PL B1. Sposób wyjaławiania i modyfikacji podłoży hodowlanych stosowanych w hodowli selektantów pleśni Mucor racemosus

Podobne dokumenty
PL B1. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL

PL B1. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL BUP 20/14

PL B1. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL BUP 17/11. RADOSŁAW ROSIK, Łódź, PL WUP 08/12. rzecz. pat. Ewa Kaczur-Kaczyńska

PL B1. Preparat o właściwościach przeciwutleniających oraz sposób otrzymywania tego preparatu. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL

PL B1. ECOFUEL SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Jelenia Góra, PL BUP 09/14

PL B1. UNIWERSYTET PRZYRODNICZY WE WROCŁAWIU, Wrocław, PL BUP 21/10

(86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego: , PCT/EP03/02749 (87) Data i numer publikacji zgłoszenia międzynarodowego:

PL B1. POLWAX SPÓŁKA AKCYJNA, Jasło, PL BUP 21/12. IZABELA ROBAK, Chorzów, PL GRZEGORZ KUBOSZ, Czechowice-Dziedzice, PL

PL B BUP 23/12

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL

Sposób otrzymywania kompozytów tlenkowych CuO SiO 2 z odpadowych roztworów pogalwanicznych siarczanu (VI) miedzi (II) i krzemianu sodu

PL B1. Kwasy α-hydroksymetylofosfonowe pochodne 2-azanorbornanu i sposób ich wytwarzania. POLITECHNIKA WROCŁAWSKA, Wrocław, PL

PL B1. Sposób otrzymywania nieorganicznego spoiwa odlewniczego na bazie szkła wodnego modyfikowanego nanocząstkami

PL B1. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL BUP 05/12

PL B1. Sposób oznaczania stężenia koncentratu syntetycznego w świeżych emulsjach chłodząco-smarujących

PL B1. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL

(21) Numer zgłoszenia: (54) Sposób wytwarzania preparatu barwników czerwonych buraka ćwikłowego

(19) PL (11) (13)B1

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA, Kraków, PL BUP 03/06

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA, Kraków, PL BUP 21/10. MARCIN ŚRODA, Kraków, PL

PL B1. POLITECHNIKA WROCŁAWSKA, Wrocław, PL BUP 25/09. ANDRZEJ KOLONKO, Wrocław, PL ANNA KOLONKO, Wrocław, PL

(54) Sposób przerobu zasolonych wód odpadowych z procesu syntezy tlenku etylenu

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) (13) B1

PL B1. UNIWERSYTET EKONOMICZNY W POZNANIU, Poznań, PL BUP 21/09. DARIA WIECZOREK, Poznań, PL RYSZARD ZIELIŃSKI, Poznań, PL

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11)

PL B1. Sposób nadawania płaskim wyrobom włókienniczym właściwości antybakteryjnych i antygrzybicznych

INSTRUKCJA TECHNOLOGICZNA PROCESU OTRZYMYWANIA DROŻDŻY EKOLOGICZNYCH

PL B1. EKOPROD SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Bytom, PL

PL B1. Symetryczne czwartorzędowe sole imidazoliowe, pochodne achiralnego alkoholu monoterpenowego oraz sposób ich wytwarzania

PL B1. ZACHODNIOPOMORSKI UNIWERSYTET TECHNOLOGICZNY W SZCZECINIE, Szczecin, PL BUP 06/14

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 12/13

PL B1. ZAWADA HENRYK, Siemianowice Śląskie, PL BUP 13/13. HENRYK ZAWADA, Siemianowice Śląskie, PL

RZECZPOSPOLITA POLSKA (12) OPIS PATENTOWY (19)PL (11) (13) B1. (21) Numer zgłoszenia:

PL B1. UNIWERSYTET WARMIŃSKO-MAZURSKI W OLSZTYNIE, Olsztyn, PL BUP 22/13. BARTOSZ LIBECKI, Olsztyn, PL

Sposób otrzymywania dwutlenku tytanu oraz tytanianów litu i baru z czterochlorku tytanu

PL B1. Sposób otrzymywania mieszanki spożywczej z kiełków roślin zawierającej organiczne związki selenu

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 14/12

PL B1. UNIWERSYTET EKONOMICZNY W POZNANIU, Poznań, PL BUP 26/15. RENATA DOBRUCKA, Poznań, PL JOLANTA DŁUGASZEWSKA, Poznań, PL

(86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego: , PCT/AT01/ (87) Data i numer publikacji zgłoszenia międzynarodowego:

PL B1. PRZEDSIĘBIORSTWO ARKOP SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Bukowno, PL BUP 19/07

PL B1. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL BUP 16/16

PL B1. Sposób epoksydacji (1Z,5E,9E)-1,5,9-cyklododekatrienu do 1,2-epoksy-(5Z,9E)-5,9-cyklododekadienu

(12) OPIS PATENTOWY (19)PL (11) (13) B1

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 06/18

PL B1. Sposób chłodzenia obwodów form odlewniczych i układ technologiczny urządzenia do chłodzenia obwodów form odlewniczych

PL B1. Sposób usuwania zanieczyszczeń z instalacji produkcyjnych zawierających membrany filtracyjne stosowane w przemyśle spożywczym

