Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona

Podobne dokumenty
ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

data ĆWICZENIE 7 DYSTRYBUCJA TKANKOWA AMIDOHYDROLAZ

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny Zajęcia 3-godzinne część A, zajęcia 4-godzinne część A i B

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

Oznaczanie aktywności - i β- amylazy słodu metodą kolorymetryczną

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

data ĆWICZENIE 12 BIOCHEMIA MOCZU Doświadczenie 1

Ćwiczenie laboratoryjne nr 4 dla e-rolnictwa (20 i 22 - skrypt).

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

ĆWICZENIE 3. I. Analiza miareczkowa mocnych i słabych elektrolitów

OZNACZANIE WŁAŚCIWOŚCI BUFOROWYCH WÓD

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Badanie szybkości hydrolizy lipidów mleka i oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Badanie aktywności enzymów z klasy oksydoreduktaz. Oznaczenie witaminy C

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

Krew należy poddać hemolizie, która zachodzi pod wpływem izotonicznego odczynnika Drabkina.

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

ĆWICZENIE 1: BUFORY 1. Zapoznanie z Regulaminem BHP 2. Oznaczanie ph 2.1. metoda z zastosowaniem papierków wskaźnikowych

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

ENZYMOLOGIA. Ćwiczenie 4. α-amylaza (cz. I) Oznaczanie aktywności enzymu metodą kolorymetryczną

OZNACZANIE STĘŻENIA GLUKOZY WE KRWI METODĄ ENZYMATYCZNĄ-OXY

3. Badanie kinetyki enzymów

Właściwości kinetyczne fosfatazy kwaśnej z ziemniaka

ĆWICZENIE 5 MECHANIZMY PROMUJĄCE WZROST ROŚLIN

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

Ćwiczenie 7. Wyznaczanie stałej szybkości oraz parametrów termodynamicznych reakcji hydrolizy aspiryny.

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

ANALIZA MIARECZKOWA. ALKACYMERIA

Analiza miareczkowa. Alkalimetryczne oznaczenie kwasu siarkowego (VI) H 2 SO 4 mianowanym roztworem wodorotlenku sodu NaOH

PRZYKŁADOWE ROZWIĄZANIA ZADAŃ

Obliczanie stężeń roztworów

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

d[a] = dt gdzie: [A] - stężenie aspiryny [OH - ] - stężenie jonów hydroksylowych - ] K[A][OH

Ciągły proces otrzymywania bikarbonatu metodą Solvay a

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Zmiana barwy wskaźników w roztworach kwaśnych, obojętnych i zasadowych.

TWARDOŚĆ WODY. Ca(HCO 3 ) HCl = CaCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2. Mg(HCO 3 ) 2 + 2HCl = MgCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2

Odczyn roztworu Skala ph. Piotr Zawadzki i Aleksandra Jarocka

STĘŻENIE JONÓW WODOROWYCH. DYSOCJACJA JONOWA. REAKTYWNOŚĆ METALI

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

ENZYMOLOGIA. Ćwiczenie 3 Lipaza. Oznaczanie aktywności enzymu metodą miareczkową. Centrum Bioimmobilizacji i Innowacyjnych Materiałów Opakowaniowych

Pracownia Polimery i Biomateriały

SEMINARIUM Z ZADAŃ ALKACYMETRIA

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

Dysocjacja elektrolityczna, przewodność elektryczna roztworów

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Spis treści. Wstęp. Twardość wody

Zastosowanie metody Lowry ego do oznaczenia białka w cukrze białym

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

Laboratorium 4. Określenie aktywności katalitycznej enzymu. Wprowadzenie do metod analitycznych. 1. CZĘŚĆ TEORETYCZNA

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

OCENA CZYSTOŚCI WODY NA PODSTAWIE POMIARÓW PRZEWODNICTWA. OZNACZANIE STĘŻENIA WODOROTLENKU SODU METODĄ MIARECZKOWANIA KONDUKTOMETRYCZNEGO

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

CHEMIA BUDOWLANA ĆWICZENIE NR 2

Spis treści. Wstęp... 9

SPRAWOZDANIE 2. Data:... Kierunek studiów i nr grupy...

