ADSORPCJA PARACETAMOLU NA WĘGLU AKTYWNYM

Podobne dokumenty
Zjawiska powierzchniowe

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

POLITECHNIKA GDAŃSKA

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

Materiały polimerowe laboratorium

Ćwiczenie IX KATALITYCZNY ROZKŁAD WODY UTLENIONEJ

Termodynamika fazy powierzchniowej Zjawisko sorpcji Adsorpcja fizyczna: izoterma Langmuira oraz BET Zjawiska przylegania

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Wykład 13. Anna Ptaszek. 4 stycznia Katedra Inżynierii i Aparatury Przemysłu Spożywczego. Fizykochemia biopolimerów - wykład 13.

3. Badanie kinetyki enzymów

d[a] = dt gdzie: [A] - stężenie aspiryny [OH - ] - stężenie jonów hydroksylowych - ] K[A][OH

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Wykład 5. Anna Ptaszek. 9 października Katedra Inżynierii i Aparatury Przemysłu Spożywczego. Chemia fizyczna - wykład 5. Anna Ptaszek 1 / 20

Ćwiczenie 7. Wyznaczanie stałej szybkości oraz parametrów termodynamicznych reakcji hydrolizy aspiryny.

Chemia fizyczna. Adsorpcja. Zakład Chemii Medycznej Pomorskiego Uniwersytetu Medycznego

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

Wykład 5. Anna Ptaszek. 30 października Katedra Inżynierii i Aparatury Przemysłu Spożywczego. Fizykochemiczne podstawy procesów przemysłu

Wyznaczanie stałej dysocjacji pk a słabego kwasu metodą konduktometryczną CZĘŚĆ DOŚWIADCZALNA. Tabela wyników pomiaru

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

Przedmiot: Chemia budowlana Zakład Materiałoznawstwa i Technologii Betonu

Wykład 4. Przypomnienie z poprzedniego wykładu

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

TERMODYNAMIKA TECHNICZNA I CHEMICZNA

ĆWICZENIE 3. Farmakokinetyka nieliniowa i jej konsekwencje terapeutyczne na podstawie zmian stężenia fenytoiny w osoczu krwi

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Podstawowe prawa opisujące właściwości gazów zostały wyprowadzone dla gazu modelowego, nazywanego gazem doskonałym (idealnym).

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Politechnika Wrocławska. Procesy Chemiczne. Ćw. W3 Adsorpcja z roztworów na węglu aktywnym. Kinetyka procesu. Opracowane przez: Ewa Lorenc-Grabowska

Symulacja Monte Carlo izotermy adsorpcji w układzie. ciało stałe-gaz

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Produkty Chemiczne Część węglowa

ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

Podstawowe pojęcia Masa atomowa (cząsteczkowa) - to stosunek masy atomu danego pierwiastka chemicznego (cząsteczki związku chemicznego) do masy 1/12

K02 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie 14. Maria Bełtowska-Brzezinska KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNYCH

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

TRANSPORT NIEELEKTROLITÓW PRZEZ BŁONY WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PRZEPUSZCZALNOŚCI

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

Laboratorium z bionanostruktur. Prowadzący: mgr inż. Jan Procek Konsultacje: WT D- 1 8A

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

KINETYKA INWERSJI SACHAROZY

KATALITYCZNY ROZKŁAD WODY UTLENIONEJ

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Roztwory buforowe (bufory) (opracowanie: dr Katarzyna Makyła-Juzak)

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

PROCESY JEDNOSTKOWE W TECHNOLOGIACH ŚRODOWISKOWYCH ADSORPCJA

Kinetyka chemiczna jest działem fizykochemii zajmującym się szybkością i mechanizmem reakcji chemicznych w różnych warunkach. a RT.

