Ćwiczenie 2: Metody spektralne w inżynierii materiałowej AKADEMIA GÓRNICZO- HUTNICZA WYDZIAŁ ODLEWNICTWA KATEDRA INŻYNIERII PROCESÓW ODLEWNICZYCH

Podobne dokumenty
OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

WYM. Ćwiczenie: Badania wymywalności szkodliwych substancji ze zużytych mas odlewniczych Opracowała: dr hab. Beata Grabowska

SPEKTROFOTOMETRIA UV-Vis. - długość fali [nm, m], - częstość drgań [Hz; 1 Hz = 1 cykl/s]

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

Ćw. 5 Absorpcjometria I

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Metody spektroskopowe:

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

OZNACZANIE STĘŻENIA BARWNIKÓW W WODZIE METODĄ UV-VIS

PRODUKTY CHEMICZNE Ćwiczenie nr 3 Oznaczanie zawartości oksygenatów w paliwach metodą FTIR

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Techniki analityczne. Podział technik analitycznych. Metody spektroskopowe. Spektroskopia elektronowa

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

ĆWICZENIE NR 3 POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

Ćwiczenie 1. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp. Część teoretyczna.

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Podczerwień bliska: cm -1 (0,7-2,5 µm) Podczerwień właściwa: cm -1 (2,5-14,3 µm) Podczerwień daleka: cm -1 (14,3-50 µm)

Ćwiczenie 31. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp

Jan Drzymała ANALIZA INSTRUMENTALNA SPEKTROSKOPIA W ŚWIETLE WIDZIALNYM I PODCZERWONYM

Spektroskopowe metody identyfikacji związków organicznych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Fizykochemiczne metody w kryminalistyce. Wykład 7

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

ABSORPCYJNA SPEKTORFOTOMETRIA CZĄSTECZKOWA

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

Spektroskopia molekularna. Spektroskopia w podczerwieni

Atomowa spektrometria absorpcyjna i emisyjna

ANALIZA INSTRUMENTALNA

ZASADY ZALICZENIA PRZEDMIOTU MBS

POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE

Ćwiczenie: Spektrofotometryczne oznaczanie zawartości montmorillonitu w bentonitach odlewniczych metodą kompleksu Cu(II)- trietylenotetraminy

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

Spektrofotometria ( SPF I, SPF II ) Spektralna analiza emisyjna ( S ) Fotometria Płomieniowa ( FP )

KOLORYMETRYCZNE OZNACZANIE Cd, Mn i Ni

Spis treści. Wstęp. Twardość wody

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Ćwiczenie 3 Pomiar równowagi keto-enolowej metodą spektroskopii IR i NMR

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Optyczna spektroskopia oscylacyjna. w badaniach powierzchni

Spektroskopia. Spotkanie pierwsze. Prowadzący: Dr Barbara Gil

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

Ćwiczenie 30. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna w zakresie UV-VIS, prawa absorpcji, budowa i. Wstęp

E (2) nazywa się absorbancją.

SPEKTROFOTOMETRYCZNA ANALIZA ZAWARTOŚCI SUBSTANCJI W PRÓBCE

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

Właściwości optyczne. Oddziaływanie światła z materiałem. Widmo światła widzialnego MATERIAŁ

Laboratorium 4. Określenie aktywności katalitycznej enzymu. Wprowadzenie do metod analitycznych. 1. CZĘŚĆ TEORETYCZNA


Analiza spektralna i pomiary spektrofotometryczne

ĆWICZENIE Nr 4 LABORATORIUM FIZYKI KRYSZTAŁÓW STAŁYCH. Badanie krawędzi absorpcji podstawowej w kryształach półprzewodników POLITECHNIKA ŁÓDZKA

Ćwiczenie O 13 -O 16 BADANIE ABSORPCJI ŚWIATŁA W MATERII Instrukcja dla studenta

Wykład XIV: Właściwości optyczne. JERZY LIS Wydział Inżynierii Materiałowej i Ceramiki Katedra Technologii Ceramiki i Materiałów Ogniotrwałych

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA ( AAS )