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 06/18

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 02/10

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1272

(12) OPIS PATENTOWY. (73) Uprawniony z patentu: ROLIMPEX Spółka Akcyjna, Warszawa, PL (43) Zgłoszenie ogłoszono:

(54) Sposób wydzielania zanieczyszczeń organicznych z wody

J CD CD. N "f"'" Sposób i filtr do usuwania amoniaku z powietrza. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 23/09

PL B1. SINKOS SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Police, PL BUP 13/13

PL B1. INSTYTUT METALI NIEŻELAZNYCH W GLIWICACH, Gliwice, PL UNIWERSYTET ŚLĄSKI W KATOWICACH, Katowice, PL

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 20/17

PL B1. Elektrolityczna, nanostrukturalna powłoka kompozytowa o małym współczynniku tarcia, zużyciu ściernym i korozji

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 02/15. MAŁGORZATA IWANEK, Lublin, PL MICHAŁ CIUKSZO, Pisz, PL

Wrocław, 17/12/2012 Strona 1/7 RAPORT Z BADAŃ

Kompozycja przyprawowa do wyrobów mięsnych, zwłaszcza pasztetu i sposób wytwarzania kompozycji przyprawowej do wyrobów mięsnych, zwłaszcza pasztetu

Biopaliwo do silników z zapłonem samoczynnym i sposób otrzymywania biopaliwa do silników z zapłonem samoczynnym. (74) Pełnomocnik:

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL

PL B1 AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA, KRAKÓW, PL BUP 08/07

Typy bioreaktorów najczęściej stosowanych w biotechnologii farmaceutycznej

(21) Numer zgłoszenia (51) Int.CI B29C 49/68 ( )

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11)

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 02/15. MAŁGORZATA IWANEK, Lublin, PL MICHAŁ CIUKSZO, Pisz, PL

PL B1. POLITECHNIKA ŚLĄSKA, Gliwice, PL EUROCERAS SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Kędzierzyn-Koźle, PL

Fotochromowe kopolimery metakrylanu butylu zawierające pochodne 4-amino-N-(4-metylopirymidyn-2-ilo)benzenosulfonamidu i sposób ich otrzymywania

PL B1. GULAK JAN, Kielce, PL BUP 13/07. JAN GULAK, Kielce, PL WUP 12/10. rzecz. pat. Fietko-Basa Sylwia

PL B1. INSTYTUT METALURGII I INŻYNIERII MATERIAŁOWEJ IM. ALEKSANDRA KRUPKOWSKIEGO POLSKIEJ AKADEMII NAUK, Kraków, PL

PL B1. POLITECHNIKA WROCŁAWSKA, Wrocław, PL BUP 06/14

PL B1. POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL BUP 19/13

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 01/17. TOMASZ GARBACZ, Lublin, PL ANETA TOR-ŚWIĄTEK, Lublin, PL

(86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego: , PCT/EP02/ (87) Data i numer publikacji zgłoszenia międzynarodowego:

PL B1. Sposób transportu i urządzenie transportujące ładunek w wodzie, zwłaszcza z dużych głębokości

PL B1. INSTYTUT ENERGETYKI, Warszawa, PL BUP 25/07

PL B1. Bromki 1-alkilochininy, sposób ich otrzymywania oraz zastosowanie jako antyelektrostatyki. POLITECHNIKA POZNAŃSKA, Poznań, PL

Szczep bakterii Lactobacillus plantarum S, zastosowanie szczepu bakterii Lactobacillus plantarum S oraz preparat do kiszenia pasz objętościowych

PL B1. INSTYTUT CHEMII PRZEMYSŁOWEJ IM. PROF. IGNACEGO MOŚCICKIEGO, Warszawa, PL BUP 10/10

Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie

OPIS PATENTOWY C22B 7/00 ( ) C22B 15/02 ( ) Sposób przetwarzania złomów i surowców miedzionośnych

(57) (13) B1 (12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) PL B1

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) (13) B1

(12) OPIS PATENTOWY (13) PL (11)

PL B1. GRABEK HALINA, Warszawa, PL BUP 23/06. KAZIMIERZ GRABEK, Warszawa, PL WUP 06/11. rzecz. pat.

(62) Numer zgłoszenia, z którego nastąpiło wydzielenie:

PL B1. Instytut Przemysłu Organicznego, Warszawa,PL BUP 13/03

Wydziału Biotechnologii i Nauk o Żywności

(12) OPIS PATENTOWY. (21) Numer zgłoszenia: (22) Data zgłoszenia: (61) Patent dodatkowy do patentu:

PL B1. Sposób zasilania silników wysokoprężnych mieszanką paliwa gazowego z olejem napędowym. KARŁYK ROMUALD, Tarnowo Podgórne, PL

PL B1. INSTYTUT ZOOTECHNIKI PAŃSTWOWY INSTYTUT BADAWCZY, Kraków, PL BUP 09/16

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 803

OPIS PATENTOWY F24J 3/08 ( ) F24J 3/06 ( ) F24D 11/02 ( )

4 Ogólna technologia żywności

PL B1. Urządzenie do wymuszonego chłodzenia łożysk, zwłaszcza poziomej pompy do hydrotransportu ciężkiego

PL B1. PRZEDSIĘBIORSTWO CIMAT SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Bydgoszcz, PL BUP 04/16

