ANALIZA MOCZU FIZJOLOGICZNEGO I PATOLOGICZNEGO I. WYKRYWANIE NAJWAŻNIEJSZYCH SKŁADNIKÓW NIEORGANICZNYCH I ORGANICZNYCH MOCZU PRAWIDŁOWEGO.



Podobne dokumenty
ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

data ĆWICZENIE 12 BIOCHEMIA MOCZU Doświadczenie 1

Identyfikacja wybranych kationów i anionów

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

Ćwiczenie 50: Określanie tożsamości jonów (Farmakopea VII-IX ( )).

Protokół: Reakcje charakterystyczne cukrowców

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

BADANIE WŁAŚCIWOŚCI FIZYKOCHEMICZNYCH AMINOKWASÓW

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

Ćwiczenie 2. Analiza jakościowa związków organicznych zawierających azot, siarkę oraz fluorowcopochodne.

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

REAKCJE W CHEMII ORGANICZNEJ

Instrukcja do ćwiczenia WŁAŚCIWOŚCI WYBRANYCH ANIONÓW.

ĆWICZENIA LABORATORYJNE WYKRYWANIE WYBRANYCH ANIONÓW I KATIONÓW.

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Piotr Chojnacki 1. Cel: Celem ćwiczenia jest wykrycie jonu Cl -- za pomocą reakcji charakterystycznych.

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

ĆWICZENIE 1: BUFORY 1. Zapoznanie z Regulaminem BHP 2. Oznaczanie ph 2.1. metoda z zastosowaniem papierków wskaźnikowych

ĆWICZENIE 4. Roztwory i ich właściwości

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

STĘŻENIE JONÓW WODOROWYCH. DYSOCJACJA JONOWA. REAKTYWNOŚĆ METALI

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

Analiza jakościowa wybranych aminokwasów

Ćwiczenie 1. Reakcje charakterystyczne miedzi(ii)

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

Reakcje charakterystyczne aminokwasów

ĆWICZENIE III. Reakcje charakterystyczne na węglowodory (alifatyczne, aromatyczne), alkohole, aldehydy i ketony

Zad: 5 Oblicz stężenie niezdysocjowanego kwasu octowego w wodnym roztworze o stężeniu 0,1 mol/dm 3, jeśli ph tego roztworu wynosi 3.

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

RÓWNOWAGI W ROZTWORACH ELEKTROLITÓW.

Reakcje utleniania i redukcji Reakcje metali z wodorotlenkiem sodu (6 mol/dm 3 )

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

XLVII Olimpiada Chemiczna

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

substancje rozpuszczalne bądź nierozpuszczalne w wodzie. - Substancje ROZPUSZCZALNE W WODZIE mogą być solami sodowymi lub amonowymi

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 6. Manganometryczne oznaczenia Mn 2+ i H 2 O 2

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

Badanie aktywności enzymów z klasy oksydoreduktaz. Oznaczenie witaminy C

Zadanie laboratoryjne

OZNACZANIE UTLENIALNOŚCI WÓD NATURALNYCH

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

Inżynieria Środowiska S1. Chemia zajęcia laboratoryjne. Badanie fizykochemiczne wody

Ćwiczenia laboratoryjne semestr pierwszy 30 godzin. Kierunek: Genetyka i biologia eksperymentalna

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

Reakcje charakterystyczne aminokwasów

SPRAWOZDANIE do dwiczenia nr 7 Analiza jakościowa anionów I-VI grupy analitycznej oraz mieszaniny anionów I-VI grupy analitycznej.

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

Krew należy poddać hemolizie, która zachodzi pod wpływem izotonicznego odczynnika Drabkina.

Imię i nazwisko studenta:...

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

ALKACYMETRIA. Ilościowe oznaczanie HCl metodą miareczkowania alkalimetrycznego

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

KWASY KARBOKSYLOWE I ICH POCHODNE. R-COOH lub R C gdzie R = H, CH 3 -, C 6 H 5 -, itp.

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Spis treści. Wstęp... 9

Ćwiczenie 3. Otrzymywanie i badanie właściwości chemicznych alkanów, alkenów, alkinów i arenów.

Zmiana barwy wskaźników w roztworach kwaśnych, obojętnych i zasadowych.