Metodyki referencyjne

Ćwiczenie 3 ANALIZA JAKOŚCIOWA PALIW ZA POMOCĄ SPEKTROFOTOMETRII FTIR (Fourier Transform Infrared Spectroscopy)

-1- Piotr Janas, Paweł Turkowski Zakład Fizyki UR Do użytku wewnętrznego ĆWICZENIE 44 ABSORPCJOMETRIA. WYZNACZANIE STĘŻENIA ROZTWORU

PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

-1- Piotr Janas, Paweł Turkowski Zespół Fizyki, Akademia Rolnicza Do użytku wewnętrznego ĆWICZENIE 44 ABSORPCJOMETRIA. WYZNACZANIE STĘŻENIA ROZTWORU

Szkoła Letnia STC Łódź 2013 Oznaczanie zabarwienia cukru białego, cukrów surowych i specjalnych w roztworze wodnym i metodą MOPS przy ph 7,0

OZNACZENIE JAKOŚCIOWE I ILOŚCIOWE w HPLC

SPEKTROSKOPIA METODY BADAŃ SKŁADU CHEMICZNEGO Właściwości falowe promieniowania. Promieniowanie elektromagnetyczne

Ćwiczenie 2 Przejawy wiązań wodorowych w spektroskopii IR i NMR

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok OAM

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

METODYKA POMIARÓW WIDM FLUORESCENCJI (WF) NA MPF-3 (PERKIN-HITACHI)

Ćwiczenie nr 2. Pomiar energii promieniowania gamma metodą absorpcji

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Dobór metody analitycznej

Laboratorium OCHRONA ŚRODOWISKA W TECHNOLOGII CHEMICZNYM. Usuwanie barwników ze ścieków metodą adsorpcji na węglu aktywnym

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

METODY SPEKTROSKOPOWE II. UV-VIS od teorii do praktyki Jakub Grynda Katedra Technologii Leków i Biochemii

3. Badanie kinetyki enzymów

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

PRACOWNIA CHEMII. Równowaga chemiczna (Fiz2)

Efekt fotoelektryczny

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

OBLICZENIA BIOCHEMICZNE

K02 Instrukcja wykonania ćwiczenia

KALIBRACJA. ważny etap procedury analitycznej. Dr hab. inż. Piotr KONIECZKA

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI SŁABEGO KWASU ORGANICZNEGO

Badanie dynamiki rekombinacji ekscytonów w zawiesinach półprzewodnikowych kropek kwantowych PbS

JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

2. Metody, których podstawą są widma atomowe 32

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Ćwiczenie 1: Wyznaczanie warunków odporności, korozji i pasywności metali

PODSTAWY LABORATORIUM PRZEMYSŁOWEGO. ĆWICZENIE 3a

Synteza nanocząstek Ag i pomiar widma absorpcyjnego

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

BADANIE CHARAKTERYSTYK FOTOELEMENTU

Ćwiczenie Nr 11 Fotometria

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

Transkrypt:

ćw 2 Ćwiczenie 2: Metody spektralne w inżynierii materiałowej PRZEDMIOT: NOWOCZESNE TECHNIKI BADAWCZE W INŻYNIERII MATERIAŁOWEJ Opracowała: dr hab. AKADEMIA GÓRNICZO- HUTNICZA WYDZIAŁ ODLEWNICTWA KATEDRA INŻYNIERII PROCESÓW ODLEWNICZYCH 1

SPIS TREŚCI 1. WPROWADZENIE... 3 2. SPEKTROFOTOMETRIA ABSORPCYJNA... 4 2.1. Prawa absorpcji... 4 2.2. Ograniczenia w stosowaniu prawa Lamberta-Beera... 6 2.3. Spektrofotometria zasada metody... 6 2.4. Zastosowanie spektrofotometrii... 7 3. ILOŚCIOWY POMIAR SPEKTROFOTOMETRYCZNY... 8 3.1. Kalibracja... 8 3.2. Krzywa wzorcowa... 9 3.3. Budowa spektrofotometru... 11 4. LITERATURA... 12 5. INSTRUKCJA DO ĆWICZENIA:... 13 5.1. Temat ćwiczenia: Metody spektralne w inżynierii materiałowej.... 13 5.2. Cel ćwiczenia: Spektrofotometryczne oznaczenie wybranych substancji nieorganicznych.... 13 5.3. Aparatura i sprzęt laboratoryjny... 13 5.4. Odczynniki i materiały... 13 5.5. Wykonanie ćwiczenia... 13 5.6. Opracowanie sprawozdania... 13 2

