SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie ryboflawiny.

Podobne dokumenty
SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie Al w postaci chelatowego kompleksu glinu z moryną.

ANALIZA INSTRUMENTALNA

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA ( AAS )

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA (AAS) - INTERFERENCJE

( L ) I. Zagadnienia. II. Zadania

Ćwiczenie nr 1 Oznaczanie składu substancji metodą niskorozdzielczej analizy fluorescencyjnej

Instytut Fizyki Doświadczalnej Wydział Matematyki, Fizyki i Informatyki UNIWERSYTET GDAŃSKI

ZASTOSOWANIE MIKROSYSTEMÓW W MEDYCYNIE LABORATORIUM. Ćwiczenie nr 4 MIKROCYTOMETR DO BADANIA KOMÓREK BIOLOGICZNYCH

PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

Oznaczanie chlorowodoru w powietrzu atmosferycznym

OZNACZANIE KWASU FOLIOWEGO NA BŁONKOWEJ ELEKTRODZIE OŁOWIOWEJ METODĄ ADSORPCYJNEJ WOLTAMPEROMETRII STRIPINGOWEJ (AdSV)

SPEKTROFOTOMETRYCZNA ANALIZA

PODSTAWY LABORATORIUM PRZEMYSŁOWEGO. ĆWICZENIE 3a

Opis programu Konwersja MPF Spis treści

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

Instrukcja do ćwiczeń

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

E (2) nazywa się absorbancją.

Laboratorium - Podgląd informacji kart sieciowych bezprzewodowych i przewodowych

Laboratorium - Archiwizacja i odzyskiwanie danych w Windows Vista

IR I 11. IDENTYFIKACJA GRUP FUNKCYJNYCH W WIDMACH IR

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

SpinWorks. Manual dla studentów III roku Chemii, licencjat - Spektrochemia

Jod. Numer CAS:

Metody spektroskopowe:

Potencjometryczna metoda oznaczania chlorków w wodach i ściekach z zastosowaniem elektrody jonoselektywnej

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Instrukcja obsługi licznika promieniowania jonizującego MAZAR 01

INSTRUKCJA OBSŁUGI APARATU DO POMIARU TEMPERATURY TOPNIENIA STUART SMP 30

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

SPIS ILUSTRACJI, BIBLIOGRAFIA

DETEKCJA W MIKRO- I NANOOBJĘTOŚCIACH. Ćwiczenie nr 3 Detektor optyczny do pomiarów fluorescencyjnych

1. Opis okna podstawowego programu TPrezenter.

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Kalibracja czujnika temperatury zestawu COACH Lab II+. Piotr Jacoń. K-5a I PRACOWNIA FIZYCZNA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

K2 XVR-04, K2 XVR-08, K2 XVR-16, K2 XVR-24. Rejestrator Cyfrowy S E R I E: K2 XVR. DVR klient. Instrukcja użytkownika

Aby mieć możliwość przeglądania danych z 12 kanałów rejestrator powinien być ustawiony na 12-kanałowy tryb pracy. Dostępne tryby 12-kanałowe to:

METODYKA POMIARÓW WIDM ABSORPCJI (WA) NA CARY-300 (Varian) i V-550 (JASCO)

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Badanie absorpcji światła molekuł wieloatomowych na przykładzie chlorofilu A i rodaminy 6G. Ćwiczenie 20

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

Wyniki operacji w programie

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Laboratorium - Monitorowanie i zarządzanie zasobami systemu Windows 7

Katedra Chemii Analitycznej Metody elektroanalityczne. Ćwiczenie nr 5 WOLTAMPEROMETRIA CYKLICZNA

Analiza spektralna i pomiary spektrofotometryczne

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok OAM

Analiza środowiskowa, żywności i leków CHC l

Miernik ExStik EC400 Miernik przewodności/tds/zasolenia/ temperatury Nr produktu

Laboratorium - Harmonogramowanie zadania przy użyciu GUI i polecenia AT w systemie Windows 7

