Przeciwciała poliklonalne przeciwko białkom Helicobacter pylori oraz sposób ich wytwarzania. (74) Pełnomocnik:



Podobne dokumenty
Nowoczesne systemy ekspresji genów

WYNALAZKI BIOTECHNOLOGICZNE W POLSCE. Ewa Waszkowska ekspert UPRP

Klonowanie molekularne Kurs doskonalący. Zakład Geriatrii i Gerontologii CMKP

Pytania Egzamin magisterski

Zakażenie pszczoły miodnej patogenem Nosema ceranae. Diagnostyka infekcji wirusowych pszczoły miodnej

Techniki immunoenzymatycznego oznaczania poziomu hormonów (EIA)

(54) Sposób immunologicznego wykrywania przeciwciał naturalnych, przeciwciała naturalne

TaqNovaHS. Polimeraza DNA RP902A, RP905A, RP910A, RP925A RP902, RP905, RP910, RP925

AmpliTest Salmonella spp. (Real Time PCR)

Inżynieria genetyczna- 6 ECTS. Inżynieria genetyczna. Podstawowe pojęcia Część II Klonowanie ekspresyjne Od genu do białka

Ćwiczenia 1 Wirtualne Klonowanie Prowadzący: mgr inż. Joanna Tymeck-Mulik i mgr Lidia Gaffke. Część teoretyczna:

RT31-020, RT , MgCl 2. , random heksamerów X 6

AmpliTest Babesia spp. (PCR)

Proteomika: umożliwia badanie zestawu wszystkich lub prawie wszystkich białek komórkowych

Zestawy do izolacji DNA i RNA

Agenda: Wynalazek jako własnośd intelektualna. Co może byd wynalazkiem. Wynalazek biotechnologiczny. Ochrona patentowa

mikrosatelitarne, minisatelitarne i polimorfizm liczby kopii

Sposób otrzymywania białek o właściwościach immunoregulatorowych. Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania fragmentów witellogeniny.

Dr. habil. Anna Salek International Bio-Consulting 1 Germany

PODSTAWY IMMUNOHISTOCHEMII. Determinanty antygenowe (epitopy) Surowice. Antygeny. Otrzymywanie przeciwciał poliklonalnych. poliwalentne monowalentne

FOCUS Plus - Silniejsza ryba radzi sobie lepiej w trudnych warunkach

AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR)

(86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego: , PCT/GB99/04377 (87) Data i numer publikacji zgłoszenia międzynarodowego:

Historia i przyszłość szczepień

Wybrane techniki badania białek -proteomika funkcjonalna

Zasady oceniania rozwiązań zadań 48 Olimpiada Biologiczna Etap centralny

PROJEKT WSPÓŁFINANSOWANY PRZEZ UNIĘ EUROPEJSKĄ Z EUROPEJSKIEGO FUNDUSZU ROZWOJU REGIONALNEGO 1 z 7

AmpliTest Panel odkleszczowy (Real Time PCR)

PL B1. Szczepanik Marian,Kraków,PL Selmaj Krzysztof,Łódź,PL BUP 26/ WUP 01/10

Ocena ekspresji genów proangiogennych w komórkach nowotworowych OVP-10 oraz transfektantach OVP-10/SHH i OVP-10/VEGF

Mikroorganizmy Zmodyfikowane Genetycznie

(21) Numer zgłoszenia: (54) Sposób wytwarzania preparatu barwników czerwonych buraka ćwikłowego

PL B1. GDAŃSKI UNIWERSYTET MEDYCZNY, Gdańsk, PL BUP 13/14

TaqNova-RED. Polimeraza DNA RP20R, RP100R

Tematyka zajęć z biologii

Mapowanie fizyczne genomów -konstrukcja map wyskalowanych w jednostkach fizycznych -najdokładniejszą mapą fizyczną genomu, o największej

TESTY IMMUNOCHROMATOGRAFICZNE

starszych na półkuli zachodniej. Typową cechą choroby jest heterogenny przebieg

SYLABUS. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki

Czy żywność GMO jest bezpieczna?

ROZPORZĄDZENIE KOMISJI (UE) / z dnia r.