PL B1. POLITECHNIKA WARSZAWSKA, Warszawa, PL BUP 24/15. JOLANTA MIERZEJEWSKA, Warszawa, PL ALEKSANDRA MULARSKA, Ząbki, PL

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 07/17

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 25/16. AGNIESZKA WOSZUK, Lublin, PL WOJCIECH FRANUS, Prawiedniki, PL

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 03/14. ZBIGNIEW PATER, Turka, PL JANUSZ TOMCZAK, Lublin, PL

Transkrypt:

PL 222527 B1 RZECZPOSPOLITA POLSKA (12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) 222527 (13) B1 Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (21) Numer zgłoszenia: 398613 (22) Data zgłoszenia: 26.03.2012 (51) Int.Cl. C12N 1/14 (2006.01) C12R 1/785 (2006.01) A61L 2/20 (2006.01) A61L 101/10 (2006.01) (54) Sposób wyjaławiania i modyfikacji podłoży hodowlanych stosowanych w hodowli selektantów pleśni Mucor racemosus (73) Uprawniony z patentu: POLITECHNIKA ŁÓDZKA, Łódź, PL (43) Zgłoszenie ogłoszono: 30.09.2013 BUP 20/13 (45) O udzieleniu patentu ogłoszono: 31.08.2016 WUP 08/16 (72) Twórca(y) wynalazku: TADEUSZ ANTCZAK, Łódź, PL ŁUKASZ STAŃCZYK, Łódź, PL KRZYSZTOF ŚMIGIELSKI, Łódź, PL STANISŁAW BIELECKI, Łódź, PL MIROSŁAWA SZCZĘSNA-ANTCZAK, Łódź, PL KRZYSZTOF KROSOWIAK, Łódź, PL KATARZYNA STRUSZCZYK-ŚWITA, Rosanów, PL (74) Pełnomocnik: rzecz. pat. Ewa Kaczur-Kaczyńska

2 PL 222 527 B1 Opis wynalazku Przedmiotem wynalazku jest sposób wyjaławiania i modyfikacji podłoży hodowlanych stosowanych w hodowli selektantów pleśni Mucor racemosus, w wyniku której powstają preparaty enzymów katalizujące syntezę i hydrolizę estrów i hydrolizę chitozanu. Znane sposoby sterylizacji podłoży hodowlanych przeznaczonych do hodowli pleśni Mucor racemosus, opisane w opisach patentach: PL 150604, 165256, 204909, 204912 i w czasopismach: Biotechnologia, (1995), 29, 82 91; Progres in Biotechnology, (2000), 17, 221 227; Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic (2002), 19 20, 261 268, Enzyme and Microbial Technology (2006), 39, 1214 1222; Zeszyty Naukowe Politechniki Łódzkiej, (2001), 884, 1 175, polegają na określonej czasowo termicznej sterylizacji podłoża w środowisku nasyconej pary wodnej pod ciśnieniem równym 1000 hpa i w temperaturze 121 C. Ze zgłoszeń patentowych P 385093, P 396200, P 396514, P 396517, P 391954 są znane sposoby termicznego wyjaławiania podłoży hodowlanych przeznaczonych do hodowli selektantów pleśni Mucor racemosus: CH52, A40/3SE, A27/3sTAG, A33/PPDGP, MSA/52. Sposoby te polegają na przetrzymaniu tych podłoży przez 20 minut w autoklawie w nasyconej parze wodnej w temperaturze 121 C pod nadciśnieniem 1000 hpa. Wyjałowione metodą termiczną podłoże należy następnie poddać ochłodzeniu oraz rozprężeniu w celu obniżenia temperatury i ciśnienia i dopiero wtedy możliwym jest jego zaszczepienie kulturą mateczną. Sposób ten jest procesem energochłonnym, wymagającym użycia kosztownych, ciśnieniowych urządzeń, co podwyższa koszt otrzymania preparatów enzymatycznych. W opisie patentowym GB 1,148,279 opisano zastosowanie ozonu do wyjaławiania podłoży zawierających węglowodory, stosowanych do hodowli drożdży. Zgodnie z opisem patentowym PL 210215 podłoża melasowe wyjaławia się w drodze ozonowania. Z czasopisma Bioresourse Technology, 2008, tom 99, s. 8265 8272 jest znane zastosowanie ozonu do wyjaławiania wód odpadowych po przerobie zboża, stosowanych jako podłoże do wytwarzania biomasy Rhizopus oligosporus. W czasopiśmie Agro Przemysł, 2007 roku, tom 3, s. 27 29 opisano zastosowanie technologii ozonowania w przemyśle środków spożywczych i napojów. Znane jest, z czasopisma Gazeta Cukrownicza, 2004 roku, tom 9, s. 251 254, zastosowanie ozonu do odbarwiania syropów cukrowniczych. W czasopiśmie International Journal of Dairy Technology, 2005 rok, tom 58, s. 19 24 porównano działanie ozonu, temperatury i chloru na przeżywalność bakterii zakażających żywność. W czasopiśmie Journal of Food Protection, 1999, tom 9, s. 1071 1087 opisano zastosowanie ozonu do zwiększenia mikrobiologicznego bezpieczeństwa i jakości żywności. W czasopiśmie Journal of Food Science, 2001 roku. tom 66, zeszyt 9, s. 1242 1252 opisano mikrobiologiczny aspekt zastosowania ozonu do zabezpieczania żywności, zaś w czasopiśmie Journal of Food Science, 2005 rok, tom 70, s. M197-M201 wykazano bójcze działanie ozonu na szczepy bakterii Escherichia coli i Salmonella. W kolekcji Instytutu Biochemii Technicznej Politechniki Łódzkiej znajdują się selektanty pleśni Mucor racemosus wykorzystywane w przykładach realizacji wynalazku. Sposób wyjaławiania i modyfikacji podłoży hodowlanych stosowanych w hodowli selektantów pleśni Mucor racemosus, inokularnych i produkcyjnych ciekłych, zawierających namok kukurydziany, oliwę z oliwek lub olej oraz wodę wodociągową, a w przypadku ciekłych produkcyjnych dodatkowo porowaty stały nośnik w postaci pianki poliuretanowej, oraz produkcyjnych stałych zawierających śrutę kukurydzianą, wysłodki buraczane, wytłoki rzepakowe i wodę wodociągową, z wykorzystaniem ozonu, według wynalazku polega na tym, że podłoże poddaje się działaniu mieszaniny ozonu i powietrza wprowadzanej w sposób ciągły przy ciśnieniu 500 hpa w temperaturze 19 20 C. Podłoże inokularne poddaje się działaniu mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 80 100 g/m 3, wprowadzanej do kolb z tym podłożem przez spiek o porowatości G4, z prędkością 0,1 0,2 l/min w czasie 5 10 min. Ciekłe podłoże produkcyjne poddaje się działaniu mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 80 180 g/m 3, wprowadzanej do fermentora z tym podłożem z prędkością 0,2 0,6 l/min w czasie 30 min przewodem przeznaczonym do napowietrzania podłoża w trakcie hodowli produkcyjnej, przy mieszaniu podłoża z szybkością obrotową 120 min -1. Stałe podłoże produkcyjne poddaje się działaniu mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 90 180 g/m 3, wprowadzanej do kolb z tym podłożem z prędkością 0,1 0,4 l/min w czasie 10 min, przy wstrząsaniu kolb co 15 s.

