Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Podobne dokumenty
Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ekstrakcja: WYZNACZANIE WSPÄŁCZYNNIKA PODZIAŁU Pentan-1-ol/WODA DLA KWASU OCTOWEGO

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ekstrakcja: WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PODZIAŁU Pentan-1-ol/WODA DLA KWASU OCTOWEGO

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 2

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Rys. 1. Chromatogram i sposób pomiaru podstawowych wielkości chromatograficznych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 4

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ROZDZIELENIE OD PODSTAW czyli wszystko (?) O KOLUMNIE CHROMATOGRAFICZNEJ

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II. OznaczanieBTEX i n-alkanów w wodzie zanieczyszczonej benzyną metodą GC/FID oraz GC/MS 1

WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PODZIAŁU OKTANOL/WODA SUBSTANCJI TOKSYCZNYCH TECHNIKĄ HPLC

Wyznaczanie współczynnika logp i Kd jako podstawowych parametrów fizykochemicznych służących do oceny losu środowiskowego substancji chemicznych

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

BADANIA WŁAŚCIWOŚCI LIPOFILOWYCH ZWIĄZKÓW PRZECIWUTLENIAJĄCYCH

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

Modelowanie w ochronie środowiska

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

BADANIE ZAWARTOŚCI WIELOPIERŚCIENIOWYCH WĘGLOWODORÓW AROMATYCZNYCH (OZNACZANIE ANTRACENU W PRÓBKACH GLEBY).

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

PORÓWNANIE FAZ STACJONARNYCH STOSOWANYCH W HPLC

Ćwiczenie 1 Analiza jakościowa w chromatografii gazowej Wstęp

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

Ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 5

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Teoria błędów. Wszystkie wartości wielkości fizycznych obarczone są pewnym błędem.

Kolumnowa Chromatografia Cieczowa I. 1. Czym różni się (z punktu widzenia użytkownika) chromatografia gazowa od chromatografii cieczowej?

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

CHROMATOGRAFIA W UKŁADACH FAZ ODWRÓCONYCH RP-HPLC

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

WYZNACZANIE ROZMIARÓW

Ćwiczenie 4 Zastosowanie metody wzorca wewnętrznego do analizy ilościowej techniką GC-FID

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Techniki immunochemiczne. opierają się na specyficznych oddziaływaniach między antygenami a przeciwciałami

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

WYMAGANIA EDUKACYJNE

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Ślesin, 29 maja 2019 XXV Sympozjum Analityka od podstaw

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Jakościowa i ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką chromatografii gazowej

MODELOWANIE W OCHRONIE

SZCZEGÓŁOWE KRYTERIA OCENIANIA Z CHEMII DLA KLASY II GIMNAZJUM Nauczyciel Katarzyna Kurczab

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

Pytania z Wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Roztwory elekreolitów

KINETYKA INWERSJI SACHAROZY

3. Jak zmienią się właściwości żelu krzemionkowego jako fazy stacjonarnej, jeśli zwiążemy go chemicznie z grupą n-oktadecylodimetylosililową?

Chemia klasa VII Wymagania edukacyjne na poszczególne oceny Semestr II

SPECJALNE TECHNIKI ROZDZIELANIA W BIOTECHNOLOGII. Laboratorium nr1 CHROMATOGRAFIA ODDZIAŁYWAŃ HYDROFOBOWYCH

RP WPROWADZENIE. M. Kamiński PG WCh Gdańsk Układy faz odwróconych RP-HPLC, RP-TLC gdy:

Walidacja metod analitycznych Raport z walidacji

Spis treści. Wstęp... 9

chemia wykład 3 Przemiany fazowe

2.1. Charakterystyka badanego sorbentu oraz ekstrahentów

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Wysokosprawna chromatografia cieczowa dobór warunków separacji wybranych związków

NH 2 CH 3. Numer CAS:

Pytania z Chromatografii Cieczowej

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

Ćwiczenie nr 6. Przygotowanie próbki do analizy: Ekstrakcja jednokrotna i wielokrotna. Wysalanie.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 8. Argentometryczne oznaczanie chlorków metodą Fajansa

