SPIRODELA DUCKWEED TOXKIT Procedura testu

Podobne dokumenty
THAMNOTOXKIT F Procedura testu

OSTRACODTOXKIT F Procedura testu

ALGALTOXKIT F Procedura testu

II. Badanie lekowrażliwości drobnoustrojów ćwiczenia praktyczne. Ćwiczenie 1. Oznaczanie lekowrażliwości metodą dyfuzyjno-krążkową

WYŻEJ OPISANA CZĘŚĆ DOŚWIADCZENIA JEST PRZYGOTOWANA EOZYNA ŻÓŁTAWA

ĆWICZENIA Z MECHANIZMÓW DZIAŁANIA WYBRANYCH GRUP LEKÓW

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

QMS Quality in Microbiology Scheme Wydanie 14 Data wydania: czerwiec 2018

Genomic Micro AX Blood Gravity 96-well

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Testy aktywności przeciwdrobnoustrojowej na przykładzie metody dyfuzyjnej oraz wyznaczania wartości minimalnego stężenia hamującego wzrost.

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Saccharomyces Transformer Kit zestaw do przygotowywania i transformacji komórek kompetentnych Saccharomyces cerevisiae. Metoda chemiczna.

E.coli Transformer Kit

BIOCHEM-ART ; ul. Elfów 75, Gdańsk tel./fax (0-58)

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

II. OZNACZANIE LICZBY BAKTERII Z GRUPY COLI I BAKTERII Z GRUPY COLI TYP FEKALNY METODĄ PŁYTKOWĄ W ŻYWNOŚCI I INNYCH PRODUKTACH wg PN-ISO 4832: 2007

Gel-Out. 50 izolacji, 250 izolacji. Nr kat , Zestaw do izolacji DNA z żelu agarozowego. wersja 0617

Laboratorium Podstaw Biofizyki Pomiar potencjału dyfuzyjnego i błonowego 4

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

bi ~ Zestaw dydal<tyczny umożliwiający przeprowadzenie izolacji genomowego DNA z bakterii EasyLation Genomie DNA INSTRUI<CJA DLA STUDENTÓW

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

1276: (ATCC

ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

LABORATORIUM Z PODSTAW BIOFIZYKI ĆWICZENIE NR 4 1. CEL ĆWICZENIA

Wskaźniki kontroli procesów sterylizacji

Zestaw do izolacji genomowego DNA z drożdży

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Zestaw do izolacji genomowego DNA z drożdży

MATERIAŁY SZKOLENIOWE DLA ZAKŁADÓW HIGIENY WETERYNARYJNEJ W ZAKRESIE LABORATORYJNEJ DIAGNOSTYKI AFRYKAŃSKIEGO POMORU ŚWIŃ

E.coli Transformer Zestaw do przygotowywania i transformacji komórek kompetentnych Escherichia coli

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA Farmacja 2016

Test Immunoenzymatyczny DRG Kortyzol dostarcza materiałów do oznaczania kortyzolu w surowicy i osoczu.

Ćwiczenie 4-5 Mikrobiologiczne kryteria oceny sanitarnej wody

Total RNA Zol-Out. 25 izolacji, 100 izolacji

Zestaw do izolacji genomowego DNA z bakterii

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

Polimeraza Taq (1U/ l) 1-2 U 1 polimeraza Taq jako ostatni składniki mieszaniny końcowa objętość

Zestaw do izolacji genomowego DNA z bakterii

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

1. PRZYGOTOWANIE PRÓB KORYGUJĄCYCH

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

Genomic Maxi AX zestaw do izolacji genomowego DNA wersja 0616

RAPORT Z BADAŃ 01369/2015/D/AGST. Blirt S.A Gdańsk, ul. Trzy Lipy 3/1.38. Dział DNA-Gdańsk. Nr zlecenia

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

Laboratorium z biofizyki

Techniki immunoenzymatycznego oznaczania poziomu hormonów (EIA)

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Test kuwetowy LCK 554

Identyfikacja mikroorganizmów systemem firmy Biolog

Novabeads Food DNA Kit

Genomic Midi AX. 20 izolacji

Laboratorium 7. Testy na genotoksyczność

PRAKTYCZNY KURS SZKOLENIOWY OCENY MUTAGENNOŚCI WODY WYKONANY TESTEM MIKROPŁYTKOWYM AMES MPF 98/100 AQUA

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

XXV. Grzyby cz I. Ćwiczenie 1. Wykonanie i obserwacja preparatów mikroskopowych. a. Candida albicans preparat z hodowli barwiony metoda Grama