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Oznaczenie aktywności aminotransferazy alaninowej.

Sprawozdzanie z ćwiczenia nr 3 - Kinetyka enzymatyczna

PODSTAWY STECHIOMETRII

SurTec 716 C. alkaliczna bezcyjankowa kąpiel cynk/nikiel

OBLICZANIE WYNIKÓW ANALIZ I

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

OBLICZENIA BIOCHEMICZNE

Ćwiczenie 1. Oznaczanie aktywności trypsyny metodą Ansona

Protokół: Reakcje charakterystyczne cukrowców

Równowagi w roztworach elektrolitów

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

Ważniejsze wskaźniki ph. 1,2 2,8 1,7 czerwone pomarańczowe żółte. 8,0 9,6 8,9 żółte zielone niebieskie

OCHRONA ŚRODOWISKA W ENERGETYCE NEUTRALIZACJA ŚCIEKÓW

Próba kontrolna (PK) 1000 l 1000 l

ĆWICZENIE NR 4 PEHAMETRIA. Poznanie metod pomiaru odczynu roztworów wodnych kwasów, zasad i soli.

UWAGA NA WRZĄCY OLEJ!!!!

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

46 Olimpiada Biologiczna

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Ilościowe oznaczenie glikogenu oraz badanie niektórych jego właściwości

Zad: 5 Oblicz stężenie niezdysocjowanego kwasu octowego w wodnym roztworze o stężeniu 0,1 mol/dm 3, jeśli ph tego roztworu wynosi 3.

g % ,3%

Transkrypt:

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona Wymagane zagadnienia teoretyczne 1. Enzymy proteolityczne, klasyfikacja, rola biologiczna. 2. Enzymy proteolityczne krwi. 3. Wewnątrzkomórkowa degradacja białek poprzez o system ubikwityna-proteasom o proteazy lizosomalne (katepsyny) o kaspazy 4. Degradacja białek macierzy pozakomórkowej przy udziale metaloproteinaz. 5. Trawienie białek w przewodzie pokarmowym. 6. Sok żołądkowy. Synteza i rola kwasu solnego Cel ćwiczenia: Zapoznanie się z metodą oznaczania aktywności endopeptydaz na przykładzie trypsyny. Zasada metody Ansona Szybkość reakcji katalizowanej przez trypsynę zależy od rodzaju zastosowanego substratu i metody jej oznaczania. Na ćwiczeniach aktywność trypsyny będzie oznaczana metodą Ansona, która polega na pomiarze ilości tyrozyny zawartej w peptydach uwolnionych przez enzym z substratu (kazeina) w trakcie hydrolizy. Peptydy te są rozpuszczalne i nie wytrącają się w 3 procentowym kwasie trichlorooctowym. Wytrącone kwasem białka usuwa się z mieszaniny przez wirowanie lub sączenie. Enzymatyczną hydrolizę białka (kazeiny) prowadzi się w ph 8.6 i w temperaturze 37 C. Oznaczanie zawartości tyrozyny wykonuje się fotometrycznie przy użyciu odczynnika Folina. Końcowa barwa, której natężenie jest wprost proporcjonalne do ilości tyrozyny w próbie, jest wynikiem redukcji odczynnika fosforomolibdenofosforowolframowego (odczynnik Folina) w środowisku zasadowym do błękitu fosforomolibdenowego, głównie przez zawartą w peptydach tyrozynę. Stężenie barwnego produktu w próbie oznacza się mierząc absorbancję o długości fali 670 nm. Miarą aktywności otrzymanego na ćwiczeniach preparatu trypsyny będzie liczba µmoli tyrozyny zawarta w uwolnionych peptydach. Odczynniki: 0,1 molowy bufor Tris-HCl o ph 8,6 1% roztwór kazeiny o ph 8.6 odczynnik Folina (Ciocalteu) 0,5-molowy roztwór NaOH 7,5% roztwór TCA (kwas trichlorooctowy) - przechowywać w lodówce Wykonanie: 1. Otrzymany roztwór trypsyny dopełnić do 10 ml buforem Tris-HCl o ph 8,6 i dobrze wymieszać. 2. Przygotować 2 probówki (próba badana i kontrolna) 3. Do obu probówek (badanej i kontrolnej) odmierzyć po 2,0 ml 1% roztworu kazeiny i obie probówki umieścić w łaźni wodnej w temperaturze 37 C 4. Po 5 minutach do próby badanej dodać 1,0 ml roztworu trypsyny (z punktu 1), dokładnie wymieszać i inkubować obie próby przez 15 minut w temperaturze 37 C! 5. Po tym czasie do obu prób dodać po 2.0 ml 7,5% TCA, dokładnie wymieszać i wyjąć probówki z łaźni wodnej 6. Do próby kontrolnej dodać 1,0 ml roztworu trypsyny (z punktu 1), dokładnie wymieszać 7. Obie próby pozostawić przez 30 minut w temperaturze pokojowej w celu całkowitego wytrącenia roztworu białka, a następnie próby przesączyć do czystych probówek przez sączki bibułowe 8. W celu oznaczenia zawartości tyrozyny w produktach proteolizy, odmierzyć po 1.0 ml klarownego przesączu z próby badanej i kontrolnej do suchych probówek, do obu dodać po 2.0 ml 0,5-molowego NaOH i po 0,6 ml odczynnika Folina, szybko dokładnie wymieszać i po 10 minutach odczytać absorbancję próby badanej wobec próby kontrolnej przy długości fali 670 nm 9. Z krzywej wzorcowej odczytać ilość µmoli tyrozyny zawartej w peptydach uwolnionych z kazeiny przez 1 ml trypsyny (pobrany do inkubacji) w ciągu 15 minut inkubacji z kazeiną

10. Aktywność enzymu wyrazić w µmolach tyrozyny zawartej w peptydach uwolnionych w warunkach metody w ciągu 1 minuty przez 1 ml trypsyny a. uwzględniając rozcieńczenie trypsyny w preparacie enzymatycznym (roztwór trypsyny), który wyjściowo otrzymano od prowadzącego ćwiczenia (np. 0,25 ml czy 0,75 ml) a następnie uzupełniono buforem Tris- HCl do 10 ml (punkt 1- wykonanie) b. pamiętając, że 1ml roztworu trypsyny do badania aktywności pobrano z 10 ml roztworu wyjściowego (punkt 4- wykonanie ) c. pamiętając, że do reakcji barwnej pobrano 1 ml przesączu z 5 ml przesączu d. uwzględniając czas trwania enzymatycznej hydrolizy substratu Ilość µmoli tyrozyny odczytana z krzywej wzorcowej znajduje się w 1,0 ml przesączu pobranego do reakcji barwnej (np. 0,15 µmola). Ponieważ 1.0 ml przesączu pobrano z 5.0 ml przesączu, stąd w całej objętości przesączu znajduje się 0,75 µmoli tyrozyny. Jest to ilość tyrozyny zawarta w peptydach uwolnionych z kazeiny przez 1 ml rozcieńczonego preparatu enzymatycznego pobranego do reakcji. Ponieważ 1 ml preparatu enzymatycznego (trypsyny) pobrano z 10 ml, stąd aktywność preparatu w 10 ml roztworu równa jest 7,5 µmolom tyrozyny. Znając ilość otrzymanego od prowadzącego ćwiczenia wyjściowego roztworu trypsyny przed uzupełnieniem do objętości 10 ml i uwzględniając czas reakcji wyliczyć wynik końcowy. Aktywność enzymu można również wyrazić w µmolach tyrozyny zawartej w peptydach uwolnionych w warunkach metody w ciągu 1 minuty przez 1 mg trypsyny, wiedząc dodatkowo, że znana ilość otrzymanego od prowadzącego zajęcia wyjściowego roztworu trypsyny przed uzupełnieniem do objętości 10 ml pobrana została z podstawowego roztworu przygotowanego przez rozpuszczenie 7 mg enzymu w 40 ml buforu Tris-HCl.