SYLABUS. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 15/15

KLONOWANIE DNA REKOMBINACJA DNA WEKTORY

AmpliTest GMO screening-nos (Real Time PCR)

PL B1. PĘKACKI PAWEŁ, Skarżysko-Kamienna, PL BUP 02/06. PAWEŁ PĘKACKI, Skarżysko-Kamienna, PL

Transformacja pośrednia składa się z trzech etapów:

Inwestycja w przyszłość czyli znaczenie ochrony własności przemysłowej dla współczesnej biotechnologii

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

października 2013: Elementarz biologii molekularnej. Wykład nr 2 BIOINFORMATYKA rok II

Inwestycja w przyszłość czyli znaczenie ochrony własności przemysłowej dla współczesnej biotechnologii

Wybrane zastosowania metod inżynierii genetycznej

Novabeads Food DNA Kit

Sylabus Biologia molekularna

Rok akademicki: 2014/2015 Kod: EIB BN-s Punkty ECTS: 3. Kierunek: Inżynieria Biomedyczna Specjalność: Bionanotechnologie

PL B1. TRYBUŁA DARIUSZ, Pilchowo k/szczecina, PL BUP 25/05. DARIUSZ TRYBUŁA, Pilchowo k/szczecina, PL

(12) TŁUMACZENIE PATENTU EUROPEJSKIEGO (19) PL (11) PL/EP (96) Data i numer zgłoszenia patentu europejskiego:

INSTYTUT TRANSPORTU SAMOCHODOWEGO,

Scenariusz lekcji z biologii w szkole ponadgimnazjalnej

(11) PL B1 (12) OPIS PATENTOWY (19)PL (13)B1. Fig.3 B60R 11/02 H01Q 1/32. (54) Zespół sprzęgający anteny samochodowej

Prof. dr hab. E. K. Jagusztyn-Krynicka UNIWERSYTET WARSZAWSKI

Ćwiczenia 1 Wirtualne Klonowanie. Prowadzący: mgr Anna Pawlik i mgr Maciej Dylewski. Część teoretyczna:

Zawartość. Wstęp 1. Historia wirusologii. 2. Klasyfikacja wirusów

PCR bez izolacji testujemy Direct PCR Kits od ThermoFisher Scientific

PL B1. Sposób wykrywania i różnicowania chorób należących do grupy hemoglobinopatii, zwłaszcza talasemii

Analizy DNA in silico - czyli czego można szukać i co można znaleźć w sekwencjach nukleotydowych???

PL B1. GULAK JAN, Kielce, PL BUP 13/07. JAN GULAK, Kielce, PL WUP 12/10. rzecz. pat. Fietko-Basa Sylwia

PL B1 (12) O P I S P A T E N T O W Y (19) P L (11) (13) B 1 A61K 9/20. (22) Data zgłoszenia:

Ekspresja białek w komórkach ssaczych

LEKI CHEMICZNE A LEKI BIOLOGICZNE

występować w ludzkim osoczu. Szczególnie przeciwciała anty-mysie (HAMA) stanowią problem dzisiejszej analityki medycznej. Mogą one bowiem silnie

Biotechnologia jest dyscypliną nauk technicznych, która wykorzystuje procesy biologiczne na skalę przemysłową. Inaczej są to wszelkie działania na

(86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego: ,PCT/EP99/09864 (87) Data i numer publikacji zgłoszenia międzynarodowego:

Inżynieria genetyczna

Biologia Molekularna z Biotechnologią ===============================================================================================

Inżynieria Genetyczna ćw. 3

Patentowanie wynalazków z dziedziny biotechnologii

Możliwości współczesnej inżynierii genetycznej w obszarze biotechnologii

Polimeraza Taq (1U/ l) 1-2 U 1 polimeraza Taq jako ostatni składniki mieszaniny końcowa objętość

PL B1. Sposób amplifikacji DNA w łańcuchowej reakcji polimerazy za pomocą starterów specyficznych dla genu receptora 2-adrenergicznego

lutego 2012

Definicje. Białka rekombinowane (ang. recombinant proteins, r-proteins) Ukierunkowana mutageneza (ang. site-directed/site-specific mutagenesis)

Przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec epitopu ludzkiego białka CA 15-3( ), sposób ich wytwarzania oraz ich zastosowanie

PL B1. Sposób badania przyczepności materiałów do podłoża i układ do badania przyczepności materiałów do podłoża

Informacje dotyczące pracy kontrolnej

Techniki molekularne w mikrobiologii SYLABUS A. Informacje ogólne

Patentowanie wynalazków biotechnologicznych

Technika fluorescencyjnego oznaczania aktywności enzymów. Wstęp:

PL B1. Balcer Józef Zakład Wielobranżowy RETRO,Nakło n/notecią,pl BUP 25/04. Józef Balcer,Nakło n/notecią,pl