Analiza anionów nieorganicznych (Cl, Br, I, F, S 2 O 3, PO 4,CO 3

Kuratorium Oświaty w Lublinie

ĆWICZENIE 3. I. Analiza miareczkowa mocnych i słabych elektrolitów

REAKCJE UTLENIAJĄCO-REDUKCYJNE

a) proces denaturacji białka następuje w probówce: b) proces zachodzący w probówce nr 1 nazywa się:

WYKRYWANIE OŁOWIU W WINIE

Zadania laboratoryjne

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

OBLICZANIE WYNIKÓW ANALIZ I

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Farmacja rok I Zajęcia fakultatywne: Identyfikacja i określanie zwartości zanieczyszczeń nieorganicznych w preparatach farmaceutycznych

Obliczanie stężeń roztworów

Mechanizm działania buforów *

TYPY REAKCJI CHEMICZNYCH

TEST PRZYROSTU KOMPETENCJI Z CHEMII DLA KLAS II

OCHRONA ŚRODOWISKA W ENERGETYCE NEUTRALIZACJA ŚCIEKÓW

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona

Ćwiczenie 1: Elementy analizy jakościowej

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

6. ph i ELEKTROLITY. 6. ph i elektrolity

Równowagi w roztworach elektrolitów

Pierwiastki bloku d. Zadanie 1.

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Ćwiczenia laboratoryjne 2

Ćwiczenie 1. Reakcje charakterystyczne kadmu(ii)

Ćwiczenie 1. Badanie wypierania wodoru z wody za pomocą metali

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

HYDROLIZA SOLI. Przykładem jest octan sodu, dla którego reakcja hydrolizy przebiega następująco:

RÓWNOWAGA I SZYBKOŚĆ REAKCJI CHEMICZNEJ

10. ALKACYMETRIA. 10. Alkacymetria

WYCHOWANIE FIZYCZNE - STUDIA ZAOCZNE 2010/2011

WYKRYWANIE WIĄZAŃ WIELOKROTNYCH WYKRYWANIE WIĄZAŃ WIELOKROTNYCH

BADANIE WŁAŚCIWOŚCI FIZYKOCHEMICZNYCH AMINOKWASÓW

ALDEHYDY, KETONY. I. Wprowadzenie teoretyczne

OZNACZANIE WŁAŚCIWOŚCI BUFOROWYCH WÓD

TWARDOŚĆ WODY. Ca(HCO 3 ) HCl = CaCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2. Mg(HCO 3 ) 2 + 2HCl = MgCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2

Transkrypt:

ANALIZA MOCZU FIZJOLOGICZNEGO I PATOLOGICZNEGO Wymagane zagadnienia teoretyczne 1. Równowaga kwasowo-zasadowa organizmu. 2. Funkcje nerek. 3. Mechanizm wytwarzania moczu. 4. Skład moczu fizjologicznego. 5. Substancje progowe i bezprogowe. 6. Rola nerek w utrzymaniu równowagi wodno-elektrolitowej organizmu. 7. Rola nerek w utrzymaniu równowagi kwasowo-zasadowej organizmu. 8. Współczynnik oczyszczania (klirens). 9. Patologiczne składniki moczu. I. WYKRYWANIE NAJWAŻNIEJSZYCH SKŁADNIKÓW NIEORGANICZNYCH I ORGANICZNYCH MOCZU PRAWIDŁOWEGO. 1. Wykrywanie jonu wapniowego Do 1 ml moczu dodać 3 4 krople CH 3 COOH i ok. 0,5 ml szczawianu amonu, wymieszać. Pojawia się biały osad szczawianu wapnia. 2. Wykrywanie jonu amonowego Około 1 ml moczu zalkalizować dodając kilka kropli 30 % NaOH (wobec papierka wskaźnikowego). Probówkę ogrzewać łagodnie w łaźni wodnej, umieszczając u jej wylotu papierek wskaźnikowy zwilżony wodą. Zmiana barwy papierka wskaźnikowego zachodzi na skutek ulatniającego się amoniaku. 3. Wykrywanie jonu chlorkowego 1 ml moczu zakwasić kilkoma kroplami 2 N HNO 3 i dodać kilka kropli AgNO 3. Powstaje zmętnienie lub biały osad chlorku srebra. 4. Wykrywanie jonów fosforanowych Do 1 ml moczu dodać 1 ml stężonego HNO 3 i 2 ml molibdenianu amonu. Próbę zagotować we wrzącej łaźni wodnej. Powstaje żółty osad fosforomolibdenianu amonu. 5. Wykrywanie mocznika Do 1 ml moczu dodać 1 ml podbrominu sodu i 1 ml 2 N NaOH. Na skutek rozkładu mocznika wydzielają się pęcherzyki azotu. 6. Wykrywanie kwasu moczowego (próba Folina Denisa) Do 1 ml moczu dodać 1 ml 2 N NaOH i 1 ml kwasu fosforowolframowego (odczynnik Folina-Denisa). Pojawia się niebieskie zabarwienie na skutek redukcji kwasu fosforowolframowego do tlenków wolframu. Podczas reakcji obecny w moczu kwas moczowy utlenia się do allantoiny. 7. Wykrywanie kreatyniny a) próba Jaffego Do 1 ml moczu dodać 1 ml nasyconego kwasu pikrynowego i 0,5 ml 2 N NaOH. Pojawia się czerwone zabarwienie. Kreatynina ma właściwości redukujące. Pod jej wpływem kwas pikrynowy redukuje się do kwasu pikraminowego, który w środowisku alkalicznym ma zabarwienie czerwone. b) próba Weyla Do 1 ml moczu dodać 1 kroplę nitroprusydku sodu, a następnie kroplami dodawać 2 N NaOH do wystąpienia barwy czerwonej. Po dodaniu stężonego kwasu octowego próba odbarwia się.