1. WPROWADZENIE Analizując strukturę dowolnej heteroatomowej cząsteczki można stwierdzić, że na jej całkowitą energię składa się energia elektronów wiążących, energia wiązań chemicznych oraz energia swobodnej rotacji cząsteczki. Całkowitą energię cząsteczki E można zatem przedstawić jako sumę trzech składników odpowiadających trzem rodzajom ruchu w cząsteczce: E = E e + E os + E rot (1) E e - energia elektronowa (związana z ruchem elektronów), E os - energia oscylacyjna (związana z ruchem oscylacyjnym), E rot - energia rotacyjna (związana z ruchem rotacyjnym). W metodach spektrycznych sygnał analityczny powstaje w wyniku oddziaływania promieniowania elektromagnetycznego lub korpuskularnego na badana próbkę. Promieniowanie elektromagnetyczne zachodzi wskutek okresowych zmian pola elektromagnetycznego rozchodzących się w przestrzeni ze skończoną prędkością i związanych z przenoszeniem energii. Promieniowanie elektromagnetyczne składa się z fotonów, czyli kwantów promieniowania (kwantów energii). Charakterystyczną ich własnością jest energia: E = h. ν (2) E - energia fotonu wyrażona w jednostkach energii (zgodnie z układem SI w dżulach, poprzednio w kaloriach: 1J = 0,2389 cal); h - stała uniwersalna Plancka (6,626. 10-34 J. s); ν - częstotliwość drgań promieniowania emitowanego lub absorbowanego, wyrażona w hercach (Hz). Częstotliwość (częstość) drgań świetlnych związana jest z długością fali świetlnej (λ): νν = cc λλ (3) c - prędkość światła w próżni (3.108 m/s). Na rysunku 1 przedstawiono schematycznie widma promieniowania elektromagnetycznego z zaznaczeniem zakresów, w których następują zmiany różnych stanów energetycznych cząsteczki. 3

Rys. 1. Widmo promieniowania elektromagnetycznego Zmiany każdej postaci energii wymagają dostarczenia do układu odpowiedniej porcji (wielkości kwantu) energii. Najmniej energii wymaga zmiana rotacji cząsteczki, więcej energii wymaga wprawienie w ruch oscylacyjny cząsteczki, a najwięcej energii (tzw. orbitali elektronowych) potrzeba do przejścia elektronu z niższego stanu orbitalnego na wyższy (wzbudzenie elektronowe), przy czym wzbudzeniu elektronu najczęściej towarzyszą trzy typy zmian energii (rotacji, oscylacji i orbitali atomowych). 2. SPEKTROFOTOMETRIA ABSORPCYJNA Spektrofotometria z grupy metod fotometrycznych jest techniką instrumentalną, w której do celów analitycznych wykorzystuje się przejścia energetyczne zachodzące w cząsteczkach, spowodowane absorpcją promieniowania elektromagnetycznego w zakresie nadfioletu (UV, 200-380 nm), widzialnym (VIS, 380-780 nm) lub bliskiej podczerwieni (0,78-30000 m). 2.1. Prawa absorpcji W związku z absorpcyjnymi właściwościami pewnych związków chemicznych sformułowano szereg zależności pomiędzy ilością zaabsorbowanej energii a pewnymi cechami fizycznymi substancji. Są to prawa absorpcji. I prawo absorbcji (prawo Lamberta) Wiązka promieniowania monochromatycznego po przejściu przez jednorodny ośrodek absorbujący o grubości b ulega osłabieniu zgodnie z równaniem: II = II 0 ee kkkk (4) II 0 - natężenie wiązki promieniowania monochromatycznego padającego na jednorodny ośrodek absorbujący, II - natężenie promieniowania po przejściu przez ośrodek absorbujący, k - współczynnik absorpcji, b grubość warstwy absorbującej, e - podstawa logarytmów naturalnych. 4