PL 222 527 B1 3 W wyniku hodowli selektantów pleśni Mucor racemosus na podłożach wyjałowionych sposobem według wynalazku otrzymuje się preparaty lipaz i esteraz o wyższej 28 65% całkowitej aktywności katalitycznej w porównaniu z całkowitą aktywnością katalityczną preparatów otrzymanych w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych Stosując sposób wyjaławiania według wynalazku eliminuje się operację ogrzewania i schładzania podłoży konieczną w przypadku ich termicznej sterylizacji skraca czas hodowli, co dodatkowo obniża koszt procesu wytwarzania enzymów w drodze tej hodowli. Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady. P r z y k ł a d I Podłoże hodowlane inokularne o składzie w częściach wagowych: 29 części oliwy z oliwek, 41 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o barwie większej niż 5 mg Pt (PN-EN ISO 7887:2002), mętności nie większej niż 0,4 NTU (PN-EN ISO 7027:2003), przewodności nie większej niż 500 S/cm (PN-EN-27888:1999), ph w zakresie 7,1 7,4 (PN-90/C 04540.01), ChZT nie większym niż 1,75 (PN-ISO 15705:2005 PB-22.00:2009), twardości nie większej niż 15 n, o zawartości azotanów nie większej niż 4 mg/l (PB-03.00:2008) i żelaza nie większej niż 0,2 mg/l (PN-ISO 6332 : 2001) oraz wyjściowym ph równym 4,9 wprowadzano w ilości 200 ml do kolb o objętości 1000 ml i poddawano ozonowaniu za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 80 g/m 3, wprowadzanej z prędkością 0,2 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa, przez spiek G4, w temperaturze 19 20 C, w czasie 10 min. Po 30 min od zakończenia sterylizacji podłoże inokularne szczepiono selektantem pleśni Mucor racemosus A40/3SE, którego zarodniki hodowano na sterylnym podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 30 części, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8 Be, a nadto 0,5 części oleinianu oleilu i zmywano sterylną solą fizjologiczną zawierającą 0,01% Tritonu X-100, stosując 1 cm 3 zarodników na 100 cm 3 podłoża i prowadzono hodowlę wstrząsaną w temperaturze 28 31 C, w czasie 18 godz. i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min -1. Otrzymanym inokulum zaszczepiono podłoże produkcyjne o składzie identycznym jak skład podłoża inokularnego, o objętości 18 l, znajdujące się w fermentorze produkcyjnym o objętości całkowitej 24 l, stosując 10% objętościowych inokulum w stosunku do objętości podłoża. Podłoże produkcyjne było uprzednio wysterylizowane za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 80 g/m 3, wprowadzanej z prędkością 0,2 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa, w temperaturze 19 20 C w czasie 30 min, za pomocą przewodu do doprowadzania powietrze do podłoża w fermentorze, przy mieszaniu podłoża mieszadłem z szybkością obrotową 120 min -1, następnie podgrzane do temperatury 30 C oraz wysycone sterylnym powietrzem przez 10 min. Do mieszadła umieszczonego w fermentorze zamocowano w powtarzalny sposób prostopadłościenne płaty pianki poliuretanowej na bazie poliolu polieteru o całkowicie otwartej strukturze komórkowej, tzw. pianki retykulowanej, uzyskanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, o numerze klasyfikacyjnym S 28133, o wymiarach 250 x 120 x 10 mm, charakteryzującej się gęstością 23 27 kg/m 3, wytrzymałością na rozciąganie 150 kpa i średnicą porów 1,08 1,58 mm. Hodowlę produkcyjną prowadzono w temperaturze 28 31 C w czasie 65 godz., w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, przy mieszaniu z szybkością obrotową 120 min -1, doprowadzając powietrze w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 min. Otrzymane w wyniku hodowli produkcyjnej płaty pianki poliuretanowej, przerośnięte biomasą Mucor racemosus A40/3SE, po oddzieleniu od cieczy pohodowlanej na drodze filtracji, przemywano wodą w celu odmycia rozpuszczalnych produktów metabolizmu monitorowanego pomiarem absorbancji A<0,05 dla długości fali =280 nm, zalewano kolejno 3 porcjami acetonu schłodzonego do temperatury 4 C, stosowanego w ilości 15 części wagowych na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą i odwadniano 10 min w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybkości obrotowej 120 min -1. Odwodnioną i odlipidowaną biomasę, zaadsorbowaną w porach pianki poliuretanowej, suszono na powietrzu w czasie 18 godz. w temperaturze pokojowej. w reakcji syntezy oleinianu oleilu, wyższej o 40% w porównaniu z aktywnością syntetyczną w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d II Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 107 części oliwy z oliwek, 58 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie 1, poddano sterylizacji jak podłoże produkcyjne w przykładzie 1, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 120 g/m 3, wprowadzaną z szybkością

