LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

Podobne dokumenty
Chemia Organiczna Syntezy

Zaawansowane oczyszczanie

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI PRZEZ DESTYLACJĘ I EKSTRAKCJĘ

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH: SULFONOWANIE ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

Synteza eteru allilowo-cykloheksylowego w reakcji alkilowania cykloheksanolu bromkiem allilu w warunkach PTC.

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zaawansowane oczyszczanie

1 ekwiwalent 4 ekwiwalenty 5 ekwiwalentów

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 2

ODNAWIALNE ŹRÓDŁA ENERGII I GOSPODARKA ODPADAMI STUDIA STACJONARNE

1 ekwiwalent 0,85 ekwiwalentu 1,5 ekwiwalentu

DESTYLACJA JAKO METODA WYODRĘBNIANIA I OCZYSZCZANIA ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

Katedra Chemii Organicznej. Przemysłowe Syntezy Związków Organicznych Ćwiczenia Laboratoryjne 10 h (2 x5h) Dr hab.

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

KWAS 1,2-DIBROMO-2-FENYLOPROPIONOWY

stożek tulejka płaskie stożkowe kuliste Nominalna długość powierzchni szlifowanej 14/ / /32 29.

1 ekwiwalent 1,45 ekwiwalenta 0,6 ekwiwalenta

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

[1 a] Acetanilid LISTA PREPARATÓW. Odczynniki: anilina 15 g lodowaty kwas octowy 15 ml pył cynkowy 0.1 g węgiel aktywny 0.2 g

1 ekwiwalent 6 ekwiwalentów 0,62 ekwiwalentu

KRYSTALIZACJA JAKO METODA OCZYSZCZANIA I ROZDZIELANIA SUBSTANCJI STAŁYCH

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

ROZDZIELANIE I OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI. EKSTRAKCJA.

1 ekwiwalent 2 ekwiwalenty 2 krople

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 1

Ćwiczenie 5 Izolacja tłuszczów z surowców naturalnych

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

ĆWICZENIE 5. KOPOLIMERYZACJA STYRENU Z BEZWODNIKIEM MALEINOWYM (polimeryzacja w roztworze)

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

KETAL ETYLENOWY ACETYLOOCTANU ETYLU

Chemia organiczna - opis przedmiotu

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

STRUKTURA A WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE I FIZYCZNE PIERWIASTKÓW I ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Fluorowcowanie część teoretyczna 2. F1 2,4,6-tribromoanilina 4. F2 2,4,6-tribromofenol 6

Fotochromowe kopolimery metakrylanu butylu zawierające pochodne 4-amino-N-(4-metylopirymidyn-2-ilo)benzenosulfonamidu i sposób ich otrzymywania

REGULAMIN BHP PRACOWNI CHEMICZNEJ. POKAZ SZKŁA. TECHNIKA PRACY LABORATORYJNEJ. Wstęp. Regulamin pracowni studenckiej.

Spis treści. Wstęp... 9

CHEMIA SRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

CHEMIA LEKÓW ORGANICZNYCH INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH

WYMAGANIA - DESTYLACJA

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Ćwiczenie 6 Zastosowanie destylacji z parą wodną oraz ekstrakcji ciecz-ciecz do izolacji eugenolu z goździków Wstęp

) Sposób otrzymywania kwasu 2, 4-di-/1, 1-dimetylopropylo/fenoksyoctowego

Terminy zajęć z chemii organicznej dla studentów farmacji I i II rok 2018/2019 semestr zimowy 2018/2019

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

KOLEJNOŚĆ CZYNNOŚCI DO ĆWICZENIA NR 5 (kopolimeryzacja styrenu i bezwodnika maleinowego)

I BIOTECHNOLOGIA. 3-letnie studia stacjonarne I stopnia

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Zadanie: 1 (1pkt) Zadanie: 2 (1 pkt)

XXIV KONKURS CHEMICZNY DLA GIMNAZJALISTÓW ROK SZKOLNY 2016/2017

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

PL B1. POLITECHNIKA POZNAŃSKA, Poznań, PL BUP 24/09. JULIUSZ PERNAK, Poznań, PL OLGA SAMORZEWSKA, Koło, PL MARIUSZ KOT, Wolin, PL

CEL ĆWICZENIA Zapoznanie studentów z chemią 14 grupy pierwiastków układu okresowego

ćwiczenia laboratoryjne rozpoczynają się wg podanego niżej harmonogramu Seminarium Grupy poniedziałkowe D C G

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

Egzamin końcowy Średnia arytmetyczna przedmiotów wchodzących w skład modułu informacje dodatkowe

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

Terminy zajęć z chemii organicznej dla studentów farmacji semestr zimowy 2016/2017

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

Ćwiczenie 1. Ćwiczenie Temat: Podstawowe reakcje nieorganiczne. Obliczenia stechiometryczne.

