OSTRACODTOXKIT F Procedura testu

Podobne dokumenty
THAMNOTOXKIT F Procedura testu

ALGALTOXKIT F Procedura testu

SPIRODELA DUCKWEED TOXKIT Procedura testu

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

Saccharomyces Transformer Kit zestaw do przygotowywania i transformacji komórek kompetentnych Saccharomyces cerevisiae. Metoda chemiczna.

E.coli Transformer Kit

Techniki molekularne ćw. 1 1 z 6

Genomic Micro AX Blood Gravity 96-well

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Novabeads Food DNA Kit

II. Badanie lekowrażliwości drobnoustrojów ćwiczenia praktyczne. Ćwiczenie 1. Oznaczanie lekowrażliwości metodą dyfuzyjno-krążkową

badanie moczu Zwierzę Typ cewnika moczowego Rozmiar (jedn. francuskie) * gumy lub dla kocurów polietylenowy Elastyczny winylowy, z czerwonej

Genomic Mini AX Milk Spin

WYŻEJ OPISANA CZĘŚĆ DOŚWIADCZENIA JEST PRZYGOTOWANA EOZYNA ŻÓŁTAWA

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Laboratorium Podstaw Biofizyki Pomiar potencjału dyfuzyjnego i błonowego 4

Zestaw do izolacji genomowego DNA z drożdży

POLITECHNIKA ŁÓDZKA INSTRUKCJA Z LABORATORIUM W ZAKŁADZIE BIOFIZYKI. Ćwiczenie 3 ANALIZA TRANSPORTU SUBSTANCJI NISKOCZĄSTECZKOWYCH PRZEZ

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

Zestaw do izolacji genomowego DNA z bakterii

Metoda analityczna oznaczania chlorku winylu uwalnianego z materiałów i wyrobów do żywności

E.coli Transformer Zestaw do przygotowywania i transformacji komórek kompetentnych Escherichia coli

Genomic Mini AX Plant Spin

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

Genomic Maxi AX zestaw do izolacji genomowego DNA wersja 0616

bi ~ Zestaw dydal<tyczny umożliwiający przeprowadzenie izolacji genomowego DNA z bakterii EasyLation Genomie DNA INSTRUI<CJA DLA STUDENTÓW

ODWADNIANIE OSADÓW PRZY POMOCY WIRÓWKI SEDYMENTACYJNEJ

ĆWICZENIE 5 MECHANIZMY PROMUJĄCE WZROST ROŚLIN

Plasmid Mini. 50 izolacji, 250 izolacji. Zestaw do izolacji plazmidów wysokokopijnych wersja Nr kat ,

II. OZNACZANIE LICZBY BAKTERII Z GRUPY COLI I BAKTERII Z GRUPY COLI TYP FEKALNY METODĄ PŁYTKOWĄ W ŻYWNOŚCI I INNYCH PRODUKTACH wg PN-ISO 4832: 2007

Zestaw do izolacji genomowego DNA z bakterii

Genomic Midi AX. 20 izolacji

QMS Quality in Microbiology Scheme Wydanie 14 Data wydania: czerwiec 2018

Gel-Out. 50 izolacji, 250 izolacji. Nr kat , Zestaw do izolacji DNA z żelu agarozowego. wersja 0617

Zakład Biologii Molekularnej, Wydział Farmaceutyczny, WUM.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Zestaw do izolacji genomowego DNA z drożdży

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Zakład Biologii Molekularnej, Wydział Farmaceutyczny, WUM.