Baza wiedzy instrukcja

ZEP-INFO Sp. z o.o. INSTRUKCJA KORZYSTANIA Z PROGRAMU. REN3-analiza

Oznaczanie Mg, Ca i Zn we włosach techniką atomowej spektrometrii absorpcyjnej z atomizacją w płomieniu (FAAS)

Program APEK Użytkownik Instrukcja użytkownika

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

POMIAR ZALEśNOŚCI PRZENIKALNOŚCI ELEKTRYCZNEJ FERROELEKTRYKA OD TEMPERATURY SPRAWDZANIE PRAWA CURIE - WEISSA

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

etrader Pekao Podręcznik użytkownika Strumieniowanie Excel

POLITECHNIKA GDAŃSKA

Omega Plus. Wersja

INSTRUKCJA OBSŁUGI PROGRAM DO ODCZYTU DANYCH Z PIROMETRU IR THERMOMETER

ĆWICZENIE NR 3 POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE

ĆWICZENIE 2 WYZNACZANIE WYDAJNOŚCI KWANTOWYCH ORAZ CZASÓW ZANIKU LUMINESCENCJI ZWIĄZKÓW W ROZTWORZE ORAZ CIELE STAŁYM, CZ. II.

Ćw. 5 Absorpcjometria I

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

PRZEWODNOŚĆ ROZTWORÓW ELEKTROLITÓW

Edytor tekstu OpenOffice Writer Podstawy

Instrukcja obsługi dla studenta

Instrukcja szybkiej obsługi

Szybki start SAMOOCENA W NOR-STA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Rejestrator temperatury i wilgotności AX-DT100. Instrukcja obsługi

Polarymetr służy do pomiaru skręcenia płaszczyzny polaryzacji światła w substancjach

TRUST AMI MOUSE WIRELESS 300

Ćwiczenie nr 2 Zastosowanie fluorescencji rentgenowskiej wzbudzanej źródłami promieniotwórczymi do pomiarów grubości powłok

ĆWICZENIE 11. ANALIZA INSTRUMENTALNA KOLORYMETRIA - OZNACZANIE Cr(VI) METODĄ DIFENYLOKARBAZYDOWĄ. DZIAŁ: Kolorymetria

ĆWICZENIE 3 LUMINOFORY ORGANICZNE I NIEORGANICZNE.

INSTRUKCJA OBSŁUGI PROGRAMU FOTOLASER

Opis obsługi programu KALKULACJA

Szybki start SAMOOCENA W NOR-STA

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

Transkrypt:

SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA Spektrofluorymetryczne oznaczanie ryboflawiny. Dr Dorota Sieńko, Zakład Chemii Analitycznej i Analizy Instrumentalnej, Wydział Chemii UMCS w Lublinie A. Cel ćwiczenia: 1. Zapoznać się z obsługą i sposobem przeprowadzania pomiarów z zastosowaniem spektrofluorometru RF-5001PC firmy Shimadzu. 2. Zarejestrować widmo fluorescencyjne ryboflawiny. 3. Oznaczyć zawartość ryboflawiny w próbce, metodą krzywej kalibracyjnej. Materiały z części B są dostępne w Bibliotece Wydziału Chemii UMCS w Lublinie. C. Opis spektrofluorymetru RF-5001PC firmy Shimadzu. Źródłem promieniowania wzbudzającego jest lampa ksenonowa, o czasie pracy rejestrowanym przez wbudowany rejestrator zużycia lampy. Monochromatory promieniowania wzbudzającego i promieniowania emitowanego w zakresie 200-700nm, z dokładnością do 2nm i szerokością szczeliny ustawialną na: 1.5nm, 3, 5, 10, 15, 20nm. Szybkość zmian długości fali przy rejestracji widma w 6 możliwych pozycjach od bardzo szybkiej (180nm/min) do bardzo wolnej. Próbkę w postaci roztworu wlewa się do kwarcowej kuwety umieszczanej w uchwycie wewnątrz aparatu. Przed pomiarem zamyka się pokrywę aparatu. Selektywność ustawiana jest w pozycjach: wysoka i niska. Wysoka jest 100 krotnie wyższa od niskiej. D. Obsługa spektrofluorymetru RF-5001PC. W celu uruchomienia spektrofluorymetru RF-5001PC włącz listwę zasilającą, sprawdź czy lampa ksenonowa na spektrofluorymetrze jest w pozycji on i następnie włącz on - główny włącznik spektrofluorymetru. UWAGA: Włączenie lampy ksenonowej generuje ładunek statyczny, dlatego włączanie spektrofotometru z lampą ksenonową w pozycji on trzeba wykonać przed włączeniem komputera.