Stąd: llll II 0 = kk bb = AA lub AA = llllll II 0 = aaaa (5, 6) II II aa = 0,4343k; A - zdolność pochłaniania promieniowania zwana absorbancją. I prawo absorpcji: absorbancja jest proporcjonalna do grubości warstwy absorbującej, jeśli wiązka promieniowania monochromatycznego przechodzi przez jednorodny ośrodek absorbujący. Stosunek I/I 0 nazywany jest transmitancją (T) i jest rejestrowany jako funkcja częstości padającego na próbkę promieniowania. Transmitancja najczęściej wyrażana jest w procentach: TT = II 0 II 100% (7) II prawo absorpcji (prawo Lamberta-Beera) Prawo to dotyczy absorpcji promieniowania przez roztwory. Jeśli współczynnik absorpcji rozpuszczalnika jest równy zeru, to wiązka promieniowania monochromatycznego po przejściu przez jednorodny roztwór substancji absorbującej o stężeniu c ulega osłabieniu zgodnie z równaniem: II = II 0 ee kkkkkk (8) Po przekształceniach: AA = llllll II 0 II = aaaaaa (9) II prawo absorpcji: jeżeli współczynnik absorpcji rozpuszczalnika jest równy zeru, to absorbancja wiązki promieniowania monochromatycznego przechodzącej przez jednorodny roztwór jest wprost proporcjonalna do stężenia roztworu c i do grubości warstwy absorbującej b. Wielkość a jest właściwym współczynnikiem absorpcji, gdy stężenie wyrażamy w kg dm -3 lub g cm -3. Natomiast gdy stężenie c wyrażamy w mol dm -3, równanie to przybiera postać: A = ε. c. b (10) ε - molowy współczynnik absorpcji, a jego wymiar podawany jest [dm 3 mol -l cm -l ] lub w jednostkach SI [m 2 mol -l ]. Wartość absorbancji A i wartość molowego współczynnika absorpcji ε zależy od długości fali λ promieniowania padającego. Wykres zależności A lub ε od długości fali λ określa się mianem krzywej absorpcji lub elektronowym widmem absorbcyjnym. 5

III prawo absorpcji (Prawo addytywności absorbancji) Prawo addytywności absorbancji (III prawo absorpcji) wykorzystuje się w spektrofotometrycznej analizie układów wieloskładnikowych. Jeśli w roztworze jest więcej substancji, które absorbują promieniowanie przy wybranej długości fali, to absorbancja tego roztworu jest równa sumie absorbancji jego poszczególnych składników. A = A 1 + A 2 + A 3 + + A n = (ε 1c 1 + ε 2c 2 + ε 3c 3 + + ε nc n ) l (11) ε 1, ε 2, ε 3 i ε n - współczynniki absorpcji odpowiednich substancji obecnych w roztworze; c 1, c 2, c 3 i c n - stężenia tych substancji; l - grubość warstwy absorbującej. 2.2. Ograniczenia w stosowaniu prawa Lamberta-Beera W myśl II prawa absorpcji zależność absorbancji od stężenia powinna mieć charakter liniowy. Jednak w praktyce należy liczyć się z odstępstwami od takiej zależności. Spotykamy się zarówno z ujemnymi, jak i z dodatnimi odchyleniami od przebiegu prostoliniowego. Odchylenia takie są wywołane przez: a) podstawowe ograniczenia prawa Lamberta-Beera (L-B): występują inne oddziaływania promieniowania elektromagnetycznego; L B odnosi się do roztworów rozcieńczonych (< 10-2 mol dm -3 ), gdyż przy większych stężeniach wartość współczynnika absorpcji zależy zwykle od stężenia oznaczanej substancji. Zależność pomiędzy absorbancją a stężeniem analitu w warunkach, gdy badany układ spełniania prawo L B ma charakter prostoliniowy i można ją wykorzystać do wyznaczenia stężenia analitu w próbce. b) czynniki chemiczne: powodujące odchylenia od prostoliniowego przebiegu absorbancji są związane z reakcjami chemicznymi zachodzącymi w analizowanym roztworze, zmiana ph roztworu, zachodzenie w badanym roztworze reakcji dysocjacji, asocjacji, polimeryzacji, solwatacji, a także różne reakcje kompleksowania. Takim reakcjom towarzyszą zmiany właściwości optycznych analizowanych roztworów. 2.3. Spektrofotometria zasada metody Fotometria opisuje wrażenia wzrokowe, czyli oddziaływanie światła na oko ludzkie. Fotometryczne metody analizy obejmują grupy technik analitycznych: 1. metody wykorzystujące różnice pomiędzy przechodzącym strumieniu światła przez barwne związki w roztworach: kolorymetria, kolorymetria fotometryczna lub spektrofotometria; 2. metoda reflektometryczna tj. pomiaru różnicy stosunku strumienia światła padającego i odbitego od powierzchni substancji; 3. metody analizy rozproszonego strumienia światła; 4. metoda fluorymetryczna. 6