Odczynnik do izolacji RNA z tkanek zwierzęcych, roślinnych oraz linii komórkowych

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 8. Argentometryczne oznaczanie chlorków metodą Fajansa

Genomic Mini AX Milk Spin

. Pierwszą czynnością badania jest pobranie próbki wody. W tym celu potrzebna będzie szklana butelka o poj. ok. 250 cm 3.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Techniki molekularne ćw. 1 1 z 6

Genomic Mini AX Plant Spin

fix RNA Roztwór do przechowywania i ochrony przed degradacją próbek przeznaczonych do izolacji RNA kat. nr. E0280 Sierpień 2018

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Laboratorium z bionanostruktur. Prowadzący: mgr inż. Jan Procek Konsultacje: WT D- 1 8A

Metoda analityczna oznaczania chlorku winylu uwalnianego z materiałów i wyrobów do żywności

ANALIZA INSTRUMENTALNA

OCENA TOKSYCZNOŚCI PRODUKTÓW FOTODEGRADACJI CHLORPROMAZYNY PRZY UŻYCIU TESTÓW OSTRYCH NA BRACHIONUS CALYCIFLORUS (WROTKI)

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

Stosowanie w skali laboratoryjnej

Zastosowanie. Zestaw DRG Epstein Barr Virus (VCA) zapewnia materiały do pomiaru przeciwciał Epstein Barr (VCA) w klasie IgG w surowicy.

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Zestaw przeznaczony jest do całkowitej izolacji RNA z bakterii, drożdży, hodowli komórkowych, tkanek oraz krwi świeżej (nie mrożonej).

Część laboratoryjna. Sponsorzy

Oznaczanie aktywności cytotoksycznej chemoterapeutyków wobec komórek nowotworowych

BADANIA TOKSYCZNOŚCI ZANIECZYSZCZEŃ ORGANIZMÓW WODNYCH (PN -90/C-04610/01;03;05)

Instrukcje do ćwiczeń oraz zakres materiału realizowanego na wykładach z przedmiotu Mikrobiologia na kierunku chemia kosmetyczna

Temat ćwiczenia: Techniki stosowane w badaniach toksyczności in vitro

Test kuwetowy LCK 555

Test kuwetowy LCK 554

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

OCENA CZYSTOŚCI WODY NA PODSTAWIE POMIARÓW PRZEWODNICTWA. OZNACZANIE STĘŻENIA WODOROTLENKU SODU METODĄ MIARECZKOWANIA KONDUKTOMETRYCZNEGO

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

Laboratorium Podstaw Biofizyki

gdzie m w określa masę węglowodoru, a m r masę całego roztworu. Wyniki zanotować w tabeli. cpods

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

DRG International, Inc., USA Fax: (973)

Transkrypt:

SPIRODELA DUCKWEED TOXKIT Procedura testu

1 PRZYGOTOWANIE POŻYWKI WZROSTOWEJ I DO ROZCIEŃCZEŃ - KOLBKA MIAROWA (500 ml) - FIOLKI ZE STĘŻONYMI ROZTWORAMI POŻYWKI STEINBERG - CZYSTA WODA (dejonizowana lub destylowana)

2 PRZENIEŚĆ PIPETĄ 10 ml STĘŻONEGO ROZTWORU A, B i C DO + 300 ml CZYSTEJ WODY W KOLBCE MIAROWEJ 500 ml

3 PRZENIEŚĆ 0,5 ml POŻYWKI Z FIOLEK D i E DO KOLBKI MIAROWEJ

4 UZUPEŁNIĆ KOLBKĘ DO LINII 500 ml CZYSTĄ WODĄ ZATKAĆ KOLBKĘ I WSTRZĄSAĆ W CELU HOMOGENIZACJI POŻYWKI

5 KIEŁKOWANIE TURIONÓW SPIRODELA POLYRHIZA PRZYGOTOWAĆ PROBÓWKĘ Z TURIONAMI SPIRODELA I WSTRZĄSNĄĆ JĄ DELIKATNIE W CELU ROZPROWADZENIA ZAWIESINY TURIONÓW