ODWADNIANIE OSADÓW PRZY POMOCY WIRÓWKI SEDYMENTACYJNEJ

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

BIOLOGIA KOMÓRKI KOMÓRKI EUKARIOTYCZNE W MIKROSKOPIE ŚWIETLNYM JASNEGO POLA I KONTRASTOWO- FAZOWYM; BARWIENIA CYTOCHEMICZNE KOMÓREK

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

Zakład Biologii Sanitarnej i Ekotechniki ĆWICZENIE 3

Test kuwetowy LCK 554

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Laboratorium. Technologia i Analiza Aromatów Spożywczych

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Genomic Mini AX Bacteria+ Spin

RAPORT Z BADAŃ 01369/2015/D/AGST. Blirt S.A Gdańsk, ul. Trzy Lipy 3/1.38. Dział DNA-Gdańsk. Nr zlecenia

Genomic Maxi AX Direct

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

LABORATORIUM Z PODSTAW BIOFIZYKI ĆWICZENIE NR 4 1. CEL ĆWICZENIA

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

Instrukcje do ćwiczeń oraz zakres materiału realizowanego na wykładach z przedmiotu Mikrobiologia na kierunku chemia kosmetyczna

BIOCHEM-ART ; ul. Elfów 75, Gdańsk tel./fax (0-58)

. Pierwszą czynnością badania jest pobranie próbki wody. W tym celu potrzebna będzie szklana butelka o poj. ok. 250 cm 3.

ĆWICZENIA Z MECHANIZMÓW DZIAŁANIA WYBRANYCH GRUP LEKÓW

Zestaw przeznaczony jest do całkowitej izolacji RNA z bakterii, drożdży, hodowli komórkowych, tkanek oraz krwi świeżej (nie mrożonej).

Zestaw o zwiększonej wydajności do izolacji plazmidów niskoi wysokokopijnych. Procedura z precypitacją DNA. wersja 0117

ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

Total RNA Zol-Out. 25 izolacji, 100 izolacji

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Separacja komórek w gradiencie gęstości PRAKTIKUM Z BIOLOGII KOMÓRKI (BT 231)

Wskaźniki kontroli procesów sterylizacji

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Poznajemy warunki życia w stawie.

MATERIAŁY SZKOLENIOWE DLA ZAKŁADÓW HIGIENY WETERYNARYJNEJ W ZAKRESIE LABORATORYJNEJ DIAGNOSTYKI AFRYKAŃSKIEGO POMORU ŚWIŃ

1276: (ATCC

Genomic Mini AX Body Fluids zestaw do izolacji DNA z płynów ustrojowych wersja 1115

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

UWAGA NA WRZĄCY OLEJ!!!!

Test kuwetowy LCK 554

Polimeraza Taq (1U/ l) 1-2 U 1 polimeraza Taq jako ostatni składniki mieszaniny końcowa objętość

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

BADANIA TOKSYCZNOŚCI ZANIECZYSZCZEŃ ORGANIZMÓW WODNYCH (PN -90/C-04610/01;03;05)

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

Testy aktywności przeciwdrobnoustrojowej na przykładzie metody dyfuzyjnej oraz wyznaczania wartości minimalnego stężenia hamującego wzrost.

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

INSTRUKCJA OBSŁUGI. LYFO DISK KWIK-STIK KWIK-STIK Plus PRZEZNACZENIE STRESZCZENIE I OBJAŚNIENIE ZASADA SKŁAD OPIS PRODUKTU

ROTA-ADENO Virus Combo Test Device

Utylizacja osadów ściekowych

Oznaczanie aktywności - i β- amylazy słodu metodą kolorymetryczną

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

Transkrypt:

OSTRACODTOXKIT F Procedura testu

1 PRZYGOTOWANIE STANDARDOWEJ POŻYWKI - KOLBKA MIAROWA (1 litr) - FIOLKI Z ROZTWORAMI SKONCENTROWANYCH SOLI - DESTYLOWANA (lub dejonizowana) WODA

2 PRZELAĆ ZAWARTOŚĆ 5 FIOLEK ZE SKONCENTROWANYMI ROZTWORAMI SOLI DO + 800 ML WODY DESTYLOWANEJ, W KOLBCE MIAROWEJ 1 LITR

3 - NAPEŁNIĆ KOLBKĘ DO LINII ZNAKOWEJ 1 LITR - NAPOWIETRZAĆ PRZEZ CO NAJMNIEJ 15 MINUT

4 WYLĘG ORGANIZMÓW Z CYST WYLAĆ ZAWARTOŚĆ JEDNEJ FIOLKI Z CYSTAMI NA PŁYTKĘ PETRI EGO

5 ABY UPEWNIĆ SIĘ, ŻE WYSZYSTKIE CYSTY ZOSTAŁY PRZENIESIONE, WYPŁUKLAĆ FIOLKĘ DWUKROTNIE, UŻYWAJĄC 1 ML STANDARDOWEJ POŻYWKI