Włącz komputer i czekaj na pojawienie się głównego ekranu z programami. Znajdź czerwoną ikonę z napisem HYPER RF 1.57, najedź na nią kursorem myszki i kliknij dwa razy lewym przyciskiem myszki w celu otworzenia okna programu służącego do obsługi spektrofluorymetru RF-5001PC. Na ekranie pojawi się okno informacyjne: Kliknij OK i pojawi się ekran: 2

Jest to główny ekran programu Hyper RF 1.57 umożliwiający przeprowadzenie pomiarów i opracowanie otrzymanych wyników. Wybierz kursorem myszki komendy: Instrument i RF5000, co zapoczątkuje proces sprawdzania działania przyrządu, pojawi się okno: Kolejno zapalające się zielone światło sygnalizuje testowanie działania elementów spektrofluorymetru. Pojawi się mała ikona w lewym dolnym rogu ekranu symbolizująca instrument i jego status Online:... Kliknięcie dwa razy na tej ikonie lub pojedyncze kliknięcie pierwszej komendy Przywróć na tej ikonie spowoduje pojawienie się okna dialogowego, w które należy wprowadzić wszystkie potrzebne parametry do wykonania pomiarów i zarejestrowania wyników: 3

Wprowadź parametry zakresu badania widma jak na przykładzie powyżej (bez wprowadzania Name: i Text:). Ustaw kursor na przycisku More, kliknij raz, żeby otworzyć następną stronę z parametrami: Ustaw parametry jak przedstawiono na przykładzie powyżej. Kliknij OK. E. Wykonanie oznaczeń. Oznaczanie ryboflawiny (witaminy B 2 ) w próbce. a) Przygotowanie serii roztworów wzorcowych ryboflawiny. Do 6 kolbek miarowych o pojemności 50ml odmierzyć: 0.5ml, 1, 2, 3, 4 i 5ml wzorcowego roztworu ryboflawiny o stężeniu 10mg/l, dopełnić kolbki wodą redestylowaną do kreski i dokładnie wymieszać. Stężenia tak przygotowanych wzorców ryboflawiny wynoszą odpowiednio: 0.1; 0.2; 0.4; 0.6: 0.8 i 1.0mg/l. b) Wykonanie krzywej wzorcowej ryboflawiny. Zmierz natężenie fluorescencji roztworów wzorcowych ryboflawiny względem wody jako rozpuszczalnika. Na podstawie otrzymanych wyników wykreśl krzywą wzorcową dla ryboflawiny odkładając na osi odciętych (X) stężenie w mg/ml, a na osi rzędnych (Y) natężenie fluorescencji. Wprowadź wodę redestylowaną do kuwety. Kliknij Przywróć na ikonie Online... Kliknij na przycisku Select - wybierz nazwę pliku lub wpisz własną nazwę pliku w oknie: Name:- c:\student\... Text: widmo fluorescencyjne wody, etc. 4