Wykład 2. Anna Ptaszek. 7 października Katedra Inżynierii i Aparatury Przemysłu Spożywczego. Chemia fizyczna - wykład 2. Anna Ptaszek 1 / 1

Odwracalność przemiany chemicznej

KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNYCH Wyznaczenie stałej Michaelisa i maksymalnej szybkości reakcji hydrolizy sacharozy katalizowanej przez inwertazę.

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

GAZ DOSKONAŁY. Brak oddziaływań między cząsteczkami z wyjątkiem zderzeń idealnie sprężystych.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

chemia wykład 3 Przemiany fazowe

prof. dr hab. Małgorzata Jóźwiak

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

WYZNACZANIE STOSUNKU c p /c v

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

OCENA CZYSTOŚCI WODY NA PODSTAWIE POMIARÓW PRZEWODNICTWA. OZNACZANIE STĘŻENIA WODOROTLENKU SODU METODĄ MIARECZKOWANIA KONDUKTOMETRYCZNEGO

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

1 ADSORPCJA. Sprawdzono w roku 2014 przez K. Czapińską

Wykład 1. Anna Ptaszek. 5 października Katedra Inżynierii i Aparatury Przemysłu Spożywczego. Chemia fizyczna - wykład 1. Anna Ptaszek 1 / 36

3. Przejścia fazowe pomiędzy trzema stanami skupienia materii:

4. WYZNACZENIE IZOTERMY ADSORPCJI METODĄ ECP

Deproteinizacja jako niezbędny etap przygotowania próbek biologicznych

Laboratorium Inżynierii Bioreaktorów

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Czy równowaga jest procesem korzystnym? dr hab. prof. nadzw. Małgorzata Jóźwiak

dr hab. inż. Józef Haponiuk Katedra Technologii Polimerów Wydział Chemiczny PG

Repetytorium z wybranych zagadnień z chemii

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

SZYBKOŚĆ REAKCJI CHEMICZNYCH. RÓWNOWAGA CHEMICZNA

PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

ĆWICZENIE 1. Farmakokinetyka podania dożylnego i pozanaczyniowego leku w modelu jednokompartmentowym

Badanie kinetyki katalitycznego rozkładu H 2 O 2

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Transkrypt:

ADSORPCJA PARACETAMOLU NA WĘGLU AKTYWNYM CEL ĆWICZENIA Celem ćwiczenia jest analiza procesu adsorpcji paracetamolu na węglu aktywnym. Zadanie praktyczne polega na spektrofotometrycznym oznaczeniu stężenia paracetamolu w roztworze przed i po procesie adsorpcji na węglu aktywnym. Uzyskane wyniki pozwolą na sprawdzenie czy adsorpcja paracetamolu na węglu aktywnym może być opisana przez równanie izotermy Freundlicha. ZAGADNIENIA DO PRZYGOTOWANIA Zjawiska adsorpcji na powierzchni ciała stałego, adsorpcja fizyczna i chemiczna, izotermy adsorpcji (Langmuira, Freundlicha, BET), zjawisko histerezy, adsorbenty. WPROWADZENIE Przyleganie cząsteczek do powierzchni ciała stałego (gromadzenie się cząsteczek w fazie powierzchniowej) nosi nazwę adsorpcji. Substancję, która ulega adsorpcji, nazywamy adsorbatem, natomiast substancję (podłoże), na powierzchni której ten proces zachodzi adsorbentem. Procesem odwrotnym do adsorpcji jest desorpcja. Adsorpcja substancji na powierzchni ciała stałego może zachodzić z fazy ciekłej (z roztworu), jak i z fazy gazowej. W zależności od charakteru odziaływań występujących pomiędzy cząsteczkami adsorbatu i adsorbentu, wyróżnia się: adsorpcję chemiczną (chemisorpcję) oraz adsorpcję fizyczną (fizysorpcję). Istnieje kilka różnic pomiędzy chemisorpcją i fizysorpcją: W procesie adsorpcji fizycznej pomiędzy adsorbentem i adsorbatem istnieją słabe (ale o dalekim zasięgu) oddziaływania van der Waalsa lub wiązania wodorowe, natomiast w przypadku adsorpcji chemicznej cząsteczki adsorbatu są związane na powierzchni adsorbentu wiązaniami chemicznymi Efekt energetyczny towarzyszący adsorpcji fizycznej jest znacznie niższy niż w przypadku adsorpcji chemicznej Wraz ze wzrostem temperatury adsorpcja fizyczna maleje (zwiększa się desorpcja); z drugiej strony, wzrost temperatury powoduje zwiększenie adsorpcji chemicznej Adsorpcja fizyczna jest procesem odwracalnym (wzrost temperatury powoduje zwiększenie desorpcji); o adsorpcji chemicznej mówi się, że jest zazwyczaj nieodwracalna (aby zerwać utworzone wiązania chemiczne trzeba by użyć drastycznych środków) W procesie chemisorpcji, ze względu na tworzące się wiązania chemiczne, na powierzchni adsorbentu może powstać tylko warstwa monomolekularna adsorbatu; w przypadku zjawiska fizysorpcji zazwyczaj powstaje kilka warstw adsorbatu na adsorbencie (rzadko warstwa monomolekularna). Matematyczny opis stanu równowagi adsorpcyjnej (stanu równowagi w układzie adsorbent adsorbat) wymaga znajomości trzech parametrów: temperatury, ilości substancji zaadsorbowanej oraz stężenia adsorbatu w fazie ciekłej (w układzie ciało stałe ciecz) lub ciśnienia gazu (w układzie ciało stałe gaz). Związek pomiędzy ilością zaadsorbowanej na powierzchni ciała stałego substancji a jej stężeniem w ściśle określonej (stałej) temperaturze opisany jest przez tzw. izotermy adsorpcji. Są to równania wyprowadzone teoretycznie, na podstawie przyjętego modelu adsorpcji, lub empirycznie, na podstawie danych doświadczalnych. 1

Izoterma Langmuira Langmuir przedstawił najprostszy model adsorpcji, opisujący proces adsorpcji monomolekularnej, który opiera się na trzech założeniach: Adsorpcja nie może przekroczyć monowarstwowego pokrycia; Powierzchnia adsorbentu posiada określoną liczbę równocennych miejsc aktywnych, tzw. centrów aktywnych; W jednym centrum aktywnym może się przyłączyć tylko jedna cząsteczka adsorbatu, a pomiędzy przyłączonymi cząsteczkami nie ma oddziaływań. Równanie Langmuira ma postać: (1) gdzie: a - ilość substancji (wyrażona w molach lub gramach) zaadsorbowana na jednostkowej masie adsorbentu a m - ilość substancji zaadsorbowana na jednostkowej masie adsorbentu, gdy wszystkie centra adsorpcji są zajęte (czyli w nasyconej monomolekularnej warstwie) K - stała będąca ilorazem stałej szybkości adsorpcji i stałej szybkości desorpcji p - ciśnienie gazu Wykres izotermy Langmuira przedstawia zależność pomiędzy ilością zaadsorbowanej substancji a jej stężeniem: Ryc. 1 Izoterma adsorpcji Langmuira. W początkowym odcinku wykresu (w zakresie małych ciśnień) widać wprost proporcjonalny wzrost adsorpcji wraz ze wzrostem ciśnienia. W miarę zaś wzrostu ciśnienia adsorbatu następuje wysycenie dostępnych centrów aktywnych. Wtedy, pomimo dalszego wzrostu ciśnienia nie zmienia się już wielkość adsorpcji, ponieważ cała powierzchnia adsorbentu jest zajęta (a zgodnie z założeniem modelu adsorpcja nie może przekroczyć monowarstwowego pokrycia). Wartości stałej K oraz a m można w łatwy sposób wyznaczyć przekształcając równanie izotermy Langmuira do postaci liniowej przez odwrócenie równania. (2) Z równania wynika, że im niższe nachylenie prostej, tym substancja w większym stopniu adsorbuje (większa wartość a m ). 2