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Kontrola produktu leczniczego. Piotr Podsadni

PROCESY JEDNOSTKOWE W TECHNOLOGIACH ŚRODOWISKOWYCH WYMIANA JONOWA

Adsorpcyjne oczyszczanie gazów z zanieczyszczeń związkami organicznymi

2-(Dietyloamino)etanol

ADSORPCJA PARACETAMOLU NA WĘGLU AKTYWNYM

ĆWICZENIE 3: CHROMATOGRAFIA PLANARNA

Kryteria oceniania z chemii kl VII

Analiza i monitoring środowiska

Plan dydaktyczny z chemii klasa: 2TRA 1 godzina tygodniowo- zakres podstawowy. Dział Zakres treści

Trójkąt Gibbsa Równowagi układów z ograniczoną mieszalnością składników Prawo podziału Nernsta

stożek tulejka płaskie stożkowe kuliste Nominalna długość powierzchni szlifowanej 14/ / /32 29.

OZNACZANIE WŁAŚCIWOŚCI BUFOROWYCH WÓD

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

Prof. dr hab. inż. M. Kamiński 2006/7 Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny PG. Ćwiczenie: LC / GC. Instrukcja ogólna

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Materiały polimerowe laboratorium

RÓWNOWAŻNOŚĆ METOD BADAWCZYCH

Czy równowaga jest procesem korzystnym? dr hab. prof. nadzw. Małgorzata Jóźwiak

Inżynieria Środowiska

Fenol, o-, m- i p-krezol metoda oznaczania

GraŜyna Chwatko Zakład Chemii Środowiska

METODYKA OZNACZANIA BARWNIKÓW ANTOCYJANOWYCH

Podstawowe prawa opisujące właściwości gazów zostały wyprowadzone dla gazu modelowego, nazywanego gazem doskonałym (idealnym).

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI PRZEZ DESTYLACJĘ I EKSTRAKCJĘ

CZYNNIKI WPŁYWAJĄCE NA SZYBKOŚĆ REAKCJI CHEMICZNYCH. ILOŚCIOWE ZBADANIE SZYBKOŚCI ROZPADU NADTLENKU WODORU.

Obliczenia chemiczne. Zakład Chemii Medycznej Pomorski Uniwersytet Medyczny

Transkrypt:

UNIWERSYTET GDAŃSKI WYDZIAŁ CHEMII Pracownia studencka Zakład Analizy Środowiska Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych Ćwiczenie nr 1 OKREŚLANIE WARTOŚCI WSPÓŁCZYNNIKA PODZIAŁU OKTANOL-WODA METODAMI KLASYCZNYMI: NIEPEWNOŚCI I ICH ŹRÓDŁA Chemia zanieczyszczeń środowiska Gdańsk, 2014