6 INKUBACJA CYST INKUBOWAĆ PŁYTKĘ PETRI EGO PRZEZ 48 GODZIN W 25 C, W CIĄGŁYM OIŚWIETLENIU MIN. 3000-4000 LUX

7 WSTĘPNE KARMIENIE ORGANIZMÓW TESTOWYCH JEDNĄ FIOLKĘ ZE SPIRULINĄ NAPEŁNIĆ STANDARDOWĄ POŻYWKĄ

8 - WSTRZĄSNĄĆ FIOKĘ Z ZAWIESINĄ SPIRULINY - PRZELAĆ ZAWARTOŚĆ NA PŁYTKĘ PETRI EGO ZAWIERAJĄCĄ WYLĘGNIĘTE ORGANIZMY I ZAMIESZAĆ PŁYTKĄ DELIKATNIE - UMOŻLIWIĆ KARMIENIE ORGANIZMÓW PRZEZ 4 GODZINY

9 POMIAR DŁUGOŚCI MŁODYCH ORGANIZMÓW SZKLANĄ MIKROPIPETĄ POBRAĆ 10 ORGANIZMÓW Z PŁYTKI DO WYLĘGU

10 PRZENIEŚĆ ORGANIZMY DO JEDNEGO DOŁKA W WIELODOŁKOWEJ PŁYTCE DO POMIARU DŁUGOŚCI

11 DODAĆ JEDNĄ KROPLĘ PŁYNU LUGOLA DO DOŁKA ZAWIERAJĄCEGO ORGANIZMY I ZACZEKAĆ, AŻ ZOSTANĄ ONE CAŁKOWICIE UNIERUCHOMIONE

12 UMIEŚCIĆ PŁYTKĘ MIKROMETRYCZNĄ NA SZKLANYM STOLIKU MIKROSKOPU, POŚRODKU POLA WIDZENIA

13 UMIEŚCIĆ WIELODOŁKOWĄ PŁYTKĘ DO POMIARU DŁUGOŚCI NA STOLIKU MIKROSKOPU I ZMIERZYĆ DŁUGOŚĆ ORGANIZMÓW UWAGA: najmniejsza podziałka płytki mikrometrycznej to 50 µm MŁODE ORGANIZMY MAJĄ DŁUGOŚĆ OKOŁO 200 µm

14 ZANOTOWAĆ DŁUGOŚĆ ORGANIZMÓW W KARCIE WYNIKU W KOLUMNIE DZIEŃ 0

15 PRZYGOTOWANIE ZAWIESINY POKARMU Z GLONÓW Z JEDNEJ PROBÓWKI ZE ZŁOŻAMI GLONÓW WYLAĆ POŻYWKĘ DO PRZECHOWYWANIA, UWAŻAJĄC, ABY NIE UTRACIĆ JAKIEGOKOLWIEK ZŁOŻA PRZY TEJ OPERACJI

16 UWALNIANIE GLONÓW DODAĆ 7 ML ROZTWORU UWALNIAJĄCEGO GLONY DO PROBÓWKI ZE ZŁOŻAMI GLONÓW I ZAMKNĄĆ JĄ KORKIEM

17 WSTRZĄSAĆ PROBÓWKĘ NA VORTEX-IE, AŻ ZŁOŻA ZOSTANĄ CAŁKOWICIE ROZPUSZCZONE I GLONY ZOSTANĄ UWOLNIONE

18 WIROWAĆ PROBÓWKĘ PRZEZ 10 MINUT PRZY 3000 OBR/MIN W STANDADOWEJ WIRÓWCE LABORATORYJNEJ OSTROŻNIE WYLAĆ SUPERNATANT Z PROBÓWKI