6 - WYLAĆ ZAWARTOŚĆ PROBÓWKI Z TURIONAMI NA MIKROSITKO - UPEWNIĆ SIĘ, ŻE WSZYSTKIE TURIONY ZOSTAŁY USUNIĘTE Z PROBÓWKI

7 PŁUKAĆ DOKŁADNIE TURIONY CZYSTĄ WODĄ

8 ODWRÓCIĆ SITKO I WYPŁUKAĆ TURIONY DO PŁYTKI PETRI EGO Z POŻYWKĄ STEINBERG UWAGA: Końcowa objętość pożywki Steinberg w płytce Petri ego powinna wynosić 30 ml

A 9 INKUBOWAĆ PŁYTKĘ PETRI EGO PRZEZ 72h W 25 C W CIĄGŁYM OŚWIETLENIU OD GÓRY, O NATĘŻENIU 6 000 LUX A : inkubator z wbudowanym oświetleniem B B : inkubator z zestawem oświetlającym LRD

10 PRZYGOTOWANIE ROZCIEŃCZEŃ BADANEJ PRÓBKI Na przykład: OCENA TOKSYCZNOŚCI ŚCIEKÓW W 5 ROZCIEŃCZENIACH (C1-C5) 100% - 50% - 25% - 12.5% - 6.25%

11 DODAWANIE STĘŻONEJ POŻYWKI STEINBERG DO ŚCIEKÓW - PRZENIEŚĆ OKOŁO 80 ml ŚCIEKÓW DO KOLBKI MIAROWEJ 100 ml - DODAĆ 2 ml POŻYWKI Z FIOLEK A, B, C

12 DODAĆ 100 µl POŻYWKI Z FIOLEK D i E DO KOLBKI MIAROWEJ

13 - UZUPEŁNIĆ KOLBKĘ ŚCIEKAMI DO LINII 100 ml - ZATKAĆ KOLBKĘ I WSTRZĄSAJĄC WYMIESZAĆ ZAWARTOŚĆ

14 PRZYGOTOWANIE SZEREGU ROZCIEŃCZEŃ ŚCIEKÓW - PRZYGOTOWAĆ PIĘĆ PROBÓWEK 20 ml I OZNAKOWAĆ JE OD C1 DO C5 - DODAĆ 20 ml BADANYCH ŚCIEKÓW DO PROBÓWKI C1

15 DODAĆ 10 ml POŻYWKI STEINBERG DO PROBÓWEK C2, C3, C4 i C5

16 - PRZENIEŚĆ 10 ml ŚCIEKÓW Z PROBÓWKI C1 DO PROBÓWKI C2 - ZAMKNĄĆ I WSTRZĄSNĄĆ PROBÓWKĘ TESTOWĄ

17 - PRZENIEŚĆ 10 ml BADANEGO ROZCIEŃCZENIA Z PROBÓWKI C2 DO C3 - ZAMKNĄĆ I WSTRZĄSNĄĆ PROBÓWKĘ TESTOWĄ - POWTARZAĆ TĄ PROCEDURĘ DLA PRZYGOTOWANIA NASTĘPNYCH ROZCIEŃCZEŃ

18 NAPEŁNIANIE PŁYTKI TESTOWEJ PRZYGOTOWANYMI TOKSYCZNYMI ROZCIEŃCZENIAMI PRZENIEŚĆ 1 ml POŻYWKI STEINBERG DO 8 DOŁKÓW W RZĘDZIE A (=Rząd Kontroli) A B C D E F

19 - PRZENIEŚĆ 1 ml ROZCIEŃCZENIA Z PROBÓWKIO C5 DO 8 DOŁKÓW W RZĘDZIE B - POWTARZAĆ TĄ PROCEDURĘ Z PROBÓWKAMI C4, C3, C2 i C1 DLA 8 DOŁKÓW W RZĘDACH C, D, E i F ODPOWIEDNIO A B C D E F

20 PRZENOSZENIE KIEŁKUJĄCYCH TURIONÓW DO DOŁKÓW TESTOWYCH

21 pierwsze listki małe korzenie KIEŁKOWANIE TURIONÓW MOŻE BYĆ ŁATWO ROZPOZNANE POPRZEZ OBECNOŚĆ MAŁYCH PIERWSZYCH LISTKÓW (z jednej strony turionu) Z MAŁYMI KORZENIAMI

A B C D E F 22 - PRZY UŻYCIU SZPATUŁKI PRZENIEŚĆ JEDEN KIEŁKUJĄCY TURION DO KAŻDEGO DOŁKA W RZĘDZIE KONTROLI (= RZĄD A) - POWTARZAĆ TĄ PROCEDURĘ Z KOLEJNYMI RZĘDAMI, ZACZYNAJĄC OD RZĘDU B DO F UWAGA: Przenoszenie musi być przypadkowe, tzn. nie należy zaczynać od turionów z największymi pierwszymi listkami!