1. Chemia zanieczyszczeń środowiska wyznaczanie wartości log P metodami klasycznymi 2 1. CZĘŚĆ TEORETYCZNA Współczynnik podziału n-oktanol woda (P lub K OW ) jest jednym z najczęściej stosowanych parametrów fizykochemicznych, służących do oceny potencjalnych losów środowiskowych substancji zanieczyszczających. Definiowany jest jako równowagowy stosunek stężeń substancji w układzie dwufazowym, który w przypadku jednej substancji jest stały dla danego układu rozpuszczalników, w określonej temperaturze oraz przy stałym ciśnieniu: P= C okt C w (1) gdzie: C okt stężenie molowe w oktanolu, C w stężenie molowe w wodzie. Przyjęto, że układ n-oktanol woda najlepiej odwzorowuje układy dwufazowe w środowisku naturalnym (w tym układy biologiczne). Rozpuszczalniki te po zmieszaniu tworzą dwie oddzielne fazy, przy czym ze względu na wzajemną częściową rozpuszczalność jest to układ zawierający oktanol nasycony wodą (ok. 2,3 mol/l) oraz wodę nasyconą oktanolem (ok. 4,5 x10-3 mol/l). Współczynnik taki mierzy się w 25 C, przy stężeniu substancji badanej nie wyższym niż 0,01 mol/l. W takim układzie, jeżeli większa ilość cząsteczek badanego związku chemicznego znajdzie się w fazie oktanolowej, to mamy do czynienia ze związkiem lipofilowym (hydrofobowym). Jeżeli zaś większość pozostanie w fazie wodnej, będzie to związek lipofobowy (hydrofilowy). W fazie oktanolowej, dominującymi staną się oddziaływania dyspersyjne pomiędzy hydrofobowymi fragmentami cząsteczki rozpuszczonego związku a łańcuchem alkilowym n- oktanolu, podczas gdy nieco mniejsze znaczenie odgrywać tu będą oddziaływania dipol-dipol czy wiązania wodorowe z grupą hydroksylową alkoholu. Wynika stąd jednak, iż n-oktanol posiada zarówno właściwości lipo- jak i hydrofilowe, a cechę taką nazywa się amfifilowością. W fazie wodnej z kolei, występować będą niemal wyłącznie wiązania wodorowe oraz oddziaływania dipoldipol pomiędzy polarnymi fragmentami cząsteczki związku rozpuszczonego a wodą. Pomimo to w przypadku określania współczynnika podziału metodami klasycznymi zdarza się, że zamiast n- oktanolu stosuje się inny rozpuszczalnik organiczny, bardziej odpowiedni w stosowanej metodzie oznaczeń końcowych (np. chromatografii gazowej). Wartość współczynnika podziału zależy zarówno od budowy chemicznej cząsteczki rozpuszczonego związku (liczba i rodzaj różnych grup funkcyjnych, udział miejsc nienasyconych, fragmentów alkilowych, wartość momentu dipolowego i in.) jak i, w dużej mierze, od jej wielkości. W trakcie mieszania obu rozpuszczalników (proces spontaniczny) całkowita entropia takiego układu gwałtownie wzrasta, jednak jej uprzywilejowany wzrost będzie ograniczany spadkiem

1. Chemia zanieczyszczeń środowiska wyznaczanie wartości log P metodami klasycznymi 3 entropii w fazie wodnej, związanym ze stopniowym uporządkowywaniem cząsteczek wody w otoczce hydratacyjnej solwatowanego związku. Ponieważ większe rozmiary cząsteczki wymagać będą coraz większej wnęki w rozpuszczalniku (większej otoczki hydratacyjnej) powodować to będzie nieuprzywilejowany spadek entropii całego układu. W takiej sytuacji korzystniejsze termodynamicznie staje się obniżenie rozpuszczalności cząsteczek o dużych rozmiarach w fazie wodnej, co wpływa na zwiększenie współczynnika podziału. Stąd też nawet stosunkowo duże cząsteczki, ale zawierające w swojej strukturze układy nienasycone, rozgałęzione i in., ułatwiające zmniejszenie rozmiaru molekularnego, charakteryzują się dużo niższymi współczynnikami podziału od swoich analogów pozbawionych tych cech. Wartość współczynnika podziału zależy także od obecności w cząsteczce ugrupowań kwaśnych bądź zasadowych. Mając do czynienia z kwasami bądź zasadami organicznymi, kolejnym bardzo ważnym czynnikiem wpływającym na podział staje się również wartość ph układu, która determinuje stopień zjonizowania substancji rozpuszczonej. W przypadku kwasów i zasad podziałowi pomiędzy fazy ulegają nie tylko związki neutralne, ale również formy zjonizowane oraz formy zasocjowane tych związków. Współczynnik podziału oktanol woda zmierzony dla typowych zanieczyszczeń środowiska mieści się w bardzo szerokim zakresie od 0,01 dla związków o wysokiej polarności do 10 10 dla substancji wysoce hydrofobowych. Z tego względu, współczynnik podziału przedstawia się zwykle w formie logarytmicznej: log P =log C okt log C w (2) Znaczenie współczynnika podziału n-oktanol woda w w przewidywaniu losów środowiskowych zanieczyszczeń obejmuje między innymi: szacowanie trwałości substancji w środowisku oraz jej tendencji do gromadzenia się w tkankach tłuszczowych organizmów (bioakumulacja) oraz przenoszenia wzdłuż łańcuchów pokarmowych (biomagnifikacja) określanie potencjalnego zagrożenia dla organizmów wodnych i lądowych ocenę możliwości poboru związku przez rośliny lądowe poprzez liście i system korzeniowy, a także możliwość transportu w organizmie roślinnym szacowanie możliwości gromadzenia się w określonych komponentach środowiska określanie potencjału do adsorpcji związku w osadach dennych i glebach o wysokiej zawartości węgla organicznego (materii organicznej) dobór warunków ekstrakcji związku z matryc naturalnych, oczyszczania ekstraktów oraz