DODAĆ 10 ML WODY DESTYLOWANEJ DO PROBÓWKI Z PELETKĄ GLONÓW 19 ZATKAĆ I WSTRZĄSAĆ PROBÓWKĘ, AŻ DO UZYSKANIA JEDNORODNEJ ZAWIESINY GLONÓW

20 WIROWAĆ PROBÓWKĘ PONOWNIE 3000 OBR/MIN PRZEZ 10 MINUT I WYLAĆ SUPERNATANT

21 - WLAĆ SKONCENTROWANĄ ZAWIESINĘ GLONÓW DO KOLBKI MIAROWEJ 25 ML - DODAĆ STANDARDOWEJ POZYWKI DO LINII 25 ML - ZATKAĆ KOLBKĘ I WSTRZĄSAĆ W CELU UZYSKANIA JEDNORODNEJ ZAWIESINY GLONÓW

22 DODAWANIE OSADU, POKARMU Z GLONÓW I ORGANIZMÓW NA PŁYKĘ TESTOWĄ DODAĆ 2 ML STANDARDOWEJ POŻYWKI DO KAŻDEGO DOŁKA W DWÓCH PŁYTKACH TESTOWYCH (płytka dla osadu referencyjnego i płytka dla osadu badanego)

23 PŁYTKA TESTOWA DLA OSADU REFERENCYJNEGO - NAPEŁNIĆ ŁYŻECZKĘ OSADEM REFERENCYJNYM I ZSUNĄĆ NADMIAR OSADU PLASTIKOWĄ SZPATUŁKĄ (pełna łyżeczka zawiera 500 µl osadu) - UMIEŚCIĆ ZAWARTOŚĆ 2 ŁYŻECZEK (= 1000 µl) OSADU REFERENCYJN EGO W KAŻDYM DOŁKU PŁYTKI TESTOWEJ

24 PŁYTKA TESTOWA Z OSADEM BADANYM - NAPEŁNIĆ ŁYŻECZKĘ OSADEM BADANYHM I ZSUNĄĆ NADMIAR OSADU PLASTIKOWĄ SZPATUŁKĄ (pełna łyżeczka zawiera 500 µl osadu) - UMIEŚCIĆ ZAWARTOŚĆ 2 ŁYŻECZEK (= 1000 µl) OSADU BADANEGO W KAŻDYM DOŁKU PŁYTKI TESTOWEJ (wierzchołkiem szpatułki zsunąć osad z łyżeczki)

25 - PRZELAĆ POKARM Z ZAWIESINY GLONÓW Z 25 ML KOLBKI DO KUBKA - WSTRZĄSNĄĆ KUBKIEM ABY UZYSKAĆ JEDNORODNĄ ZAWIESINĘ GLONÓW - PIPETĄ PODAĆ 2 ML ZAWIESINY GLONÓW DO KAŻDEGO DOŁKA W DWÓCH PŁYTKACH TESTOWYCH

26 NAPEŁNIĆ POKRYWKĘ PŁYTKI PETRI EGO DO WYLĘGU 10 ML STANDARDOWEJ POŻYWKI

27 SZKLANĄ MIKROPIPETĄ PRZENIEŚĆ MŁODE ORGANIZMY Z PŁYTKI DO WYLĘGU NA POKRYWKĘ PŁYTKI

28 PRZENIEŚĆ 10 ORGANIZMÓW Z POKRYWKI PŁYTKI DO KAŻDEGO DOŁKA W DWÓCH PŁYTKACH TESTOWYCH

29 INKUBACJA PŁYTEK TESTOWYCH - PRZYKRYĆ OBIE PŁYTKI TESTOWE PASKAMI PARAFILMU I POKRYWKAMI - INKUBOWAĆ PŁYTKI W 25 C, W CIEMNOŚCI, PRZEZ 6 DNI