23 WYKONYWANIE ZDJĘCIA PŁYTKI WIELODOŁKOWEJ NA POCZĄTKU TESTU WYKONAĆ ZDJĘCIE PŁYTKI WIELODOŁKOWEJ Z KIEŁKUJĄCYMI TURIONAMI NA POCZĄTKU 3-DNIOWEGO TESTU (= t0h), I PRZENIEŚĆ ZDJĘCIE DO KOMPUTERA UWAGA: Aby uzyskać zdjęcie z możliwie najlepszym kontrastem pomiędzy turionami i ich pierwszymi listkami zaleca się umieszczenie płytki na podświetlanym stoliku

24 PŁYTKA WIELODOŁKOWA Z KIEŁKUJĄCYMI TURIONAMI I ICH PIERWSZYMI LISTKAMI W CZASIE t0h

25 A INKUNACJA PŁYTKI TESTOWEJ - NAŁOZYĆ POKRYWKĘ NA PŁYTKĘ - INKUBOWAĆ PŁYTKĘ PRZEZ 72h W 25 C PRZY CIĄGŁYM GÓRNYM OŚWIETLENIU O NATĘŻENIU 6000 LUX A : inkubator z wbudowanym oświetleniem B B : inkubator w zestawem oświetlającym LED

26 WYKONANIE ZDJĘCIA PŁYTKI WIELODOŁKOWEJ NA KOŃCU TESTU PONOWNIE WYKONAĆ ZDJĘCIE PŁYTKI WIELODOŁKOWEJ Z LISTKAMI, NA KOŃCU 3-DNIOWEGO TESTU (= t72h) I PRZENIEŚĆ ZDJĘCIE DO KOMPUTERA UWAGA: Aby uzyskać zdjęcie z możliwie najlepszym kontrastem pomiędzy turionami i ich pierwszymi listkami zaleca się umieszczenie płytki na podświetlanym stoliku

27 PŁYTKA WIELODOŁKOWA Z LISTKAMI, ZDJĘCIE WYKONANE PO 3 DNIACH INKUBACJI (t72h)

28 POMIAR POWIERZCHNI PIERWSZYCH LISTKÓW POMIAR POWIERZCHNI MAŁYCH LISTKÓW KIEŁKUKĄCYCH TURIONÓW JEST DOKONYWANY W KAŻDYM DOŁKU TESTOWYM NA POCZĄTKU TESTU (t0h) I DRUGI RAZ NA KOŃCU 3-DNIOWEGO TESTU (t72h) POMIAR POWIERZCHNI JEST OPARTY NA DWÓCH WYKONANYCH ZDJĘCIACH PŁYTKI PRZY UŻYCIU ODPOWIEDNIEGO PROGRAMU DO ANALIZY OBRAZU (np. IMAGE J ). UWAGA: Tylko powierzchnia pierwszych listków (= największy listek każdego turionu) powinna być mierzona!

29 OPRACOWANIE WYNIKÓW WZROST RZĘSY JEST OBLICZNY PRZEZ ODJĘCIE POCZĄTKOWEGO ROZMIARU PIERWSZYCH LISTKÓW (powierzchnia t0h) OD KOŃCOWEGO ROZMIARU TYCH LISTKÓW (powierzchnia t72h), W KONTROLI I W KOLEJNYCH TOKSYCZNYCH ROZCIEŃCZENIACH BADANEJ PRÓBKI PROCENTOWE ZAHAMOWANIE WZROSTU RZĘSY W ODNIESIENIU DO TOKSYCZNYCH STĘŻEŃ MOŻE BYĆ OKREŚLONE PRZEZ OCENĘ 72h EC50. Oprogramowanie do opracowania wyników zostało opracowane przez MicroBioTests Inc. i jest dostępne na życzenie Użytkowników pakietów Toxkit.