QMS Quality in Microbiology Scheme Wydanie 14 Data wydania: czerwiec 2018

Wielkość: px

Rozpocząć pokaz od strony:

Download "QMS Quality in Microbiology Scheme Wydanie 14 Data wydania: czerwiec 2018"

Natalia Lisowska
5 lat temu
Przeglądów:

Przyjęcie i przechowywanie Po otrzymaniu materiału do badań należy zapisać datę otrzymania, a następnie przechowywać w lodówce w temperaturze 2-8 º C do momentu przeprowadzenia badania.

1 Przyjęcie i przechowywanie Po otrzymaniu materiału do badań należy zapisać datę otrzymania, a następnie przechowywać w lodówce w temperaturze 2-8 º C do momentu przeprowadzenia badania. Materiał do badań powinien być analizowany zgodnie z terminami wskazanymi na stronie internetowej O ile nie zaznaczono inaczej, otrzymane materiały do badań, odpowiadają rzeczywistej próbce żywności lub produktu mlecznego, która może zawierać (lub nie) badany organizm (organizmy) w zakresie poziomów inokulum. W próbce może być też obecna flora niespecyficzna. Należy analizować całą próbkę; nie należy dzielić próbki przed rozcieńczeniem chyba, że podano inaczej w poniższych instrukcjach. Zrekonstytuować materiał do badań zgodnie z odpowiednim zestawem instrukcji, jak zaznaczono w poniższej tabeli; A B C D E F 21 G H 35 I 36 J 38 K 37 L 39 M 04 N 40 A (10g Oznaczanie liczby) 2. Dodać te 90ml do 10g próbki. 6. Przy obliczaniu wyników należy uwzględnić początkowe rozcieńczenie. B (25g Wykrywanie obecności) 2. Dodać te 225ml do 25g próbki. 5. Przeprowadzić badanie, wykorzystując metody rutynowo stosowane w laboratorium. qms@lgcgroup.com WWW: Strona 1 z 5

2 C (Fiolka + 10g matrycy) liofilizowanego materiału z fiolki. Materiał testowy jest teraz gotowy do przeprowadzenia badania. 7. Tuż przed badaniem dokładnie wymieszać zrekonstutuowaną próbkę, a następnie 8. Przy obliczaniu wyników należy uwzględnić początkowe rozcieńczenie. D (Fiolka + 25g matrycy) liofilizowanego materiału z fiolki. Dokładnie wymieszać rozcieńczoną próbkę w aseptycznych warunkach. E (Fiolka Oznaczanie liczby) 1. Przygotować 10ml rozcieńczalnika zgodnie z metodą wykorzystywaną w laboratorium. liofilizowany materiał testowy poprzez dodanie 10ml rozcieńczalnika przygotowanego w 6. Zrekonstytuowana próbka powinna być traktowana jako próbka zerowa, to znaczy: nie należy uwzględniać początkowego rozcieńczenia przy obliczaniu wyników. F (Fiolka Wykrywanie obecności) qms@lgcgroup.com WWW: Strona 2 z 5

3 liofilizowany materiał testowy poprzez dodanie 10ml bulionu wzbogacającego. 4. Dodać zawartość fiolki do pozostałego bulionu wzbogacającego wypłukując dwa lub trzy razy w celu przeniesienia całości liofilizowanego materiału z fiolki. Dokładnie wymieszać rozcieńczoną próbkę w aseptycznych warunkach. 5. Pozostawić materiał do rekonstytucji w temperaturze pokojowej na minimum 60 minut lecz nie 6. Przeprowadzić badanie, wykorzystując metody rutynowo stosowane w laboratorium. G (Fiolka Identyfikacja) 1. Przygotować 9ml rozcieńczalnika zgodnie z metodą wykorzystywaną w laboratorium. liofilizowany materiał testowy poprzez dodanie 9ml rozcieńczalnika przygotowanego w punkcie Tuż przed badaniem dokładnie wymieszać zrekonstutuowaną próbkę. 6. Wykonać posiew redukcyjny na podłożu nieselektywnym i inkubować w temperaturze mezofilnej. 7. Wykorzystując swoją mikrobiologiczną wiedzę i standardowe testy mikrobiologiczne należy określić identyfikację i/lub serologię organizmu zawartego w materiale do badania. H (Zadanie teoretyczne) 1. Materiałem do badań 35 jest papierowe zadanie teoretyczne z instrukcjami zawartymi w informacji o badaniu. I (2x Fiolka + 2x 10g matrycy) 1. Przygotować 2 x 90ml rozcieńczalnika zgodnie z metodą wykorzystywaną w laboratorium i oznaczyć A i B. 2. Z 90ml rozcieńczalnika oznaczonego jako A należy pobrać 10ml i dodać do fiolki oznaczonej jako A, po aseptycznym zdjęciu zamknięcia i 5. Zrekonstytuować jedną z 10g matryc wykorzystując pozostałą ilość rozpuszczalnika przygotowanego w 6. Dokładnie wymieszać rozcieńczoną próbkę w aseptycznych warunkach. 7. Po upływie 60 do 90 minut, zawartość fiolek przygotowanych w punkcie 2 dodać do matrycy liofilizowanego materiału z fiolki. Materiał testowy jest teraz gotowy do przeprowadzenia badania. 8. Tuż przed badaniem dokładnie wymieszać zrekonstutuowaną próbkę, a następnie 9. Powtórzyć kroki 2 do 8 dla rozcieńczalnika i fiolki oznaczonych jako B i pozostałej 10g matrycy. 10. Przy obliczaniu wyników należy uwzględnić początkowe rozcieńczenie. qms@lgcgroup.com WWW: Strona 3 z 5