Biologia komórki i biotechnologia w terapii schorzeń narządu ruchu

AmpliTest TBEV (Real Time PCR)

S YL AB US MODUŁ U ( PRZEDMIOTU) I nforma c j e ogólne

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11)

(12) O PIS PATENTOWY (19) PL (11) (13) B1

Powodzenie reakcji PCR wymaga właściwego doboru szeregu parametrów:

(73) Uprawniony z patentu: (75) Pełnomocnik:

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

PL B1. Preparat o właściwościach przeciwutleniających oraz sposób otrzymywania tego preparatu. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 12/17

Transkrypt:

RZECZPOSPOLITA POLSKA Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) 201982 (21) Numer zgłoszenia: 361069 (22) Data zgłoszenia: 03.07.2003 (13) B1 (51) Int.Cl. A61K 39/40 (2006.01) C12N 15/11 (2006.01) A61P 1/04 (2006.01) C07K 16/12 (2006.01) (54) Przeciwciała poliklonalne przeciwko białkom Helicobacter pylori oraz sposób ich wytwarzania (43) Zgłoszenie ogłoszono: 10.01.2005 BUP 01/05 (45) O udzieleniu patentu ogłoszono: 29.05.2009 WUP 05/09 (73) Uprawniony z patentu: Polska Akademia Nauk, Instytut Biochemii i Biofizyki,Warszawa,PL INSERM U271, Virus des hepatites et pathologies associees,lion,fr (72) Twórca(y) wynalazku: Lucyna Cova,Lion,FR Kacper Kazimierczuk,Siedlce,PL Hilary Koprowski,Warszawa,PL Agnieszka Sirko,Warszawa,PL Christian Trepo,Bron,FR Włodzimierz Ostoja-Zagórski,Warszawa,PL (74) Pełnomocnik: Iwona Brodwska, Lex-Pat Biuro Prawno-Patentowe S.C. PL 201982 B1 (57) 1. Przeciwciała poliklonalne przeciwko Helicobacter pylori są wyizolowane z żółtka jaj drobiu immunizowanego preparatami DNA zawierającymi fragmenty genomowego DNA o wysokiej specyficzności antygenowej oraz charakteryzują się ptasimi strukturalnymi cechami filogenetycznymi, zwłaszcza opornością na barierę gastryczną oraz zwiększoną masą cząsteczkową. 2. Przeciwciała według zastrz. 1, znamienne tym, że maja masę od 170000-174000 daltonów. 3. Przeciwciała według zastrz. 1, znamienne tym, że skierowane są przeciwko białkom zawierającym w swojej strukturze epitopy białka UreB Helicobacter pylori o sekwencji aminokwasowej przedstawionej wzorem 1. 4. Przeciwciała według zastrz. 1, znamienne tym, że skierowane są przeciwko białkom zawierającym w swojej strukturze epitopy białka HspB Helicobacter pylori o strukturze aminokwasowej przedstawionej wzorem 2. 5. Sposób wytwarzania ptasich monospecyficznych przeciwciał skierowanych przeciwko antygenom Helicobacter pylori o wysokiej specyficzności antygenowej i opornych na barierę gastryczną, z wykorzystaniem DNA immunizacji ptaków, znamienny tym, że immunizuje się drób, korzystnie kaczkę lub kurę hodowlaną, wyizolowanym z bakterii Helicobacter pylori fragmentem genomowego DNA kodującym antygen Helicobacter pylori, o odpowiedniej strukturze białkowej, a po potwierdzeniu wystąpienia specyficznej odpowiedzi immunologicznej na dany antygen w postaci obecności odpowiednich przeciwciał IgG w serum immunizowanego ptaka, wyizolowuje się z żółtka jaj danego osobnika przeciwciała IgY w czystej formie.