8. Wykrywanie urobilinogenu ( próba Ehrlicha ) (Uwaga! Próbę wykonywać tylko na świeżo oddanym moczu) Do 2 ml moczu dodać 0,5 ml odczynnika Ehrlicha (2% p-dwumetyloaminobenzaldehyd) Próbę ogrzewać w łaźni wodnej do pojawienia się czerwonego zabarwienia. Pojawienie się barwy czerwonej po ogrzaniu świadczy o prawidłowej zawartości urobilinogenu, natomiast przy jego zmniejszonej zawartości próba jest ujemna. Pojawienie się barwy w temperaturze pokojowej świadczy o zwiększonej zawartości urobilinogenu w moczu. Ponieważ pod wpływem powietrza urobilinogen utlenia się do urobiliny, mocz użyty do badania powinien być świeży. II. WYKRYWANIE NIEKTÓRYCH SKŁADNIKÓW PATOLOGICZNYCH MOCZU 1) Wykazanie obecności białka: a) próba z kwasem sulfosalicylowym Do 1 ml moczu dodać 2 3 krople 10 % kwasu sulfosalicylowego. Powstaje biały osad zdenaturowanego białka. Czułość próby jest bardzo duża a kwas sulfosalicylowy jest rutynowo stosowanym odczynnikiem strącającym białko b) próba Hellera ze stężonym kwasem azotowym Ok. 1 ml moczu podwarstwić dodając 1 ml stężonego HNO 3, nie mieszać. Na granicy płynów powstaje biały pierścień zdenaturowanego białka. c) próba koagulacyjna Do 5 ml klarownego moczu dodać 0,5 ml buforu octanowego o ph 4,7. Próbę ogrzewać do wrzenia w łaźni wodnej. Pojawia się biały osad zdenaturowanego białka Białko w moczu wykrywamy zwykle metodami strąceniowymi np. koagulacji cieplnej lub z kwasami (sulfosalicylowym, azotowym czy trójchlorooctowym-tca). Natomiast jego ilościowe oznaczanie można przeprowadzić metodą kolorymetryczną. 2) Wykrywanie cukru (glukozy): Próba Nylandera Do 1 ml moczu dodać 0,5 ml odczynnika Nylandera (zasadowy azotan bizmutu). Próbę ogrzewać ok. 5 minut we wrzącej łaźni wodnej. W obecności cukru powstaje czarny osad metalicznego bizmutu. Do wykazania obecności glukozy w moczu używamy metod redukcyjnych np. próba Nylandera, Fehlinga, Benedicta. Nie są to jednak odczyny swoiste dla glukozy bowiem dają je także inne cukry redukujące które mogą występować w moczu (fruktoza, galaktoza, pentozy, laktoza). Słabą redukcję dają także niektóre składniki moczu jak kwas moczowy, kreatynina, kwas glukuronowy, kwas askorbinowy). Ilościowe oznaczenie glukozy można wykonać metodą polarymetryczną, redukcyjną czy enzymatyczną. 3) Wykrywanie ciał ketonowych: Próba Legala Do 1 ml moczu dodać 1 2 kropli nitroprusydku sodu a następnie 0,5 ml 2 N NaOH. Powstaje czerwone zabarwienie. Po dodaniu 0,5ml stężonego CH 3 COOH barwa pogłębia się do wiśniowo-czerwonej. Próbą Legala wykrywamy aceton i acetooctan. Związki te z nitroprusydkiem sodu dają w środowisku alkalicznym czerwone zabarwienie, które pogłębia się jeszcze po dodaniu kwasu octowego. Posługując się reakcją z nitroprusydkiem sodu można wykazać także obecność kreatyniny stałego składnika moczu. Jednak w tym przypadku, po zakwaszeniu kwasem octowym barwa związana z obecnością kreatyniny znika. 4) Wykrywanie bilirubiny: a) próba Gmelina 2 ml moczu podwarstwić dodając 1 ml stężonego HNO 3. Na granicy płynów powstają kolorowe pierścienie pochodzące od powstających produktów utlenienia bilirubiny.

