przez odpowiednie jony halogenkowe wykorzystując równanie Sterna-Volmera. Wyznaczyć stałą wygaszania. Przeprowadzić dyskusję wyników. dpowiedzi uzasadnić. 5.2. Wygaszanie stężeniowe. Wyjaśnić wpływ stężenia substancji fluoryzującej na intensywność fluorescencji. dpowiedź uzasadnić. 5.3. Intensywność fluorescencji a ph Wyjaśnić wpływ ph na zmianę fluorescencji roztworu chininy. dpowiedź uzasadnić ilustrując ją odpowiednimi wzorami. 8