BIOCHEMIA Imię i Nazwisko GS... Data... Zasada metody: Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona............... Obliczenie i interpretacja wyniku:...... Wniosek końcowy:...... Umiejętności: Kompetencje: zaliczono nie zaliczono ocena pozytywna ocena negatywna Data i podpis prowadzącego

Badanie soku żołądkowego Kwasota całkowita soku żołądkowego jest sumą zawartości wolnego i związanego kwasu solnego oraz innych kwaśnych związków, w tym białek, fosforanów i organicznych kwasów. Normalny sok żołądkowy na czczo nie zawiera wolnego kwasu solnego, a kwasota całkowita może dochodzić do 20 ml 0,1 N NaOH w 100 ml soku żołądkowego. Po podaniu histaminy lub innych bodźców stymulujących żołądek do wydzielania (śniadanie próbne) zawartość wolnego kwasu solnego po godzinie w normalnym soku żołądkowym wzrasta do 20-40 ml 0,1N NaOH na 100 ml soku, a kwasota całkowita 40-60 ml. Jeżeli te wartości są wyższe, wskazuje to na nadkwaśność, jeżeli niższe to na niedokwaśność soku żołądkowego. Nadkwaśność występuje przy braku czynników regulujących kwasowość, wrzodzie dwunastnicy, zwężeniu odźwiernika i nieżycie kwaśnym żołądka. Bywa także przyczyną wrzodów żołądka. Niedokwaśność występuje w nieżycie niedokwaśnym żołądka. Przy braku kwasu solnego w soku żołądkowym i zaleganiu pokarmów zachodzą procesy fermentacyjne powodowane obecnością bakterii, co prowadzi do wytwarzania kwasów organicznych takich jak np. mlekowy czy masłowy. Cel ćwiczenia: 1. Oznaczanie ph prawidłowego i patologicznego soku żołądkowego. 2. Ilościowe oznaczanie zawartości wolnego kwasu solnego oraz całkowitej kwasoty w prawidłowym i nadkwaśnym soku żołądkowym. 3. Oznaczanie deficytu kwasu solnego w soku żołądkowym Wykonanie 1) Oznaczanie ph soku żołądkowego Do 3 szklanych probówek chemicznych odpipetować po 1 ml różnych soków żołądkowych: a. pierwsza probówka prawidłowy sok żołądkowy b. druga probówka nadkwaśny sok żołądkowy c. trzecia probówka bezkwaśny (deficytowy) sok żołądkowy Następnie zanurzyć w nich paseczki papierka uniwersalnego. Po 30 sekundach określić przybliżone ph porównując ze skalą. Wyjaśnienie Prawidłowy sok żołądkowy wykazuje na czczo ph między 1,5-2,5. Nadkwaśny sok żołądkowy ma ph poniżej wartości fizjologicznego soku żołądkowego. Niedokwaśny sok żołądkowy ma odczyn ph powyżej prawidłowego. 2) Ilościowe oznaczanie wolnego kwasu solnego oraz kwasoty całkowitej prawidłowego i nadkwaśnego soku żołądkowego Do 2 szklanych kolbek lub zlewek (o objętości 25 ml) odmierzyć po 10 ml różnych soków żołądkowych: a. do pierwszej kolbki odmierzyć prawidłowy sok żołądkowy b. do drugiej kolbki odmierzyć nadkwaśny sok żołądkowy Następnie do każdej kolbki dodać po 2 krople roztworu oranżu metylowego i po 4 krople roztworu fenoloftaleiny, dokładnie wymieszać. Zawartość każdej kolbki miareczkować 0,1N roztworem NaOH do barwy łososiowej, ciągle mieszając. Zapisać ilość ml 0,1N roztworu NaOH zużytego na miareczkowanie badanego soku żołądkowego. Ilość mililitrów 0,1 N roztworu NaOH zużyta na miareczkowanie do barwy łososiowej służy do obliczania zawartości wolnego kwasu solnego w soku żołądkowym. Ilość mililitrów 0,1N roztworu NaOH zużyta do osiągnięcia barwy łososiowej pomnożona przez 10 odpowiada miliekwiwalentom wolnego kwasu solnego w 1 litrze soku żołądkowego (me/l). Następnie miareczkować dalej zawartość każdej kolbki 0,1 N roztworem NaOH do zmiany barwy z łososiowej na różowoczerwoną, ciągle mieszając. Zapisać ilość ml 0,1N roztworu NaOH zużytego na miareczkowanie prób z barwy łososiowej do różowo-czerwonej.