4 PL 222 527 B1 0,3 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A40/3SE jak w przykładzie I i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. w reakcji syntezy oleinianu oleilu, wyższej o 63% w porównaniu z aktywnością syntetyczną w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d III Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 29 części oleju słonecznikowego, 41 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie 1 poddano sterylizacji jak w przykładzie I. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A40/3SE jak w przykładzie I i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując w przykładzie I. w reakcji syntezy oleinianu oleilu, wyższej o 55% w porównaniu z aktywnością syntetyczną w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d IV Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 105 części oleju słonecznikowego, 56 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I poddano sterylizacji jak w przykładzie I, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 130 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,4 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A40/3SE jak w przykładzie I i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. w reakcji syntezy oleinianu oleilu, wyższej o 64% w porównaniu z aktywnością syntetyczną w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d V Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 29 części oleju rzepakowego, 41 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach ozonu i powietrza zawierającą ozonu 180 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,2 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A40/3SE jak w przykładzie I i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. w reakcji syntezy oleinianu oleilu, wyższej o 39% w porównaniu z aktywnością syntetyczną w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d VI Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 109 części oleju rzepakowego, 59 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach ozonu i powietrza zawierającą ozonu 140 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,3 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A40/3SE jak w przykładzie I i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. w reakcji syntezy oleinianu oleilu, wyższej o 58% w porównaniu z aktywnością syntetyczną w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d VII Podłoże hodowlane inokularne o składzie w częściach wagowych: 0,5 części handlowej chityny, 27 części oliwy z oliwek, 37 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I wprowadzano w ilości 200 ml do kolb o objętości 1000 ml i poddano ozonowaniu za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 90 g/m 3, wprowadzanej z prędkością 0,2 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa, przez spiek o porowatości G4, w temperaturze 19 20 C, w czasie 10 min. Po 30 min od zakończenia sterylizacji podłoże inokularne