2 PL 201 982 B1 Opis wynalazku Przedmiotem wynalazku są ptasie monospecyficzne poliklonalne przeciwciała IgY skierowane przeciwko białkom Helicobacter pylori oraz sposób wytwarzania tych przeciwciał przez immunizację drobiu za pomocą DNA. Dotychczas opisane były różne sposoby produkcji przeciwciał, zarówno poliklonalnych, jak i monoklonalnych, skierowanych przeciwko antygenom Helicobacter pylori. Metody produkcji przeciwciał poliklonalnych najczęściej wiązały się z immunizacją ssaków (Hirota et al., 2001, Inf. Immun. 69, 6597; Casswall et al., Scnd. J. Gastroenterol, 2002, 37, 1380) lub drobiu (Shin et al. 2002, Clin. Diagn. Lab. Immunol., 1061) za pomocą zinaktywowanych całych komórek H. pylori. Uzyskane w ten sposób przeciwciała nie są przeciwciałami monospecyficznymi, tj. rozpoznają wiele białek Helicobacter pylori. Ponadto, mogą one rozpoznawać też białka innych bakterii, np. białka naturalnej flory bakteryjnej występującej w organizmach ludzkich. Wiąże się to z obniżeniem wydajności działania przeciwciał oraz zniszczeniem własnej flory bakteryjnej osobnika. Tradycyjne metody produkcji przeciwciał monoklonalnych są bardzo żmudne i skomplikowane. Również stosowane ostatnio nowsze metody, prowadzące do wyizolowania fragmentów monoklonalnych przeciwciał (scfv) wymagają skonstruowania odpowiednich bibliotek cdna oraz wielu następujących po sobie rund oczyszczania i sprawdzania specyficzności (Reiche al., 2002, Inf. Immun. 70, 4158). Produkcja dużej ilości przeciwciał jest ograniczona w takim wypadku przez względy ekonomiczne wynikające np. z olbrzymiej pracochłonności początkowych etapów produkcji przeciwciał monoklonalnych, niskiej wydajności izolacji przeciwciał poliklonalnych z surowicy immunizowanych zwierząt (izolacja przeciwciał z krwi) lub z ograniczenia czasu produkcji przeciwciał tylko do krótkiego okresu przed i po porodzie (w przypadku izolacji przeciwciał z siary). Inne ograniczenia wynikają ze względów etycznych - uzyskanie ostatecznej ilości krwi do izolacji przeciwciał poliklonalnych wiąże się z koniecznością zabicia zwierząt produkujących te przeciwciała. A ponadto, podczas immunizacji preparatami zawierającymi białka lub całe komórki Helicobacter pylori pracownik narażony jest na bezpośredni kontakt z patogenem. Kolejnym ograniczeniem jest całkowita nieodporność otrzymywanych przez immunizację ssaków przeciwciał na barierę gastryczną, a w przypadku Helicobacter pylori ma to zasadnicze znaczenie, ponieważ bakteria ta bytuje w przewodzie pokarmowym i tam musi być leczona. Metody immunizacji zwierząt za pomocą szczepionek DNA były opisane już kilka lat temu (Gregersen, 2001, Naturwissenschaften, 88, 504). Znana była także immunizacja ssaków za pomocą samego DNA Helicobacter pylori, jednak była ona stosowana jedynie w celu uzyskania odporności immunizowanych zwierząt (szczepionka DNA), ale nie w celu uzyskania na skalę masową przeciwciał terapeutycznych czy diagnostycznych (Todoroki et al., 2000, BBRC 272, 159). Dotychczas opisane były również metody immunizacji drobiu za pomocą DNA w celu uzyskania oporności na choroby drobiu wywoływane zakażeniem wirusowym (Rollier et al., 2000, J. Virol, 74, 4908). Obecnie obserwuje się wzrost zainteresowania wykorzystaniem ptaków (drobiu) jako potencjalnych dostawców specyficznych przeciwciał. Wiadomo, iż w przypadku ptaków, immunizacja lizatem komórkowym powoduje przechodzenie jednej klasy macierzystych immunoglobin z serum immunizowanego drobiu do jaj oraz ich akumulację w żółtkach jaj, co znacznie ułatwia i przyspiesza proces oczyszczania. Z drugiej strony wiadomo, że istotną zaletą przeciwciał IgY jest fakt, że są one oporne na barierę gastryczną i w kilku przypadkach potwierdzono ich efektywność po podaniu doustnym w zapobieganiu chorobom wywoływanym przez patogeny przewodu pokarmowego takie jak: rotawirusy (Sarker et al., 2001, J. Pediatr. Gastroenterl. Nutr. 32, 19), bakterie Eschehchia coli (Marquardt al., 1999, FEMS Immunol. Med. Microbiol. 23, 283). Natomiast brak jest dotąd doniesień o wykorzystaniu metody immunizacji drobiu preparatem DNA w celu uzyskania przeciwciał IgY skierowanych przeciwko antygenom Helicobacter pylori. Nieoczekiwanie okazało się, że możliwe jest otrzymanie przeciwciał przeciwko antygenom Helicobacter pylori z dużą wydajnością, metodą według wynalazku, łączącą korzyści metod immunizacji drobiu preparatami DNA i produkcji przeciwciał w jajach. Metoda ta pozwala na szybkie wygenerowanie znaczących ilości specyficznych przeciwciał, korzystnie odróżniających się od dotychczas uzyskiwanych przeciwciał przeciwko antygenom Helicobacter pylori monospecyficznością oraz odznaczają-