Ryc. 2 Postać liniowa izotermy Langmuira. Izoterma Freundlicha Jest to empirycznie wyprowadzone równanie, które może opisywać proces adsorpcji wielowarstwowej. Równanie to ma postać: gdzie: a c k n (3) - ilość substancji (wyrażona w molach lub gramach) zaadsorbowana na jednostkowej masie adsorbenta - stężenie substancji - stała, jest to wielkość adsorpcji, gdy stężenie substancji wynosi 1 mol/l; jest tym większa, im większa jest pojemność adsorbentu - stała, wartość jest miarą oddziaływań pomiędzy cząsteczkami adsorbatu Izoterma Freundlicha, odmiennie od izotermy Langmuira, ma w całym zakresie stężeń przebieg krzywoliniowy (nie ma ograniczenia, że możliwa jest tylko adsorpcja jednowarstwowa): Ryc. 3 Izoterma adsorpcji Freundlicha. Wyznaczenie stałych k i n z równania izotermy Freundlicha jest możliwe po przekształceniu równania (3) do postaci liniowej przez obustronne zlogarytmowanie. (4) 3

Stałą n wyznacza się ze współczynnika kierunkowego, natomiast stałą k z punktu przecięcia prostej z osią OY. Ryc. 4 Liniowa postać izotermy Freundlicha. Izoterma BET Najczęściej spotykaną w praktyce izotermą opisującą proces adsorpcji wielowarstwowej jest izoterma BET, wyprowadzona przez Stephena Brunauera, Paula Emmeta i Edwarda Tellera: (5) gdzie: ϴ C Z - ułamek pokrycia powierzchni adsorbentu przez adsorbat - stała, proporcjonalna do różnicy pomiędzy ciepłem adsorpcji w pierwszej monomolekularnej warstwie i ciepłem skroplenia - stosunek wartości ciśnienia adsorbatu (p), przy którym określona masa adsorbuje się na 1 g adsorbentu do ciśnienia pary nasyconej adsorbatu (p o ) Ryc. 5 Izoterma BET. Izoterma BET jest często stosowana w przemyśle do wyznaczania powierzchni ciał stałych. 4

Zjawisko adsorpcji jest szeroko wykorzystywane w praktyce laboratoryjnej oraz w przemyśle. Jest to podstawa procesów oczyszczania, rozdzielania, analizowania i wyodrębniania związków występujących w mieszaninach. Ponadto, odgrywa zasadniczą rolę w chromatografii adsorpcyjnej. Także w lecznictwie wykorzystano zdolności adsorpcyjne niektórych związków, stosowanych między innymi w pierwszej pomocy przy zatruciach (węgiel medyczny) oraz w leczeniu biegunek (węgiel medyczny, diosmektyt). Zjawisko adsorpcji może być także przyczyną interakcji pomiędzy stosowanymi lekami, co z kolei powoduje obniżenie skuteczności farmakoterapii. LITERATURA 1. Hermann T.W.: Farmacja fizyczna. Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa 1999. 2. Hermann T.W.: Chemia fizyczna. Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa 2007. 3. Pigoń K., Ruziewicz Z., Chemia fizyczna. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2005. 4. Atkins P.W., Chemia fizyczna. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2001. 5