30 OBLICZANIE WYNIKU 1. PRZENOSZENIE ORGANIZMÓW DO PŁYTKI PETRI EGO PIPETĄ Z SZEROKIM UJŚCIEM POBRAĆ PORCJĘ ZAWIESINY OSADU Z JEDNEGO DOŁKA TESTOWEGO PŁYTKI I PRZENIEŚĆ JĄ NA MIKROSITKO

31 - DELIKATNIE PRZEPŁUKAĆ ZAWARTOŚĆ NA SITKU WODĄ KRANOWĄ W CELU WYPŁUKANIA BARDZO DROBNYCH CZĄSTEK OSADU - POSTĘPOWAĆ DALEJ W TEN SPOSÓB PRZENOSZĄC KOLEJNE PORCJE ZAWIESINY OSADU NA MIKROSITKO I ZA KAŻDYM RAZEM PRZEPŁUKIWAĆ ZAWARTOŚĆ

32 - DODAĆ KILKA ML STANDARDOWEJ POŻYWKI DO DOŁKÓW - WYMIESZAĆ WODĘ Z POZOSTAŁYM OSADEM I PRZENIEŚĆ ZAWARTOŚĆ NA MIKROSITKO W CELU PŁUKANIA - POWTARZAĆ TĄ OPERACJĘ, AŻ CAŁY OSAD I WSZYTKIE ORGANIZMY ZOSTANĄ PRZENIESIONE NA MIKROSITKO

33 - ODWRÓCIĆ MIKROSITKO DO GÓRY DNEM I WYPŁUKAĆ ZAWARTOŚĆ DO PŁYTKI PETRI EGO, UŻYWAJĄC BUTELKI DO PŁUKANIA Z WODĄ KRANOWĄ - POWTARZAĆ PRZENOSZENIE OSADU I PŁUKANIE DLA WSZYSTKICH DOŁKÓW Z OBU PŁYTEK

34 OBLICZANIE WYNIKU 2. OBLICZANIE ŚMIERTELNOŚCI SZKLANĄ MIKROPIPETĄ POBRAĆ WSZYSTKIE ŻYWE ORGANIZMY Z PŁYTKI PETRI EGO I PRZENIEŚĆ JE DO JEDNEGO DOŁKA NA PŁYTCE DO POMIARU DŁUGOŚCI

35 - ZLICZYĆ ŻYWE ORGANIZMY W DOŁKU - ODJĄĆ TĄ LICZBĘ OD 10 (t.j. od liczby wszystkich organizmów w dołku na początku testu) - ZAPISAĆ WYNIK (t.j. liczbę organizmów, które nie przeżyły testu) NA KARCIE WYNIKU - POWTARZAĆ TĄ OPERACJĘ DLA WSZYSTKICH DOŁKÓW W OBU PŁYTKACH TESTOWYCH - OBLICZYĆ I ZAPISAĆ ŚREDNI % ŚMIERTELNOŚCI ORGANIZMÓW DLA WSZYSTKICH DOŁKÓW

36 OBLICZANIE WYNIKU 3. POMIAR DLUGOŚCI UWAGA: pomiar długości należy wykonywać tylko, jeśli % śmiertelności jest < 30% - DODAĆ JEDNĄ KROPLĘ PŁYNU LUGOLA DO KAŻDEGO DOŁKA NA PŁYTCE DO POMIARU DŁUGOŚCI, KTÓRY ZAWIERA ŻYWE ORGANIZMY Z DWÓCH PŁYTEK TESTOWYCH

37 - ODCZEKAĆ, AŻ ORGANIZMY ZOSTANĄ UNIERUCHOMIONE - ZMIERZYĆ DŁUGOŚĆ KAŻDEGO ORGANIZMU WEDŁUG PROCEDURY WSKAZANEJ NA SLAJDACH 13 I 14 - ZAPISAĆ WYNIKI W ODPOWIEDNICH OKIENKACH W KARCIE WYNIKU

38 - WYKONAĆ OBLICZENIA WYNIKU UŻYWAJĄC ODPOWIEDNIEGO PROGRAMU