PL 201 982 B1 3 cych się wysoką opornością na barierę gastryczną, mogących znaleźć zastosowanie w immunoterapii oraz immunodiagnostyce. Przeciwciała poliklonalne IgY, przeciwko antygenom Helicobacter pylori, według wynalazku charakteryzują się opornością na barierę gastryczną oraz zwiększoną masą cząsteczkową. Przeciwciała według wynalazku korzystnie maja masę od 170000-174000 daltonów. Znane dotychczas ssacze przeciwciała rozpoznające antygeny Helicobacter pylori miały masę około 150 000 daltonów. Wymienione cechy odróżniają przeciwciała według wynalazku od znanych dotychczas przeciwciał ssaczych rozpoznających antygeny Helicobacter pylori. Przeciwciała według wynalazku odróżniają się także od dotychczas znanych ptasich przeciwciał IgY rozpoznających antygeny Helicobacter pylori otrzymanych przez immunizację drobiu zinaktywowanymi komórkami Helicobacter pylori monospecyficznością, ponieważ otrzymuje się je w wyniku immunizacji drobiu zdefiniowanymi preparatami DNA kodującymi określone białko/antygen (lub epitop) Helicobacter pylori, a nie w wyniku immunizacji preparatami białkowymi lub lizatem komórkowym (zinaktywowanymi komórkami). Szczególnie korzystnie, przeciwciała według wynalazku skierowane są przeciwko białkom zawierającym strukturę aminokwasową lub jej fragmenty (epitopy) przedstawione wzorem 1 albo przeciwko białkom zawierającym strukturę aminokwasową lub jej fragmenty (epitopy) przedstawione wzorem 2. Sposób wytwarzania monospecyficznych przeciwciał skierowanych przeciwko antygenom Helicobacter pylori o wysokiej specyficzności antygenowej i opornych na barierę gastryczną, według wynalazku polega na tym, że immunizuje się drób, korzystnie kaczkę lub kurę hodowlaną, wyizolowanym z bakterii Helicobacter pylori fragmentem DNA kodującym antygen Helicobacter pylori, a po potwierdzeniu wystąpienia specyficznej odpowiedzi immunologicznej na dany antygen wyizolowuje się z żółtka jaj danego osobnika przeciwciała IgY w czystej formie. Korzystnie, jako fragment Helicobacter pylori stosuje się fragment DNA kodujący białko UreB o sekwencji genowej przedstawionej wzorem 3 albo o sekwencji genowej przedstawionej wzorem 4, kodującej białko HspB. W sposobie według wynalazku uzyskuje się przeciwciała specyficznie rozpoznające antygeny kodowane przez stosowane fragmenty DNA. Przeciwciała według wynalazku wyizolowuje się z wysoką wydajnością (60-100 mg/jajko) z żółtka jajka, gdzie są zakumulowane. Wyizolowane przeciwciała mają wysokie miano i dużą trwałość, ponadto w poszczególnych jajach od danego osobnika występują niewielkie indywidualne różnice w ich mianie, co gwarantuje odtwarzalność procesu otrzymywania przeciwciał zapewniającą jednoznaczność czynnika wywołującego odpowiedź immunologiczną. Ta odtwarzalność procesu jest znacznie wyższa niż w stosowanych dotychczas technikach wytwarzania przeciwciał. Przeciwciała według wynalazku mają również wysoką specyficzność antygenową, będąc poliklonalnymi przeciwciałami monospecyficznymi mają zdolność do rozpoznawania ( wyłapania ) mutacyjnie zróżnicowanych wersji antygenu. Jedną z najważniejszych cech przeciwciał według wynalazku jest ich oporność na barierę gastryczną, ponieważ Helicobacter pylori bytuje w żołądku i ta właśnie oporność ma zasadnicze znaczenie w zapobieganiu i leczeniu chorób wywoływanych przez tę bakterię. Sposób według wynalazku jest wysoko nieinwazyjny, a więc zgodny z duchem ustawy o ochronie zwierząt, ponieważ nie wymaga skrwawiania zdrowych zwierząt w celu otrzymania wymaganych przeciwciał. Przy jednoczesnym dużym dziennym zbiorze jajek z immunizowanego genem drobiu, metoda według wynalazku jest szybką i nieinwazyjną metodą produkcji znaczącej ilości biologicznie aktywnych przeciwciał przeciwko Helicobactr pylori. Ponieważ DNA może być łatwo wprowadzone do plazmidowego DNA, genetyczne szczepienie drobiu hodowlanego pozwala na szybkie wygenerowanie specyficznych przeciwciał IgY przeciw wielu różnym białkom bakterii Helicobacter pylori, zwłaszcza białkom silnie immunogennym - antygenom. Metoda według wynalazku pozwala na wytworzenie przeciwciał bez zbędnej straty czasu, to znaczy na produkcję dużej ilości antygenu (białka) do immunizacji oraz bez stosowania drogich procedur oczyszczania białek do immunizacji. Oczyszczanie przeciwciał IgY z żółtek jaj nie jest procesem skomplikowanym i dostępne metody zapewniają wysoką wydajność takiego oczyszczania. Co ważniejsze, drobiowe przeciwciała IgY okazują się być bardzo przydatne jako czynniki immunodiagnostyczne, ponieważ białka te nie dają akcji krzyżowej odpowiedzi immunologicznej z globulinami