Spektrofotometria polega na pomiarze spektrofotometrem stosunku natężeń (lub funkcji tego stosunku, np. absorbancji) dwóch wiązek promieniowania w funkcji długości fali. Jedna wiązka jest wiązką promieniowania oddziałującego z badaną próbka, a druga wiązką odniesienia. Zbadanie zależności absorbancja-długość fali (UV-VIS) pozwala na uzyskanie tzw. widma absorpcyjnego badanego związku (Rys. 2). A Rys. 2. Przykładowe widmo absorpcyjne Wystąpienie maksimum absorpcji na widmie elektronowym związane jest na ogół z obecnością w cząsteczce badanego związku łatwo wzbudzalnych elektronów. Mogą to być np. elektrony częściowo zapełnionych podpowłok d jonów metali przejściowych. Ten rodzaj absorpcji powoduje zabarwienie wodnych roztworów takich metali jak: chrom, mangan, żelazo, kobalt, nikiel i in. Pochłaniane światła w tym zakresie jest typowe dla związków organicznych ze względu na występowanie w ich strukturze wiązań wielokrotnych. Związki organiczne nasycone nie absorbują światła nawet w dalekim nadfiolecie. Nienasycone grupy, które absorbują promieniowanie w zakresie 200-800 nm są nazywane chromoforami (tabela 1). λ Tabela 1 Właściwości wybranych chromoforów Chromofor Związek Rozpuszczalnik Maksimum absorpcji nm -NO 2 nitrometan etanol 167 C=C okten heksan 185 C=S Tiowęglan dietylu etanol 330 2.4. Zastosowanie spektrofotometrii Metoda spektrofotometryczna charakteryzuje się: prostotą w obsłudze, wysoką czułością pomiaru, dużą dokładnością [1-5%] [0.2-0.5% dla metod różnicowych], wysoką precyzją pomiaru dla stężeń >10-4 % [<10%] dla śladów >10-7 [<30%] oraz uniwersalnością (absorbancja powinna się mieścić w zakresie od 0,1 do 1,0). Ponadto jest to metoda tania i ogólnie dostępna. Dlatego też znalazła szerokie zastosowanie zarówno w analizie nieorganicznej, jak i organicznej. W analizie nieorganicznej zastosowanie znajduje głównie spektrofotometria UV i VIS. Metodą spektrofotometrii UV-VIS można oznaczać substancje organiczne (np. w tym węglowodory aromatyczne, aldehydy, ketony, kwasy i aminy) i nieorganiczne (np. pierwiastki ziem rzadkich, ozon, SO 2 ) wykazujące absorpcję w nadfiolecie, związki absorbujące promieniowanie w zakresie 7