APARATURA I ODCZYNNIKI spektrofotometr UV-Vis termowytrząsarka (Thermo-shaker) zestaw pipet wodny roztwór HCl o stężeniu 0,1 mol/l roztwór podstawowy paracetamolu w 0,1 mol/l HCl o stężeniu 12,5 mg/ml roztwory wzorcowe paracetamolu w 0,1 mol/l HCl o stężeniach 12,5 µg/ml; 10,0 µg/ml; 7,5 µg/ml; 5,0 µg/ml; 2,5 µg/ml; 1,25 µg/ml węgiel aktywny WYKONANIE Zadanie praktyczne polega na spektrofotometrycznym oznaczeniu stężenia paracetamolu w roztworze przed i po procesie adsorpcji (po 45-minutowej inkubacji roztworu leku z węglem aktywnym). 1. W plastikowych probówkach z korkiem przygotować serię 6 próbek zawierających: próbka Masa węgla aktywnego [mg] Objętość [ml] roztworu paracetamolu o stęż. 12,5 mg/ml Objętość 0,1 mol/l HCl [ml] 1 100 8,0 ---- 2 100 6,0 2,0 3 100 4,0 4,0 4 100 2,7 5,3 5 100 0,8 7,2 zerowa 100 ------ 8,0 2. Probówki szczelnie zamknąć, starannie wymieszać i umieścić w termowytrząsarce. Inkubować próbki przez 45 minut w temperaturze 37 C. Szybkość wytrząsania próbek ustalić na 700 cykli/min. 3. W trakcie inkubacji próbek z węglem aktywnym przygotować krzywą wzorcową zależności absorbancji od stężenia paracetamolu w roztworze. W tym celu: a. Zmierzyć absorbancję roztworów wzorcowych paracetamolu przy λ max = 243 nm. Jako próby odniesienia (do kalibracji spektrofotometru) użyć 0,1 mol/l roztworu HCl. b. Sporządzić wykres krzywej wzorcowej A = f(c wz ) oraz wyznaczyć równanie prostej (skonsultować z asystentem istotność współczynnika b). 4. Po upływie wymaganego czasu na inkubację próbki wyjąć z termowytrząsarki i odwirować przez 10 minut przy szybkości 3500 obrotów/min. 6

5. Analiza supernatantu. W kolbach miarowych o pojemności 50 ml przygotować odpowiednie rozcieńczenia roztworów paracetamolu po adsorpcji z próbek 1-4. W tym celu odmierzyć (odpipetować) następujące objętości supernatantu: Próbka 1 (rozcieńczenie 1000x) 0,05 ml (50 µl) Próbka 2 (rozc. 1000x) 0,05 ml (50 µl) Próbka 3 (rozc. 1000x) 0,05 ml (50 µl) Próbka 4 (rozc. 100x) 0,50 ml (500 µl), a następnie uzupełnić do 50 ml 0,1 mol/l roztworem HCl. 6. Zmierzyć absorbancję otrzymanych rozcieńczeń przy λ max = 243 nm. Absorbancję próbki nr 5 zmierzyć przenosząc bezpośrednio do kuwety ok. 3 ml supernatantu (bez rozcieńczania). Aparat wykalibrować używając supernatantu z próbki zerowej (próbki nie zawierającej paracetamolu). Przy pipetowaniu supernatantu zwrócić uwagę, aby nie wstrząsać próbką, by pobrany roztwór był klarowny i nie zawierał cząstek węgla aktywnego. W przypadku zauważenia zanieczyszczenia w pobranym supernatancie próbkę ponownie odwirować i odpipetować czysty supernatant. 7. Korzystając z równania krzywej wzorcowej wyznaczyć stężenia paracetamolu w badanych próbkach po inkubacji z węglem (w obliczeniach uwzględnić rozcieńczenia): 1000 gdzie: C r stężenie paracetamolu w stanie równowagi (po inkubacji) [mg/ml] A absorbancja b punkt przecięcia z równania krzywej wzorcowej a współczynnik kierunkowy krzywej wzorcowej R rozcieńczenie próbki 8. Obliczyć ilość paracetamolu (w mg): a. Która znajdowała się w próbce przed inkubacją z węglem aktywnym b. Która pozostała w roztworze po inkubacji 9. Obliczyć wielkość adsorpcji a (ile mg paracetamolu adsorbuje się na 1 g węgla aktywnego). 10. Wykreślić zależność wielkości adsorpcji od stężenia paracetamolu w roztworze (uwzględniamy stężenia równowagowe po inkubacji) a = f(c r ). Przeanalizować przebieg krzywej z asystentem. 11. Wyznaczyć liniowe równanie izotermy Freundlicha, obliczyć wartości parametrów k i n. Przedyskutować z asystentem czy równanie izotermy Freundlicha dobrze opisuje proces adsorpcji paracetamolu na węglu aktywnym. 7