4 PL 201 982 B1 ssaczymi, w przeciwieństwie do możliwości takiej reakcji np. w przypadku produkcji ssaczych monoklonalnych immunoglobulin opartej na ekspresji odpowiednio zaprojektowanego fragmentu DNA na podstawie znanych sekwencji immunoglobulin ssaczych. Dodatkowo, oralnie podawane przeciwciała według wynalazku przeciwko Helicobactr pylori mogą być zastosowane do pasywnej immunoterapii tej bakterii (in statu nascendi) znajdujących się w żołądku, ze względu na to, iż przeciwciała te są oporne na barierę gastryczną i nie ulegają szybkiej degradacji w przewodzie pokarmowym, jak podano wcześniej. Sposób według wynalazku zapewnia wysokie bezpieczeństwo pracy, ponieważ na żadnym etapie pracy pracownik nie jest narażony na bezpośredni kontakt z patogenem. Metoda stosowana według wynalazku pozwala na uzyskanie przeciwciał nawet przeciwko białkom występującym w niskich stężeniach lub białkom związanym z błonami komórkowymi i w związku z tym trudnym do wyizolowania w czystej formie, jak ma to miejsce w przypadku niektórych antygenów Helicobacter pylori. Natomiast przeciwciała według wynalazku są szczególnie cenne do celów imunodiagnostycznych, ponieważ nie wykazują reakcji krzyżowej z białkami ssaków oraz są one autoagresywne w ssakach, w związku z filogenetyczną odległością pomiędzy ptakami i ssakami. Rozwiązanie według wynalazku może znaleźć zastosowanie w immunoterapii ludzi i zwierząt przeciw infekcjom Helicobacter. Dodatkowo przeciwciała otrzymane metodą według wynalazku mogą być bardzo obiecujące w zastosowaniu w testach immunodiagnostycznych, np. ELISA oraz w badaniach mikroskopowych tkanek zakażonych osobników (immunolokalizacja bakterii). W sposobie wywarzania przeciwciał z wykorzystaniem immunizacji genowej drobiu, według wynalazku prowadzi się DNA immunizację drobiu przez wprowadzenie domięśniowo odpowiednich plazmidów zawierających sekwencje kodujące wybrane białko (antygen) i uzyskanie specyficznej odpowiedzi immunologicznej skierowanej przeciwko temu białku w postaci poliklonalnych monospecyficznych przeciwciał. Poza tym, w świetle zsekwencjonowania ostatnio ludzkiego genomu oraz dostępności sekwencji genomowych dla wielu organizmów eukariotycznych i prokariotycznych, metoda według wynalazku może pozwolić na szybkie wytwarzanie specyficznych przeciwciał dla nieznanych dotychczas protein kodowanych przez konkretne geny, a także na zlokalizowanie tych białek w komórkach i tkankach poprzez immunolokalizację. Poniżej przedstawiono przykłady wykonania wynalazku. P r z y k ł a d I Konstrukcja plazmidu oraz immunizacja drobiu W celu skonstruowania plazmidu mającego służyć do DNA-immunizacji kaczki wybrano gen ureb, kodujący dużą podjednostkę ureazy, białko UreB Helicobacter pylori, będące silnym antygenem tej bakterii. Jako materiały wyjściowe użyto: plazmid pci (wektor dostępny z firmy Promega) oraz plazmid par3 niosący gen ureb H. pylori o sekwencji DNA przedstawionej wzorem 3. Na matrycy plazmidu par3 przeprowadzono reakcję amplifikacji (PCR), stosując następujące oligonukleotydy jako startery dla polimerazy DNA: UREBPC11 (5'-GCGAATTCCGCCATGGAAAAGATTA-3') oraz UREBPC12 (5'-CGCTCTAGACTAGAAAATGCTAAAG-3'). Produkt reakcji amplifikacji sklonowano do wektora pci, uzyskując plazmid par72, zawierający gen kodujący białko UreB H. pylori pod kontrolą promotora CMV (ang. cytomegalovirus immediateearly enhancer/promoter region) obecnego w plazmidzie pci oraz sekwencje zapewniające wydajną translację genu ureb w komórkach drobiu, które wprowadzono przed kodonem inicjacji translacji (ATG) genu ureb. Sekwencje te są obecne w starterze UREBPC11. Prawidłowość klonowania została potwierdzona poprzez zsekwencjonowanie plazmidu i trawienia restrykcyjne. Plazmidowe DNA zostało namnożone oraz oczyszczone na kolumnach (firmy Qiagen) oraz użyte do immunizacji drobiu. Konstruktem (preparatem DNA) szczepiono domięśniowo kaczkę hodowlaną 5-krotnie w odstępach 2-4 tygodniowych, jednorazowo stosując 0,25-0,5 mg DNA. Sprawdzenie obecności przeciwciał w surowicy immunizowanych kaczek Metodą dot-blot sprawdzono surowice kaczek szczepionych plazmidem par72 oraz konstruktem kontrolnym. Surowice rozcieńczono 500 x, 1000 x, 2000 x i 5000 x, a następnie inkubowano z membraną zawierającą nakroploną porcję oczyszczonego białka UreB (01 μg) i białka kontrolnego. Jako przeciwciała drugorzędowe zastosowano komercyjne przeciwciała anty-kacze IgG skoniugowa-