widzialnym, w tym barwne związki organiczne (barwniki) i barwne sole metali (np. KMnO 4, CuSO 4 ) oraz substancje, których formy absorbujące promieniowanie uzyskuje się na drodze reakcji chemicznych. Do celów tych najczęściej wykorzystuje się reakcje kompleksowania. Opracowano wiele procedur oznaczeń kationów metali w formie barwnych związków kompleksowych z ligandami organicznymi. W inżynierii odlewniczej metody spektrofotometryczne wykorzystywane są głównie w badaniach wymywalności substancji szkodliwych ze zużytych mas formierskich i rdzeniowych. Wykonywane są w tym zakresie oznaczenia stężeń związków organicznych (m.in. fenole, formaldehyd) i nieorganicznych (m.in. azotany, fosforany, siarczany), które to mogą być uwalniane do środowiska podczas składowania zużytych mas. Dodatkowo metody spektrofotometryczne wykorzystuje się w oznaczeniach zawartości montmorilonitu w bentonitach (metoda błękitu metylenowego, metoda kompleksu Cu(II)- trietylenotetraminy). 3. ILOŚCIOWY POMIAR SPEKTROFOTOMETRYCZNY Do precyzyjnych pomiarów fotometrycznych stosowane są przyrządy wykonujące pomiary energii strumienia światła z wykorzystaniem zjawiska fotoelektrycznego, zazwyczaj z użyciem ogniw fotoelektrycznych i elektrometrycznym pomiarem ich sygnału. W spektrofotometrach, przeprowadza się równocześnie wyodrębnienie wybranej i wąskiej części widma, jak też poszerzenie jego zakresu poza obszar widzialny do podczerwieni lub bliskiego nadfioletu. Spektrofotometry umożliwiają wykonanie oznaczeń kilku składników w jednym roztworze w oparciu o pomiar absorpcji w kilku zakresach widma. Specjalistyczne spektrofotometry, wyposażane są w kontrolery mikroprocesorowe wykonujące bieżące przeliczanie wzorcowych pomiarów stężeń, w tym również z uwzględnieniem odchyleń od prawa Beer a, lub umożliwiające wprowadzanie wartości współczynników adsorpcji i bezpośrednie odczyty wyników. UWAGA! Istotne jest, by podczas analizy ilościowej dokonać wyboru: - analitycznej długości fali przy której będą wykonane pomiary, - odpowiednich stężeń substancji oznaczanej, - metody pomiaru. 3.1. Kalibracja Przeprowadzenie pomiaru wymaga przygotowania próbki kalibrującej przyrząd pomiarowy, któremu przypisuje się zerową ekstynkcję lub odpowiednio: 100 % transmisji. W przyrządach pomiarowych wykorzystujących dwie kuwety; porównawczą i pomiarową (Rys. 3), próbka kalibrująca znajduje się w kuwecie porównawczej w całym cyklu pomiarów. Do kalibracji stosuje się roztwory zerowe, przygotowane według receptury wzorców bez dodatku oznaczanego składnika, lub rozpuszczalnik roztworu, zwykle wodę destylowaną. 8

a) b) Rys. 3. Kuwety pomiarowe firmy: a) HELLMA, b) Hanna Pomiary przeprowadza się wprowadzając kuwetę porównawczą i kuwetę pomiarową napełnione odpowiednimi roztworami w strumień światła przyrządów pomiarowych, zgodnie z ich cechami konstrukcyjnymi, równocześnie lub kolejno. Należy dążyć do wykonania pomiarów krzywej wzorcowej w możliwie jak najkrótszym czasie, w jednej serii łącznie z badanymi próbami, wykonanymi najlepiej w środku cyklu pomiarów (Rys. 4). 3.2. Krzywa wzorcowa Rys. 4. Pomiar spektrofotometryczny Roztwory wzorcowe przygotowuje się w laboratoryjnych kolbach miarowych o wybranych pojemnościach: 10, 25, 50 lub 100 cm 3. Wprowadza się do nich wstępną ilość rozpuszczalnika zazwyczaj wody destylowanej, a następnie roztwór oznaczanego składnika w zróżnicowanych ilościach odpowiednich dla oczekiwanej skali stężeń (Tabela 2). Następnie dodaje się pozostałe odczynniki w ilościach zgodnych z przepisem w celu przeprowadzenia reakcji barwnych w wybranych warunkach stężeń i ph środowiska. Kolby miarowe uzupełnia się rozpuszczalnikiem do kreski kalibracyjnej i dokładnie miesza ich zawartość. 9