1. Chemia zanieczyszczeń środowiska wyznaczanie wartości log P metodami klasycznymi 4 wybór optymalnych technik analizy końcowej Metody wyznaczania wartości współczynnika podziału można podzielić na trzy zasadnicze grupy, różniące się zastosowanymi technikami badawczymi: metody klasyczne, polegające na wytrząsaniu lub mieszaniu niewielkiej ilości związku w układzie dwufazowym n-oktanol woda metody chromatograficzne, polegające na wyznaczaniu wartości współczynnika podziału na podstawie parametrów retencyjnych badanej substancji w wysokosprawnej chromatografii cieczowej w odwróconym układzie faz (RP-HPLC); w tym przypadku, zakłada się, że niepolarna faza stacjonarna (zwykle żel krzemionkowy modyfikowany grupami C 18 ) odpowiada fazie oktanolowej, podczas gdy polarna faza ruchoma (zwykle mieszanina wody z metanolem) jest odpowiednikiem fazy wodnej metody obliczeniowe, zakładające stały wkład poszczególnych fragmentów cząsteczki oraz elementów strukturalnych w wartość współczynnika podziału Wszystkie wyżej wymienione metody nie zapewniają pełnej wiarygodności ani wysokiej powtarzalności uzyskanych wyników. Metody klasyczne są najbardziej narażone na błędy popełniane podczas przeprowadzania eksperymentu. Jednocześnie, ich zastosowanie jest ograniczone do badania substancji, które nie wykazują skrajnie lipofilowego lub hydrofilowego charakteru. Wiąże się to głównie z ograniczeniami większości technik analitycznych, stosowanych do określania stężenia związku w fazie wodnej lub oktanolowej. Dla związków o bardzo wysokich lub bardzo niskich wartościach współczynnika podziału stężenie w jednej z faz może znajdować się poniżej granicy oznaczalności większości dostępnych metod. Metody chromatograficzne najlepiej sprawdzają się w przypadku analizy szeregu substancji o stosunkowo zbliżonych właściwościach. Ograniczenia techniczne techniki HPLC w odwróconym układzie faz sprawiają, że nie jest możliwe zastosowanie czystej wody jako fazy ruchomej. Stąd, wartość współczynnika podziału wyznaczana jest w sposób pośredni, poprzez ekstrapolację wyników uzyskanych dla faz ruchomych o różnej zawartości wody. Metody obliczeniowe z kolei opierają się na różnych modelach teoretycznych, które nie zawsze będą charakteryzować się wysoką uniwersalnością. Szczególnie utrudnione będzie ich stosowanie w przypadku substancji o charakterze kwasów lub zasad, gdzie pod uwagę musi być brana stała dysocjacji związku. Także zjawisko asocjacji cząsteczek substancji w badanym układzie dwufazowym jest trudne do uwzględnienia w modelach teoretycznych. Porównanie wartości współczynnika podziału n-oktanol woda publikowanych dla pestycydu DDT w latach 1970-2000 jest przedstawione na Rysunku 1, zaś rozrzut wartości log P uzyskanych dla tej substancji różnymi