12. Przeanalizować wielkość adsorpcji paracetamolu na węglu aktywnym w środowisku żołądka (0,1 mol/l HCl) oraz w temperaturze organizmu ludzkiego. Jakie konsekwencje kliniczne mogą wiązać się z jednoczesnym przyjęciem paracetamolu i węgla aktywnego? Czy zjawisko adsorpcji paracetamolu na węglu aktywnym może mieć zastosowanie terapeutyczne? 13. Przeanalizować zjawisko adsorpcji paracetamolu na węglu aktywnym zachodzące w temperaturze wyższej lub niższej niż 37 C (na podstawie wyników podanych przez asystenta). Jakiego typu (fizyczna czy chemiczna) jest adsorpcja paracetamolu na węglu aktywnym? 8

WZÓR PROTOKOŁU Adsorpcja paracetamolu na węglu aktywnym Cel ćwiczenia: 1. Krzywa wzorcowa zależności absorbancji roztworu od stężenia paracetamolu w próbce. Nr próbki Stężenie paracetamolu C wz [µg/ml] 1 12,5 2 10,0 3 7,5 4 5,0 5 2,5 6 1,25 Absorbancja (λ max = 243 nm) Krzywa wzorcowa zależności A = f(c wz ) Współczynnik kierunkowy a Punkt przecięcia z osią OY b Błąd punktu przecięcia S b Czy współczynnik b jest istotny? TAK / NIE Współczynnik korelacji r Ostateczne równanie krzywej wzorcowej A = f(c wz ) (z uwzględnieniem istotności współczynnika b): 2. Obliczenie początkowej ilości paracetamolu w próbkach poddanych inkubacji z węglem aktywnym. Nr próbki 1 2 3 4 5 Stężenie paracetamolu w próbce C p [mg/ml] Ilość paracetamolu w próbce X p [mg] 9

Czas inkubacji:.. Temperatura inkubacji:. Szybkość wytrząsania: 3. Obliczenie stężenia paracetamolu w próbkach w stanie równowagi adsorpcyjnej (po inkubacji). Nr próbki Absorbancja (λ max =243 nm) rozcieńczenie Stężenie paracetamolu w stanie równowagi C r [mg/ml] 1 1000 2 1000 3 1000 4 100 5 --- 4. Obliczenie ilości paracetamolu zaadsorbowanego na węglu aktywnym. Nr próbki Masa węgla aktywnego Początkowa ilość paracetamolu w próbce X p Ilość paracetamolu w próbce w stanie równowagi X r Ilość paracetamolu zaadsorbowana na 100 mg węgla aktywnego X a = X p - X r [mg] [mg] [mg] [mg] [mg/1g węgla] a 1 100 2 100 3 100 4 100 5 100 5. Równanie izotermy Freundlicha (adsorpcja w temp. 37 C): Nr próbki C r [mg/ml] logc r a [mg/1g węgla] loga 1 2 3 4 5 10

Równanie liniowe izotermy Freundlicha: Wartość stałej k:. Wartość stałej n:.. 6. Równanie izotermy Freundlicha (adsorpcja w temp. 70 C): Nr próbki C 70 [mg/ml] Logc 70 a 70 [mg/1g węgla] Loga 70 1 2 3 4 5 Równanie liniowe izotermy Freundlicha: Wartość stałej k 70 :. Wartość stałej n 70 :.. 7. Załączniki: Wykres krzywej wzorcowej A = f(c wz ) Wykres izotermy Freundlicha a = f(c r ) Wykres liniowej postaci izotermy Freundlicha loga = f(logc r ) 8. Wnioski: 11