Tabela 2 Stężenia roztworów wzorcowych Lp Objętość roztworu wzorcowego [ml] Objętość wody [ml] Stężenie roztworu wzorcowego [mmol/l] 1 0 50 0 2 2,5 47,5 0,5 3 5 45 1 4 7,5 42,5 1,5 5 10 40 2 Przy doborze zakresu stężeń i grubości kuwet należy uwzględnić, że skrajne wartości gęstości optycznej powinny wynosić od 0,05 do 1,5, przy czym zaleca się utrzymanie zakresu 0,1 0,7 (10 70 % transmisji). Zwykle wykonuje się serie pomiarów na wzorcowych stężeniach badanych substancji barwnych przy odpowiednio dobranej długości fali. Na ich podstawie wykonuje się reprezentacje graficzną w postaci wykreślonej krzywej, nazwanej krzywą wzorcową (zależność A = f(c)). Z krzywej wzorcowej, która w wybranym zakresie stężeń dobrze spełnia prawo Lamberta - Beera, a więc jest przybliżana do prostej, wyznacza się graficznie wartość stężenia oznaczanego składnika w badanym roztworze (Rys. 5). Dla sporządzenia krzywej wzorcowej dobiera się możliwie dużą ilość wzorców w celu zwiększenia dokładności pomiaru. Roztwór oznaczanego składnika w badanej próbie jest przygotowywany według receptury sporządzania wzorców, a zakres, w którym może zmieniać się jego zawartość, powinien być tak dobrany, by mieścił się w granicach stężeń przygotowanych roztworów wzorcowych. 0,3 0,25 y = 0,0262x + 0,0012 R² = 0,9998 Absorbancja 0,2 0,15 0,1 0,05 0 0 5 10 15 Stężenie [mmol/l] Rys. 5. Przykładowa krzywa wzorcowa Na podstawie otrzymanych wyników pomiarów sporządza się wykres krzywej wzorcowej. Zwyczajowo na osi odciętych odkłada się zawartości oznaczanego składnika w roztworach wzorcowych, a na osi rzędnych wartości ekstynkcji, dobierając jednostki w ten sposób, by osiągnąć 10

przebieg krzywej w pobliżu dwusiecznej układu współrzędnych (nachylenie około 45 o ). Przebieg krzywej na wykresie powinien uwzględniać wyjściową hipotezę liniowości i zasady interpolacji numerycznej lub graficznej. Na wykres wprowadza się wartość ekstynkcji dla badanego spektrofotometrycznie roztworu oznaczanego składnika i dokonuje odczytu odpowiedniej jego zawartości w roztworze lub stężenia w badanej próbie. Następnie przelicza się oznaczoną zawartość składnika na stężenie w próbie roztworu przeznaczonego do badań, z uwzględnieniem ewentualnych rozcieńczeń pośrednich. 3.3. Budowa spektrofotometru Na rysunku 6 zamieszczono schemat blokowy spektrofotometru używanego do badań. Zazwyczaj wykonuje się pomiary na wzorcowych stężeniach badanych substancji barwnych i określa eksperymentalna funkcje ekstynkcji. Reprezentacja graficzna tej zależności w postaci krzywej nazywana jest krzywą wzorcową. Z krzywej wzorcowej która spełnia prawo Lamberta Beera wyznacza się graficznie wartość stężenia oznaczanego składnika w badanym roztworze. 1. ŹRÓDŁO PROMIENIOWANIA CIĄGŁEGO 2. MONOCHROMATOR 3. KUWETA POMIAROWA Z ROZTWOREM BADANYM 4. DETEKTOR 5. MIERNIK Rys. 6. Schemat blokowy spektrofotometru Najważniejsze elementy w budowie spektrofotometru: 1. Źródło promieniowania Źródłem światła w zakresie 350-700 nm jest lampa wolframowa, a w zakresie 180-400nm lampa wodorowa lub deuterowa (180-380 nm). 2. Monochromator Monochromator jako element dyspersyjny (rozszczepiający) układu ma zadanie wyłonić z szerokiego zakresu promieniowania polichromatycznego właściwe pasmo o żądanej długości fali λ. Podczas pomiaru absorpcji promieniowanie ze źródła światła (odpowiedniej lampy) prowadzone jest wzdłuż głównej osi optycznej, a po przejściu przez element rozszczepiający (siatkę dyfrakcyjną, rzadziej pryzmat) coraz to inne częstości promieniowania padają na sektor wirujący, który rozdziela wiązkę na dwie, z których jedna pada na próbkę, a druga na odnośnik (zwykle rozpuszczalnik). 3. Kuweta pomiarowa Kuwety pomiarowe muszą być precyzyjnie wykonane i zapewniać dokładnie znaną grubość warstwy absorbującej, wykazywać odporność na działanie chemikaliów i dużą transmisję promieniowania. Stosuje się głównie kuwety wykonane ze szkła kwarcowego lub optycznego, rzadziej z tworzywa sztucznego, o grubości 10 mm, spotyka się jednak również kuwety o mniejszej lub większej grubości. 4. Detektor Kolejny sektor wirujący miesza obie wiązki wychodzące z próbki i kieruje na detektor, zwykle fotopowielacz, w którym następuje zamiana impulsów świetlnych na elektryczne. Zadaniem detektora jest więc pomiar natężenia promieniowania. Stosowane są detektory fotoelektryczne, które przetwarzają energię promieniowania na energię elektryczną. Oprócz fotopowielaczy stosowane są fotokomórki i fotodiody. 11