1. Chemia zanieczyszczeń środowiska wyznaczanie wartości log P metodami klasycznymi 5 metodami na Rysunku 2. Celem ćwiczenia jest porównanie wartości log P, uzyskiwanych przy zastosowaniu dwóch klasycznych metod wyznaczania tego parametru (wytrząsania oraz mieszania). Wartości będą porównywane przy użyciu prostych testów statystycznych, służących do określania istotności różnic pomiędzy wartościami średnimi. Jednocześnie, porównana zostanie precyzja oznaczeń obydwiema metodami, której miarą będzie względne odchylenie standardowe (RSD) uzyskanych wartości średnich. Jako substancja modelowa zastosowana zostanie nikotyna, ze względu na umiarkowaną wartość współczynnika podziału przy odczynie warstwy wodnej zbliżonym do obojętnego. Jako technika oznaczeń końcowych użyta będzie chromatografia gazowa. Z tego względu, fazę organiczną stanowić będzie nie n-oktanol, a dichlorometan, który jest bardziej odpowiednim rozpuszczalnikiem w przypadku analiz wykonywanych na względnie niepolarnych fazach stacjonarnych, stosowanych w tej technice. Rysunek 1. Wartości współczynnika podziału n-oktanol woda, wyznaczanych dla DDT w latach 1970-2000 [5].

1. Chemia zanieczyszczeń środowiska wyznaczanie wartości log P metodami klasycznymi 6 Rysunek 2. Rozrzut wartości współczynnika podziału n-oktanol woda dla DDT, wyznaczanych za pomocą metod klasycznych, chromatograficznych oraz obliczeniowych [5]. 2. WYKONANIE ĆWICZENIA UWAGA! Nikotyna jest substancją silnie toksyczną i dobrze wchłania się przez skórę. Podczas wykonywania ćwiczenia należy zachować ostrożność oraz bezwzględnie stosować rękawiczki! 2.1. Wyznaczanie log P nikotyny poprzez wytrząsanie Odmierzyć cztery próbki po 15 ml roztworu wodnego nikotyny. Przenieść próbki do rozdzielaczy o pojemności 50 ml. Dodać do wszystkich próbek po 15 ml dichlorometanu, zamknąć rozdzielacze korkiem i energicznie wytrząsać przez 10 minut. Po rozdzieleniu się warstw, warstwę organiczną przesączyć przez warstwę bezwodnego siarczanu (VI) sodu do kolb okrągłodennych o pojemności 50 ml. Do ekstraktów dodać wzorzec wewnętrzny (4,4'-dipirydyl, ilość według wskazań prowadzącego). Odparowywać dichlorometan na wyparce rotacyjnej do objętości około 1 ml. Następnie ekstrakt przenieść ilościowo do butelek 2 ml. Uzyskane ekstrakty pozostawić do analiz.

1. Chemia zanieczyszczeń środowiska wyznaczanie wartości log P metodami klasycznymi 7 2.2. Wyznaczanie log P nikotyny poprzez mieszanie Odmierzyć cztery próbki po 15 ml roztworu wodnego nikotyny. Przenieść próbki do kolb stożkowych o pojemności 50 ml. Dodać do wszystkich próbek po 15 ml dichlorometanu, umieścić na mieszadle magnetycznym i mieszać przez 10 minut. Następnie, próbki delikatnie przenieść ilościowo do rozdzielaczy o pojemności 50 ml. Po rozdzieleniu się warstw, warstwę organiczną przesączyć przez warstwę bezwodnego siarczanu (VI) sodu do kolb okrągłodennych o pojemności 50 ml. Do ekstraktów dodać wzorzec wewnętrzny (4,4'-dipirydyl, ilość według wskazań prowadzącego). Odparowywać dichlorometan na wyparce rotacyjnej do objętości około 1 ml. Następnie ekstrakt przenieść ilościowo do butelek 2 ml. Uzyskane ekstrakty pozostawić do analiz 2.3. Analiza chromatograficzna uzyskanych próbek Analizę GC każdej próbki należy wykonać w następujących warunkach: kolumna DB-5 lub odpowiednik, długość 30 m, średnica wewnętrzna 0,25 mm, grubość filmu fazy stacjonarnej 0,25 μm gaz nośny argon, przepływ 1 ml/min temperatura dozownika i detektora FID 300 C temperatura kolumny początkowa: 100 C, narost temperatury 10 C/min, temperatura końcowa 280 C nastrzyk na kolumnę o objętości 1 μl Masę nikotyny w każdej z próbek należy określić na podstawie stosunku pól powierzchni nikotyny i wzorca wewnętrznego zgodnie ze wzorem: m N = f A N m IS A IS gdzie: m N masa nikotyny, A IS powierzchnia sygnału wzorca wewnętrznego, m IS masa wzorca wewnętrznego, A N powierzchnia sygnału nikotyny. Współczynnik odpowiedzi f należy uznać za równy 1. Masę nikotyny w warstwie wodnej obliczamy z różnicy pomiędzy początkową masą nikotyny, wziętej do eksperymentu, oraz wyznaczonej masy w fazie organicznej.