Kliknij BLANK, otworzy się okno, w którym po 2s pojawi się widmo fluorescencyjne wody w kuwecie. W oknie przedstawiającym widmo jest również ikona D (w lewym, dolnym rogu) pozwalająca na korektę podpisu pod otrzymanym widmem (korekta okna Text:). Pozostaw widmo wody jako rozpuszczalnika na ekranie w celu zestawienia z widmami roztworów wzorcowych. Wprowadź rozwór wzorcowy ryboflawiny o najniższym stężeniu 0.1mg/l do kuwety. Kliknij Przywróć na ikonie Online... Kliknij na przycisku Select - wybierz nazwę pliku lub wpisz własną nazwę w oknie: Name:- c:\student\... Text: widmo fluorescencyjne B2 std 1, etc. Kliknij START, otworzy się okno, w którym po 2s pojawi się widmo fluorescencyjne roztworu w kuwecie. Po zakończeniu rejestracji widma wybierz komendę Calc i Peak Table, potem pokaże się okno Store table to data set? kliknij Tak. Jeżeli na wykresie nie będzie zarejestrowanych wysokości pików, to należy otworzyć komendę Option, a w niej Graphics i Labels pojawi się okno z: Label peak with zaznacz: X and Intensity. Kliknij OK. Zarejestrowane widmo zostaw na ekranie w celu zestawienia widm wszystkich standardów na jednym wykresie, łącznie z widmem wody. Zarejestruj widma pozostałych wzorców ryboflawiny. W celu nałożenia widm na siebie wybierz komendę Window JoinVisible. Wydrukuj zestawienie widm. Zaznacz na wydrukowanym wykresie (czarnobiałym), która krzywa odpowiada, któremu ze standardów, korzystając z zestawienia krzywych w kolorze, na ekranie komputera. Przedstaw do podpisu prowadzącemu ćwiczenia wydrukowane zestawienie widm roztworów wzorcowych i wody jako roztworu odniesienia. Po sprawdzeniu dotychczasowych wyników przez osobę prowadzącą ćwiczenia zamknij wszystkie widma wyświetlone na ekranie komputera. c) Wykonanie oznaczenia ryboflawiny w próbce. Do otrzymanej próbki w kolbie miarowej o pojemności 50ml dodaj wody redestylowanej do kreski i dokładnie wymieszaj. Zmierz natężenie fluorescencji roztworu próbki zapisując widmo fluorescencyjnie jak to opisano dla wzorców ryboflawiny (punkt b). Wydrukuj zestawienie widm próbek łącznie dla całej grupy studentów, zaznaczając nazwisko studenta przy każdym z widm i przedstaw wydruk do podpisu przez osobę prowadzącą ćwiczenia. 5

F. Zakończenie pracy ze spekrofluorymetrem Shimadzu. Zamknij program HYPER RF 1.57, w tym celu kliknij Przywróć na ikonie Online... W oknie dialogowym parametrów wybierz komendę Scan exit. Zamknij ekran kursor myszki ustaw na krzyżyku i raz kliknij. Wyłącz spektrofotometr off główny przełącznik na obudowie przyrządu. Umyj kuwetę wodą destylowaną, a następnie przepłucz etanolem. G. Opracowanie ćwiczenia powinno zawierać: -zasadę pomiaru (opis ćwiczenia), -najprostszy schemat urządzenia pomiarowego, -wykres krzywej wzorcowej wraz z zestawieniem wartości fluorescencji dla roztworów wzorcowych, -wyniki analiz indywidualnych próbek, -wyniki z ćwiczeń podpisane przez prowadzącego. H. Literatura; 1. Walenty Szczepaniak, Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN, Warszawa, 1997. 2. Andrzej Cygański, Metody spektroskopowe w chemii analitycznej, PWN, Warszawa, 2002. 3. Ryszard Kocjan-redakcja, Chemia analityczna.analiza instrumentalna 2, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa, 2000. 4. D. Kealey, P.J. Haines, Krótkie wykłady. Chemia Analityczna, PWN, Warszawa 2005. 5. P. Moszczyński, R. Pyć, Biochemia witamin, część I, Witaminy grupy B i koenzymy, PWN, Warszawa, Łódź, 1998. 6