PL 201 982 B1 5 ne z HRP (Research Diagnostics, Inc.) Przeciwciała te zostały rozcieńczone 5000 x i 10000 x. Surowica z kaczki immunizowanej plazmidem par72 specyficznie wiązała białko UreB, natomiast w przypadku surowicy z kaczki immunizowanej konstruktem kontrolnym uzyskano wynik negatywny. Charakterystyka przeciwciał oczyszczonych z żółtek jaj immunizowanych kaczek Przeciwciała z żółtek jaj immunizowanych kaczek zostały wyekstrahowane oraz oczyszczone za pomocą komercyjnie dostępnych odczynników. Stężenie białka w preparacie zostało sprawdzone, a następnie potwierdzono specyficzność przeciwciał IgY metodą dot-blot oraz metodą Western-blot używając oczyszczonego białka UreB oraz białka BSA (albuminy serum wołu), jako kontroli negatywnej. Następnie, w celu zmianowania przeciwciał przeprowadzono oznaczenie ELISA. Antygenem było białko UreB (0,5 μg/100 μl). Płytki (Costar, EIA/RIA 96 well plates, high binding, nr. kat. 9018) opłaszczano białkiem UreB przez noc. Kontrolnie, zamiast UreB używano BSA. Poszczególne czasy inkubacji: (1) z testowanymi przeciwciałami IgY, (2) blokowania BSA oraz (3) inkubacji z przeciwciałem drugorzędowym (kozie, anty-kacze IgG sprzężone z HRP, Research Diagnostics, Inc.) wynosiły w każdym przypadku 60 min. Płytki płukano buforem PBS. Reakcję z przeciwciałami skoniugowanymi z HRP prowadzono przy użyciu kitu TMB Peroxidase EIA Substrate Kit, Bio-Rad. Przykładowe wyniki wstępnego zmianowania przeciwciał testem ELISA pokazano na fig. 1. Stwierdzono wysoką aktywność anty-ureb w preparacie zawierającym przeciwciała kaczki immunizowanej konstruktem par72. Największe użyte rozcieńczenie tych przeciwciał (8000 x) ciągle wykazywało bardzo dużą różnicę w sile wiązania przeciwciał do UreB oraz do BSA (białko kontrolne). Stosując ekstrakt ze zrekombinowanych komórek Escherichia coli produkujących aktywną enzymatycznie ureazę Helicobacter pylori wykazano, że przeciwciała IgY nie mają właściwości neutralizujących aktywność enzymatyczną tej ureazy. Wynik ten nie jest wynikiem zaskakującym, ponieważ większość przeciwciał poliklonalnych skierowanych przeciwko białku UreB nie ma właściwości neutralizujących aktywność ureazy. Takie przeciwciała (nie neutralizujące) mogą jednak mieć właściwości profilaktyczne lub terapeutyczne (Blanchard et al., Inf. Immun. 63,1995, 1394). P r z y k ł a d II Konstrukcja plazmidu oraz immunizacja drobiu W celu skonstruowania plazmidu mającego służyć do DNA-immunizacji kaczki wybrano gen hspb, kodujący białko HspB Helicobacter pylori, będące sinym antygenem tej bakterii. Jako materiały wyjściowe użyto: plazmid pci (wektor dostępny z firmy Promega) oraz plazmid par80 niosący gen hspb H. pylori o sekwencji DNA przedstawionej wzorem 4. Na matrycy plazmidu par80 przeprowadzono reakcję amplifikacji (PCR), stosując następujące oligonukleotydy jako startery dla polimerazy DNA: HSPB5 (5'- GCGAATTCCACCATGGCAAAAGAAATCAAATTTTCAGATAGC-3') oraz HSPB6 (5'-GCGCGTCGACTTACATCATGCCGCCCATGC-3'). Produkt reakcji amplifikacji sklonowano do wektora pci, uzyskując plazmid par97, zawierający gen kodujący białko HspB H. pylori pod kontrolą promotora CMV (ang. cytomegalovirus immediateearly enhancer/promoter region) obecnego w plazmidzie pci oraz sekwencje zapewniające wydajną translację genu ureb w komórkach drobiu, które wprowadzono przed kodonem inicjacji translacji (ATG) genu hspb. Sekwencje te są obecne w starterze HSPB5. Prawidłowość klonowania została potwierdzona poprzez zsekwencjonowanie plazmidu i trawienia restrykcyjne. Plazmidowe DNA zostało namnożone oraz oczyszczone na kolumnach (firmy Qiagen) oraz użyte do immunizacji drobiu. Konstruktem (preparatem DNA) szczepiono domięśniowo kaczkę hodowlaną jednorazowo stosując 0,25-0,5 mg DNA jak w przykładzie I.