5. Miernik Nastepnie mierzony sygnał trafia do komputera gdzie obliczany jest stosunek I/I 0 dla danej, zadanej długości fali. 4. LITERATURA [1] Cygański A.: Metody spektroskopowe w chemii analitycznej, WNT Warszawa 2013. [2] Jarosz M., Malinowska E.: Pracownia Chemiczna. Analiza instrumentalna, WSiP Warszawa 1999. [3] Grabowska B. and all, Spectrophotometry Application For The Montmorillonite Content Determination In Moulding Sands With Bentonite, Metallurgy And Foundry Engineering, Vol. 37, 2011, No. 1 12

5. INSTRUKCJA DO ĆWICZENIA: 5.1. Temat ćwiczenia: Metody spektralne w inżynierii materiałowej. 5.2. Cel ćwiczenia: Spektrofotometryczne oznaczenie wybranych substancji nieorganicznych. 5.3. Aparatura i sprzęt laboratoryjny - wirówka - spektrofotometr firmy Hach, typ DR 2500 Odyssey. Dane techniczne spektrofotometru: szerokość pasma < 4 nm+/-1 nm dla 456,07 nm; dokładność długości fali: +/-1 nm w zakresie 400-700 nm; rozdzielczość długości fali: 0,5 nm. 5.4. Odczynniki i materiały - roztwór Cu(II)-trietylenotetraminy, - próbka masy zużytej, - chlorek baru, - kwas askorbinowy, - woda destylowana. 5.5. Wykonanie ćwiczenia 1. Zawartość kolby z badaną próbą odwirować i przesączyć, 2. Skalibrować spektrofotmetr dla wody destylowanej przy zadanej długości długości fali λ, 3. Sprawdzić wskazania spektrofotometru (A absorbancja, T transmisja) przy zadanej długości fali λ, 4. W uzyskanych przesączach oznaczyć spektrofotometrycznie wskazane substancje przez prowadzącego. Oznaczenie prowadzić zgodnie z otrzymaną metodyką postępowania. 5. Zestawić wyniki w tabeli. Tabela wyników Oznaczenie Jednostka Wynik oznaczenia Próba A Próba B Średni wynik Barwa przesączu 5.6. Opracowanie sprawozdania Imię i Nazwisko Rok Kierunek TEMAT ĆWICZENIA Data wykonania: Zaliczenie: - wstęp teoretyczny; - cel ćwiczenia; - wykonanie ćwiczenia; - stosowana aparatura; - metodyka oznaczeń; - tabela wyników; - wnioski. 13