PL 222 527 B1 5 szczepiono selektantem pleśni Mucor racemosus CH52/3SC, którego zarodniki hodowano na sterylnym podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 30 części, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8 Be, a nadto 0,5 części koloidalnej chityny i zmywano sterylną solą fizjologiczną zawierającą 0,01% Tritonu X-100, stosując 1 cm 3 zarodników na 100 cm 3 podłoża i prowadzono hodowlę wstrząsaną w temperaturze 28 31 C, w czasie 18 godz. i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min -1. Otrzymanym inokulum zaszczepiono podłoże produkcyjne o identycznym jak inokulum składzie, o objętości 18 l znajdujące się w fermentorze produkcyjnym o objętości całkowitej 24 l, stosując 10% objętościowych inokulum w stosunku do objętości podłoża. Podłoże produkcyjne było uprzednio wysterylizowane za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 90 g/m 3 wprowadzanej z prędkością 0,4 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa, w temperaturze 19 20 C w czasie 30 min za pomocą przewodu do doprowadzania powietrze do podłoża podczas hodowli, mieszanego mieszadłem z szybkością obrotową 120 min -1 i następnie podgrzane do temperatury 30 C i wysycone sterylnym powietrzem przez 10 min. Do mieszadła umieszczonego w fermentorze zamocowano w powtarzalny sposób prostopadłościenne płaty pianki poliuretanowej na bazie poliolu polieteru o całkowicie otwartej strukturze komórkowej (tak zwanej pianki retykulowanej, uzyskanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, numer kwalifikacyjny TM 23280, charakteryzującej się następującymi parametrami fizykochemicznymi: gęstością 19 22 kg/m 3, wytrzymałością na rozciąganie 70 kpa i średnicą porów 2,2 3,4 mm, o wymiarach 250 x 120 x 10 mm (wysokość/szerokość/grubość). Hodowlę prowadzono w temperaturze 28 31 C w czasie 60 godz., w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, przy mieszaniu z szybkością obrotową 120 min -1, doprowadzając powietrze w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 min. Z otrzymanymi w wyniku hodowli produkcyjnej płatami pianki poliuretanowej, przerośniętymi biomasą Mucor racemosus CH52/3SC, postępowano jak w przykładzie I. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów o całkowitej aktywności, endochitozanazy wyższej o 27% i całkowitej aktywności egzochitozanazy wyższej o 29% w porównaniu z całkowitą aktywnością endochitozanazy i całkowitą aktywnością egzochitozanazy preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d VIII Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 1 część wagowa handlowego chitozanu, 79 części oliwy z oliwek, 48 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie VII poddano sterylizacji, jak w przykładzie I, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 120 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,3 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus CH52/3SC jak w przykładzie VII i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów o całkowitej aktywności, endochitozanazy wyższej o 47% i całkowitej aktywności egzochitozanazy wyższej o 30% w porównaniu z całkowitą aktywnością endochitozanazy i całkowitą aktywnością egzochitozanazy preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d IX Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 0,3 części handlowego chitozanu, 29 części oleju rzepakowego, 41 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I poddano sterylizacji jak w przykładzie I, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 70 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,6 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus CH52/3SC jak w przykładzie VII i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów o całkowitej aktywności, endochitozanazy wyższej o 39% i całkowitej aktywności egzochitozanazy wyższej o 28% w porównaniu z całkowitą aktywnością endochitozanazy i całkowitą aktywnością egzochitozanazy preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d X Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 1 część handlowej chityny, 77 części oleju rzepakowego, 47 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I poddano sterylizacji jak w przykładzie I, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 140 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,2 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus CH52/3SC jak w przykładzie VII i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. Otrzymano nieroz-

6 PL 222 527 B1 puszczalny preparat enzymów o całkowitej aktywności, endochitozanazy wyższej o 41% i całkowitej aktywności egzochitozanazy wyższej o 36% w porównaniu z całkowitą aktywnością endochitozanazy i całkowitą aktywnością egzochitozanazy preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XI Podłoże hodowlane inokularne o składzie w częściach wagowych jak w przykładzie I wprowadzano w ilości 200 ml do kolb o objętości 1000 ml i poddawano ozonowaniu za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 90 g/m 3, wprowadzanej z prędkością 0,2 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa, przez spiek o porowatości G4, w temperaturze 19 20 C, w czasie 10 min. Po 30 min od zakończenia sterylizacji podłoże inokularne szczepiono selektantem pleśni Mucor racemosus A27/3sTAG, którego zarodniki hodowano na sterylnym podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 20 30 części, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8 Be, a nadto 0,5 części tripalmitynianu glicerolu i zmywano sterylną solą fizjologiczną zawierającą 0,01% Tritonu X-100, stosując 1 cm 3 zarodników na 100 cm 3 podłoża i prowadzono hodowlę wstrząsaną w temperaturze 28 31 C, w czasie 18 godz. i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min -1. Otrzymanym inokulum zaszczepiono podłoże produkcyjne o składzie identycznym jak skład podłoża inokularnego, o objętości 18 l znajdujące się w fermentorze produkcyjnym o objętości całkowitej 24 l, stosując 10% objętościowych inokulum w stosunku do objętości podłoża. Podłoże produkcyjne było uprzednio wysterylizowane za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 80 g/m 3 wprowadzanej z prędkością 0,2 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa, w temperaturze 19 20 C w czasie 30 min, za pomocą przewodu do doprowadzania powietrze do podłoża podczas hodowli, mieszanego mieszadłem z szybkością obrotową 120 min -1, a następnie podgrzane do temperatury 30 C i wysycone sterylnym powietrzem przez 10 min. Do mieszadła umieszczonego w fermentorze zamocowano w powtarzalny sposób prostopadłościenne płaty pianki poliuretanowej będące porowatym nośnikiem hodowanego selektanta w postaci prostopadłościennych płatów pianki poliuretanowej na bazie poliolu poliestrowego o całkowicie otwartej strukturze komórkowej, tzw. pianki retykulowanej, uzyskanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, o numerze klasyfikacyjnym S28280, charakteryzującej się gęstością 23 27 kg/m 3, wytrzymałością na rozciąganie 100 kpa, średnicą porów 2,30 3,30 mm, o wymiarach 250 x 120 x 10 mm. Hodowlę prowadzono w temperaturze 28 31 C w czasie 65 godz., w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, przy mieszaniu z szybkością obrotową 120 min -1, doprowadzając powietrze w ilości 1 część objętościowa na 1 część 20 objętościową podłoża w czasie 1 min. Z otrzymanymi w wyniku hodowli produkcyjnej płatami pianki poliuretanowej, przerośniętymi biomasą Mucor racemosus A27/3sTAG postępowano jak w przykładzie I. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów o całkowitej aktywności, mierzonej w reakcji acydolizy oleju rzepakowego kwasem palmitynowym, wyższej o 32% w porównaniu z całkowitą aktywnością w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XII Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 109 części oliwy z oliwek, 56 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach ozonu i powietrza zawierającą ozonu 130 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,4 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A27/3sTAG jak w przykładzie I i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. acydolizy oleju rzepakowego kwasem palmitynowym, wyższej o 55% w porównaniu z aktywnością całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XIII Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 27 części oleju słonecznikowego, 37 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I poddano sterylizacji jak w przykładzie I. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A27/3sTAG jak w przykładzie I i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując w przykładzie I. acydolizy oleju rzepakowego kwasem palmitynowym, wyższej o 52% w porównaniu z aktywnością