6 PL 201 982 B1

PL 201 982 B1 7

8 PL 201 982 B1 Zastrzeżenia patentowe 1. Przeciwciała poliklonalne przeciwko Helicobacter pylori są wyizolowane z żółtka jaj drobiu immunizowanego preparatami DNA zawierającymi fragmenty genomowego DNA o wysokiej specyficzności antygenowej oraz charakteryzują się ptasimi strukturalnymi cechami filogenetycznymi, zwłaszcza opornością na barierę gastryczną oraz zwiększoną masą cząsteczkową. 2. Przeciwciała według zastrz. 1, znamienne tym, że maja masę od 170000-174000 daltonów. 3. Przeciwciała według zastrz. 1, znamienne tym, że skierowane są przeciwko białkom zawierającym w swojej strukturze epitopy białka UreB Helicobacter pylori o sekwencji aminokwasowej przedstawionej wzorem 1.

PL 201 982 B1 9 4. Przeciwciała według zastrz. 1, znamienne tym, że skierowane są przeciwko białkom zawierającym w swojej strukturze epitopy białka HspB Helicobacter pylori o strukturze aminokwasowej przedstawionej wzorem 2. 5. Sposób wytwarzania ptasich monospecyficznych przeciwciał skierowanych przeciwko antygenom Helicobacter pylori o wysokiej specyficzności antygenowej i opornych na barierę gastryczną, z wykorzystaniem DNA immunizacji ptaków, znamienny tym, że immunizuje się drób, korzystnie kaczkę lub kurę hodowlaną, wyizolowanym z bakterii Helicobacter pylori fragmentem genomowego DNA kodującym antygen Helicobacter pylori, o odpowiedniej strukturze białkowej, a po potwierdzeniu wystąpienia specyficznej odpowiedzi immunologicznej na dany antygen w postaci obecności odpowiednich przeciwciał IgG w serum immunizowanego ptaka, wyizolowuje się z żółtka jaj danego osobnika przeciwciała IgY w czystej formie. 6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że jako fragment genomowego DNA Helicobacter pylori stosuje się fragment DNA kodujący białko UreB, o sekwencji nukleotydowej przedstawionej wzorem 3. 7. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że jako fragment genomowego DNA Helicobacter pylori stosuje się fragment DNA kodujący białko HspB, o sekwencji nukleotydowej przedstawionej wzorem 4. Rysunek

10 PL 201 982 B1 Departament Wydawnictw UP RP Cena 2,00 zł.