b) próba Rosina 2 ml moczu delikatnie nawarstwić dodając ok. 1 ml 0,05 % roztworu J 2. W miejscu zetknięcia się obu płynów w wyniku utlenienia się bilirubiny powstaje szarozielone zabarwienie. Bilirubina bardzo łatwo utlenia się do kilku barwnych pochodnych z których najbardziej charakterystyczna jest zielono zabarwiona biliwerdyna. Oprócz oznaczania bilirubiny znaczenie diagnostyczne ma także oznaczanie urobilinogenu. W żółtaczkach mechanicznych w moczu obecna jest bilirubina ale brak jest urobilinogenu. Natomiast w żółtaczkach hemolitycznych stwierdza się w moczu wzrost urobilinogenu bez wzrostu bilirubiny. 5) Wykrywanie kwasów żółciowych: Próba Haya Na powierzchnię badanego moczu nasypać niewielką ilość kwiatu siarczanego (sublimowanej siarki). Siarka opada na dno probówki. W obecności kwasów żółciowych napięcie powierzchniowe moczu jest znacznie obniżone zatem siarka łatwo opada, natomiast w moczu nie zawierającym kwasów żółciowych kwiat siarczany utrzymuje się na powierzchni. III. OZNACZANIE KWAŚNOŚCI MIARECZKOWEJ MOCZU Dobowe wydalanie jonów wodorowych z moczem zależy od ilości wytwarzanych w organizmie kwasów. Jony wodorowe wydalane są po związaniu ich z obecnymi w moczu zasadami (amoniakiem i dwuzasadowymi fosforanami) w postaci jonów amonowych i fosforanów jednozasadowych. Suma wydalanych jonów NH + - 4 i H 2 PO 4 odzwierciedla ilość nielotnych kwasów wytworzonych w organizmie. Zasada oznaczenia: Kwaśność miareczkowa jest to ilość jonów wodorowych wydalanych z moczem w postaci H 2 PO - 4 lub innych słabych kwasów. Oznacza się ją przez miareczkowanie dobowej ilości moczu za pomocą 0,01 M NaOH do ph 7,4. Wartość prawidłowa kwaśności miareczkowej wynosi 10-30 mmol/24 h Wykonanie: 1. Przygotować próbę kontrolną (wzorzec). W tym celu do kolbki stożkowej odmierzyć 2,5 ml - 0,1 M buforu fosforanowego o ph 7,4 oraz 10 ml wody destylowanej. Dodać 0,5 ml - 0,01% roztworu czerwieni fenolowej. 2. Przygotować próbę badaną. W tym celu do drugiej kolbki odmierzyć 2,5 ml moczu i 10 ml wody destylowanej oraz 0,5 ml - 0,01% czerwieni fenolowej. Roztwór zawierający mocz (próba badana) miareczkować - 0,01 M NaOH do pojawienia się zabarwienia identycznego z wzorcem (próba kontrolna). Obliczyć kwaśność miareczkową badanej próbki moczu wg. wzoru. Uwaga! Podczas miareczkowania 0,01M NaOH odczynnik dodawać powoli, ciągle mieszając gdyż zmiana barwy następuje bardzo szybko. Obliczenia: kwaśność miareczkowa [mmol/24 h] = V NaOH C NaOH V DM V mocz V NaOH objętość 0,01 M NaOH zużytego podczas miareczkowania C NaOH stężenie NaOH (0,01 mol/l) V DM objętość dobowej zbiórki moczu (1500 ml) V mocz objętość próbki moczu użytej do miareczkowania (2,5 ml)

BIOCHEMIA Imię i Nazwisko Grupa: Data: I. Wykrywanie podstawowych składników chemicznych moczu prawidłowego:................ Wnioski: II. Wykrywanie patologicznych składników w moczu (zadanie) :..... Wnioski:

III. Oznaczanie kwaśności miareczkowej moczu Obliczenie i interpretacja wyniku:...... Wniosek końcowy:...... Umiejętności: zaliczono nie zaliczono Kompetencje: ocena pozytywna ocena negatywna.. Data i podpis prowadzącego