1. Chemia zanieczyszczeń środowiska wyznaczanie wartości log P metodami klasycznymi 8 3. OPRACOWANIE WYNIKÓW Na podstawie uzyskanych wyników dla każdej próbki osobno obliczyć wartość współczynnika podziału i podać ją w formie logarytmicznej. Dla każdej z metod wyznaczania współczynnika, należy uśrednić uzyskane wartości i określić precyzję metody, obliczając względne odchylenie standardowe. Uzyskane wartości średnie dla dwóch metod porównać statystycznie, stosując w tym celu test t-studenta. Obliczenia przedstawić w sprawozdaniu. Porównać uzyskane wartości ze współczynnikiem podziału obliczonym w programie EpiSuite (dostępny na komputerach w pracowni). Przedyskutować ewentualne rozbieżności. Przedstawić krótką dyskusję uzyskanych wyników, ze szczególnym uwzględnieniem różnic pomiędzy wynikami uzyskanymi różnymi metodami oraz precyzji obu metod. 4. SZKŁO I ODCZYNNIKI wodny roztwór nikotyny dichlorometan 250 ml dichlorometan do mycia strzykawek bezwodny siarczan (VI) sodu roztwór 4,4'-dipirydylu w dichlorometanie rozdzielacz 50 ml 4 szt. pipeta miarowa 25 ml 2 szt. lejek mały 4 szt. kolba okrągłodenna 50 ml 4 szt. butelka zakręcana 2 ml 8 szt. mieszadło magnetyczne 4 szt. kolba stożkowa 50 ml 4 szt. sączki strzykawka 10 μl 1 szt. strzykawka 100 μl 1 szt. 5. ZAKRES WYMAGANYCH WIADOMOŚCI Podstawowe informacje na temat współczynnika podziału n-oktanol woda oraz metod jego wyznaczania

1. Chemia zanieczyszczeń środowiska wyznaczanie wartości log P metodami klasycznymi 9 Podstawy chromatografii gazowej (dostępne pod linkiem: http://chemia.ug.edu.pl/sites/default/files/_nodes/strona-chemia/17399/files/slady_gc.pdf Testy statystyczne stosowane do porównania wartości średnich 6. LITERATURA 1. Calvet R., Evaluation of adsorption coefficents and prediction of the mobilities of pesticides in soils, W: Methodoliogical aspects of the study of pesticide behaviour in soil, INRA, Paryż 1989 2. Schwarzenbach R.P., Gschwend P.M., Imboden D.M., Environmental Organic Chemistry, 2nd Ed., Wiley & Sons Inc, 2002 3. Atkins P.W., Chemia fizyczna, PWN, Warszawa 2001 4. Pigoń K., Ruziewicz Z., Chemia fizyczna, PWN, Warszawa 1986 5. Pontolillo and Eganhouse (2001), U.S. Geological Survey, Water-Resources Investigations Report 01-4201