PL 222 527 B1 7 całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XIV Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 109 części oleju rzepakowego, 58 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie 1 poddano sterylizacji jak w przykładzie I, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 150 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,4 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A27/3sTAG jak w przykładzie I i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. acydolizy oleju rzepakowego kwasem palmitynowym, wyższej o 60% w porównaniu z aktywnością całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XV Podłoże hodowlane inokularne o składzie w częściach wagowych: 44 części oliwy z oliwek, 46 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I wprowadzano w ilości 200 ml do kolb o objętości 1000 ml i poddano ozonowaniu za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 100 g/m 3, wprowadzanej z prędkością 0,1 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa, przez spiek o porowatości G4, w temperaturze 19 20 C, w czasie 5 min. Po 30 minutach od zakończenia sterylizacji podłoże inokularne szczepiono selektantem pleśni Mucor racemosus A33/PPDGP, którego zarodniki hodowano na sterylnym podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 30 części, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8 Be, a nadto 0,2 części distearynianu glikolu polietylenowego Mc 6000 i zmywano sterylną solą fizjologiczną zawierającą 0,01% Tritonu X-100, stosując 1 cm 3 zarodników na 100 cm 3 podłoża i prowadzono hodowlę wstrząsaną w temperaturze 28 31 C, w czasie 18 godz. przy szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min -1. Otrzymanym inokulum zaszczepiono, podłoże produkcyjne o składzie identycznym jak skład podłoża inokularnego, o objętości 18 l znajdujące się w fermentorze produkcyjnym o objętości całkowitej 24 l, stosując 10% objętościowych inokulum w stosunku do objętości podłoża. Podłoże produkcyjne było uprzednio wysterylizowane za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 80 g/m 3 wprowadzanej z prędkością 0,2 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa w temperaturze 19 20 C w czasie 30 min, za pomocą przewodu do doprowadzania powietrze do podłoża podczas hodowli, mieszanego mieszadłem z szybkością obrotową 120 min -1, następnie podgrzane do temperatury 30 C i wysycane sterylnym powietrze przez 10 min. Do mieszadła umieszczonego w fermentorze zamocowano w powtarzalny sposób prostopadłościenne płaty pianki poliuretanowej na bazie poliolu poliestrowego, o całkowicie otwartej strukturze komórkowej, tzw. pianki retykulowanej, uzyskanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, o numerze klasyfikacyjnym S31380, charakteryzującej się gęstością 26 30 kg/m 3, wytrzymałością na rozciąganie 125 kpa, średnicą porów 3,40 4,20 mm, o wymiarach 250 x 120 x 10 mm. Hodowlę prowadzono w temperaturze 28 31 C w czasie 60 godz., w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, przy mieszaniu z szybkością obrotową 120 min -1, doprowadzając powietrze w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 min. Z otrzymanymi w wyniku hodowli produkcyjnej płatami pianki poliuretanowej, przerośniętymi biomasą Mucor racemosus A33/PPDGP postępowano jak w przykładzie I. hydrolizy oligopeptydów, wyższej o 52% w porównaniu z aktywnością całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XVI Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 109 części oliwy z oliwek, 58 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach ozonu i powietrza zawierającą ozonu 160 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,2 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A33/PPDGP jak w przykładzie XV i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. hydrolizy oligopeptydów, wyższej o 62% w porównaniu z aktywnością całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych

8 PL 222 527 B1 P r z y k ł a d XVII Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 29 części oleju słonecznikowego, 41 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I poddano sterylizacji jak w przykładzie I, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 110 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,1 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A33/PPDGP jak w przykładzie XV i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. hydrolizy oligopeptydów, wyższej o 50% w porównaniu z aktywnością całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XVIII Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 109 części oleju słonecznikowego, 47 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I poddano sterylizacji jak w przykładzie I, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 160 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,2 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A33/PPDGP jak w przykładzie XV i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. hydrolizy oligopeptydów, wyższej o 61% w porównaniu z aktywnością całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XIX Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 29 części o oleju rzepakowego, 41 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach ozonu i powietrza zawierającą ozonu 90 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,3 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A33/PPDGP jak w przykładzie XV i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. hydrolizy oligopeptydów, wyższej o 60% w porównaniu z aktywnością całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XX Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 109 części oleju rzepakowego, 58 części namoku kukurydzianego firmy Roquette oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach ozonu i powietrza zawierającą ozonu 180 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,2 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus A33/PPDGP jak w przykładzie i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie I. hydrolizy oligopeptydów, wyższej o 65% w porównaniu z aktywnością całkowitą w tej samej reakcji preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XXI Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 12,09 części wagowych śruty kukurydzianej o średniej średnicy drobin 2,51 mm, 11,92 części wagowych wysłodków buraczanych o średniej średnicy drobin 2,55 mm, 8,24 części wagowych wytłoków rzepakowych o średniej średnicy drobin 0,60 mm i 115 części wagowych wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I oraz wyjściowym ph równym 4,85 poddano ozonowaniu za pomocą mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 90 g/m 3, wprowadzanej z prędkością 0,4 l/min przy nadciśnieniu 500 hpa przez 10 min w temperaturze 19 20 C, do kolby stożkowej o objętości 1000 ml, wstrząsając co 15 s umieszczone w niej podłoże hodowlane. Po czasie 20 min, od zakończenia procesu sterylizacji, podłoże szczepiono selektantem pleśni Mucor racemosus MSA52, którego zarodniki hodowano na sterylnym podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 30 części, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8 Be, a nadto zawierające 0,01 części wagowych oleju rzepakowego i zmywano sterylną solą fizjologiczną zawierającą 0,01% Tritonu X-100. Statyczną hodowlę produkcyjną prowadzono w temperaturze 29 30 C w czasie 3 dni mieszając stałe podłoże hodowlane co 24 godz. Do uzyskanej po hodowli mieszaniny grzybni oraz niewykorzystanych, stałych składników podłoża wprowadzano 300 ml acetonu i intensywnie mieszając prowadzono ekstrakcję składników rozpusz-