Sumaryczna ilość mililitrów roztworu 0,1 N NaOH zużyta na miareczkowanie od początku do końcowej różowoczerwonej barwy służy do obliczania całkowitej kwasoty soku żołądkowego. Całkowita ilość 0,1N roztworu NaOH zużyta od początku miareczkowania. aż do osiągnięcia barwy różowoczerwonej pomnożona przez 10 odpowiada miliekwiwalentom wszystkich kwasów i substancji kwaśnych w 1 litrze soku żołądkowego (me/l), co odpowiada całkowitej kwasocie soku żołądkowego. Wyjaśnienie Podczas miareczkowania soku żołądkowego 0,1N roztworem NaOH w obecności wskaźnika, który zmienia barwę przy ph 2 (oranż metylowy) ilość ml zużytego roztworu 0,1N NaOH odpowiada ilości wolnego kwasu solnego. Miareczkowanie 0,1N roztworem NaOH w obecności wskaźnika zmieniającego barwę w ph 8,5 (fenoloftaleina) powoduje zobojętnienie wolnego i buforowanego kwasu solnego oraz kwasów organicznych i innych kwaśnych związków, co odpowiada całkowitej kwasocie soku żołądkowego. 3) Ilościowe oznaczanie deficytu kwasu solnego w soku żołądkowym Do szklanej kolbki (o objętości 25 ml) odpipetować 10 ml bezkwaśnego (deficytowego) soku żołądkowego, dodać 2 krople roztworu oranżu metylowego i wymieszać. Miareczkować 0,1N roztworem HCl do barwy łososiowej, ciągle mieszając. Zapisać ilość ml 0,1N roztworu HCl zużytego do miareczkowania, co służy do obliczania deficytu kwasu solnego w soku żołądkowym. Ilość 0,1N roztworu HCl zużyta do osiągnięcia barwy łososiowej pomnożona przez 10 odpowiada miliekwiwalentom deficytu kwasu solnego w litrze soku żołądkowego (me/l). Wyjaśnienie Deficyt kwasu solnego w soku żołądkowym można oznaczyć miareczkując sok 0,1N roztworem HCl do wystąpienia reakcji na wolny kwas solny.

BIOCHEMIA Imię i Nazwisko GS... Data... Badanie soków żołądkowych Cel ćwiczenia: 1. Oznaczanie ph soku żołądkowego Wykonanie : Interpretacja wyniku: 2. Ilościowe oznaczanie... Wykonanie : Interpretacja wyniku: Wniosek końcowy:... Umiejętności: Kompetencje: zaliczono nie zaliczono ocena pozytywna ocena negatywna... Data i podpis prowadzącego