4 J (Fiolka + 2x 10g matrycy) 1. Przygotować 10ml rozcieńczalnika zgodnie z metodą wykorzystywaną w laboratorium. liofilizowany materiał testowy poprzez dodanie 10ml rozcieńczalnika przygotowanego w 5. Przygotować dodatkowe 90ml rozpuszczalnika zgodnie z metodą wykorzystywaną w laboratorium. 6. Dodać te 90ml do jednej z dostarczonej 10g próbki. 7. Powtórzyć kroki 5 i 6 dla drugiej 10g próbki, jeśli jest to wymagane. 8. Dokładnie wymieszać rozcieńczoną próbkę w aseptycznych warunkach. 9. Po upływie 60 do 90 minut, dodać 1ml z zawartości fiolki przygotowanej w punkcie 2 do każdej z matryc przygotowanych zgodnie z punktami 5-7. Materiał testowy jest teraz gotowy do przeprowadzenia badania. 10. Tuż przed badaniem dokładnie wymieszać zrekonstutuowaną próbkę, a następnie 11. Przy obliczaniu wyników należy uwzględnić początkowe rozcieńczenie. K (2x Fiolka + 2x 100g matrycy) 1. Podzielić jedną z 100g matrycy na porcje po 25g, zgodnie z wymaganiami. 2. Przygotować 10ml odpowiedniego sterylnego rozpuszczalnika np. MRD. 3. Aseptycznie zdjąć zamknięcie oraz gumowy korek z fiolki oznaczonej jako A, a następnie zrekonstytuować liofilizowany materiał testowy poprzez dodanie 10ml rozcieńczalnika przygotowanego w punkcie Zatkać korkiem i wymieszać do rozpuszczenia. 5. Pozostawić materiał do rekonstytucji w temperaturze pokojowej na minimum 60 minut lecz nie 6. Przygotować 225ml wybranego bulionu wzbogacającego. 7. Dodać 225ml bulion wzbogacający do 25g porcji przygotowanej w 8. Powtórzyć kroki 6 i 7 dla badanych analitów. 9. Dokładnie wymieszać rozcieńczoną próbkę w aseptycznych warunkach. 10. Po upływie 60 do 90 minut, dodać 1ml z zawartości fiolki przygotowanej w punkcie 3 do matrycy przygotowanej zgodnie z punktem Przeprowadzić badanie, wykorzystując metody rutynowo stosowane w laboratorium. 12. Powtórzyć kroki 1 do 11 dla fiolki oznaczonej jako B i pozostałej 100g matrycy. L (10g próbki) 2. Dodać te 90ml do 10g próbki. 6. Przygotowana próbka powinna być traktowana jako próbka zerowa cieczy do analizy. qms@lgcgroup.com WWW: Strona 4 z 5

5 M (próbka 04) 1. Zdecydować jaka porcja próbki będzie badana: 25g czy 10g. 2. W celu zbadania 10g porcji aseptycznie pobrać 10g z dostarczonej próbki. 3. Przygotować 225ml lub 90ml wybranego bulionu wzbogacającego w zależności od wielkości badanej próbki. 4. Dodać 225ml do 25g próbki lub 90ml do 10g próbki. 5. Dokładnie wymieszać rozcieńczoną próbkę w aseptycznych warunkach. 6. Pozostawić materiał do rekonstytucji w temperaturze pokojowej na minimum 60 minut lecz nie N (Fiolka + 375g matrycy) 1. Przygotować odpowiednią objętość wybranego bulionu wzbogacającego. liofilizowanego materiału z fiolki. Dokładnie wymieszać rozcieńczoną próbkę w aseptycznych warunkach. Raportowanie wyników Wszystkie wyniki należy raportować przez Internet za pomocą systemu PORTAL Prosimy wejść na stronę Należy się zalogować wpisując numer identyfikacyjny (ID) laboratorium, nazwę użytkownika (username) i hasło (password). Przewodnik użytkownika systemu PORTAL można pobrać z sekcji Pomoc (Help) na stronie internetowej. W przypadku jakichkolwiek pytań lub wątpliwości prosimy o kontakt: Tel , support@lgcgroup.com lub z lokalnym biurem LGC Standards: Tel , pl@lgcgroup.com Środki ostrożności Materiały do badań zawierają żywe mikroorganizmy i są dostarczane z założeniem, że odbiorca dysponuje odpowiednio kompetentnym i przeszkolonym personelem w zakresie bezpiecznego posługiwania się takimi materiałami. Materiały do badań mogą być otwierane tylko w laboratorium przez wykwalifikowany personel. Należy zapoznać się z informacjami podanymi w karcie charakterystyki dotyczącymi bezpiecznego posługiwania się i sposobami utylizacji materiałów do badań. qms@lgcgroup.com WWW: Strona 5 z 5

Podobne dokumenty

CONF-IDENT. Program badania biegłości - potwierdzenie i identyfikacja mikroorganizmów

CONF-IDENT. Program badania biegłości - potwierdzenie i identyfikacja mikroorganizmów CONF-IDENT Program badania biegłości - potwierdzenie i identyfikacja mikroorganizmów LGC Standards Proficiency Testing 1 Chamberhall Business Park Chamberhall Green Bury Lancashire BL9 0AP United Kingdom