PL 222 527 B1 9 czalnych, po czym ekstrakt sączono na przegrodzie ceramicznej. Ekstrakcję powtarzano 3-krotnie. Otrzymany stały preparat enzymatyczny suszono w temperaturze 21 C przez 24 godziny, mielono w młynie udarowym i przechowywano w temperaturze pokojowej w zamkniętych naczyniach. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów o całkowitej aktywności lipolitycznej wyższej o 48% w porównaniu z całkowitą aktywnością lipolityczną preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XXII Podłoże hodowlane produkcyjne o składzie w częściach wagowych: 12,09 części wagowych śruty kukurydzianej o średniej średnicy drobin 2,51 mm, 15,05 części wagowych wytłoków jabłkowych, 8,24 części wagowych wytłoków rzepakowych o średniej średnicy drobin 0,60 mm i 115,00 części wagowych wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I poddano sterylizacji jak w przykładzie XXI, przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 120 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,2 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus MSA52 i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie XXI. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów o całkowitej aktywności lipolitycznej wyższej o 54% w porównaniu z całkowitą aktywnością lipolityczną preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych P r z y k ł a d XXIII Podłoże hodowlane o składzie w częściach wagowych: 12,09 części wagowych śruty kukurydzianej o średniej średnicy drobin 2,51 mm, 11,92 części wagowych wysłodków buraczanych o średniej średnicy drobin 2,55 mm, 8,24 części wagowych wytłoków słonecznikowych o średniej średnicy drobin 0,69 mm i 115,00 części wagowych wody wodociągowej o właściwościach jak w przykładzie I poddano sterylizacji jak w przykładzie V przy czym stosowano mieszaninę ozonu i powietrza zawierającą ozonu 180 g/m 3, wprowadzaną z szybkością 0,1 l/min. Na podłożu tym hodowano selektant szczepu Mucor racemosus MSA52 i wyodrębniono preparat enzymatyczny postępując jak w przykładzie XXI. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów o całkowitej aktywności lipolitycznej wyższej o 44% w porównaniu z całkowitą aktywnością lipolityczną preparatu enzymów otrzymanego w wyniku hodowli na podłożach sterylizowanych Zastrzeżenie patentowe Sposób wyjaławiania i modyfikacji podłoży hodowlanych stosowanych w hodowli selektantów pleśni Mucor racemosus, inokularnych i produkcyjnych ciekłych, zawierających namok kukurydziany, oliwę z oliwek lub olej oraz wodę wodociągową, a w przypadku produkcyjnych ciekłych dodatkowo porowaty stały nośnik w postaci pianki poliuretanowej, oraz produkcyjnych stałych zawierających śrutę kukurydzianą, wysłodki buraczane, wytłoki rzepakowe i wodę wodociągową, z wykorzystaniem ozonu, znamienny tym, że podłoże poddaje się działaniu mieszaniny ozonu i powietrza wprowadzanej w sposób ciągły przy ciśnieniu 500 hpa w temperaturze 19 20 C, przy czym podłoże inokularne poddaje się działaniu mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 80 100 g/m 3, wprowadzanej do kolb z tym podłożem przez spiek o porowatości G4, z prędkością 0,1 0,2 l/min w czasie 5 10 min, ciekłe podłoże produkcyjne poddaje się działaniu mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 80 180 g/m 3, wprowadzanej do fermentera z tym podłożem z prędkością 0,2 0,6 l/min w czasie 30 min przewodem przeznaczonym do napowietrzania podłoża w trakcie hodowli produkcyjnej, przy mieszaniu podłoża z szybkością obrotową 120 min -1, zaś stałe podłoże produkcyjne poddaje się działaniu mieszaniny ozonu i powietrza o zawartości ozonu 90 180 g/m 3, wprowadzanej do kolb z tym podłożem z prędkością 0,1 0,4 l/min w czasie 10 min, przy wstrząsaniu kolb co 15 s.

10 PL 222 527 B1 Departament Wydawnictw UPRP Cena 2,46 zł (w tym 23% VAT)