PROCESY JEDNOSTKOWE W TECHNOLOGIACH ŚRODOWISKOWYCH DESTYLACJA

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

CHEMIA LEKÓW ORGANICZNYCH INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH

PROGRAM ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII (SEMESTR LETNI) OCHRONA ŚRODOWISKA

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

ROLNICTWO. Ćwiczenie 1

1 ekwiwalent 3 ekwiwalenty 2 ekwiwalenty

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

PREPARATYKA NIEORGANICZNA. Przykład 1 Ile kilogramów siarczanu(vi) żelaza (II) można otrzymać z 336 kg metalicznego żelaza?

Kierunek i poziom studiów: Biotechnologia, pierwszy Sylabus modułu: Chemia ogólna (1BT_05)

UKŁADY WIELOFAZOWE ROZDZIELANIE MIESZANINY CHLORKÓW SODU I POTASU

Laboratorium Podstaw Biofizyki

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Laboratorium. Technologia i Analiza Aromatów Spożywczych

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego

Transkrypt:

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ Rok studiów: II CC-DI semestr III Liczba godzin: 15 (5 spotkań 3h co 2 tygodnie, zajęcia rozpoczynają się w 3 tygodniu semestru) PROGRAM ĆWICZEŃ Ćwiczenie nr 1 Ćwiczenie wprowadzające 1. Cel i zakres ćwiczeń. 2. Regulamin laboratorium. 3. Przepisy BHP i przeciwpożarowe. 4. Warunki zaliczenia laboratorium. Rozdzielanie mieszanin na drodze destylacji destylacja frakcjonowana 1. Aparatura ogólnie stosowana w laboratorium preparatyki organicznej. 2. Istota procesu destylacji, wykres fazowy dla układu ciecz-para. 3. Roztwory doskonałe i azeotropy. 4. Rodzaje destylacji. 5. Czynniki wpływające na efektywność rozdziału przez destylację. 6. Aparatura do destylacji prostej i frakcjonowanej. Destylacja frakcjonowana mieszaniny heksanu i heptanu Do kolby okrągłodennej o pojemności 100 cm 3 wlewa się 20 cm 3 heksanu i 30 cm 3 heptanu, a następnie wrzuca parę kawałków porcelanki. Kolbę umieszcza się w łapie, łączy z kolumną frakcjonującą, chłodnicą Liebiga i ogrzewa za pomocą elektrycznej czaszy, tak aby z chłodnicy w ciągu 2-3 sekund spływała 1 kropla destylatu. Destylat zbiera się do probówek (po 2 cm 3 ). Należy zanotować początkową temperaturę wrzenia i temperaturę wrzenia po odebraniu każdej porcji destylatu. Następnie sporządza się wykres temperatury wrzenia w funkcji objętości destylatu i na tej podstawie łączy destylaty o zbliżonej temperaturze wrzenia.

Ćwiczenie nr 2 Określanie czystości składników po destylacji mieszaniny heksan heptan: oznaczanie temperatury wrzenia i współczynnika załamania światła 1. Oznaczanie temperatury wrzenia w skali mikro i makro. 2. Oznaczanie współczynnika załamania światła. 1. Oznaczanie temperatury wrzenia w skali makro i mikro czystego heksanu i heptanu oraz substancji rozdestylowanych z mieszaniny z ćw. nr 1. 2. Oznaczanie współczynnika załamania światła czystego heksanu i heptanu oraz substancji rozdestylowanych z mieszaniny z ćw. nr 1. Ćwiczenie nr 3 Wyodrębnianie i oczyszczanie związków przez krystalizację 1. Istota krystalizacji. 2. Przebieg krystalizacji. 3. Zasady doboru rozpuszczalnika do krystalizacji. 4. Technika krystalizacji. 5. Technika sączenia. 1. Dobór rozpuszczalnika do krystalizacji. 2. Krystalizacja acetanilidu lub kwasu benzoesowego z wody. Do kolby stożkowej o pojemności 250 cm 3 odważa się 4,0 g acetanilidu lub kwasu benzoesowego, dodaje odpowiednią ilość wody destylowanej (obliczoną na podstawie rozpuszczalności związku w wodzie) i ogrzewa w temperaturze wrzenia tak długo, aż związek ulegnie rozpuszczeniu. Jeżeli roztwór nie jest bezbarwny, to nieco się go ochładza, następnie dodaje ok. 0,1 g węgla aktywnego i ponownie ogrzewa przez kilka minut. Gorący roztwór sączy się przez sączek karbowany umieszczony w lejku z krótka nóżką (lejek powinien być uprzednio ogrzany w suszarce). Przesącz zbiera się w kolbie stożkowej o pojemności 250 cm 3, chłodzi szybko obracając kolbę ruchem wirowym. Aby osad wydzielił się całkowicie, kolbę pozostawia się na ok. 30 minut w wodzie z lodem. Wytrącone kryształy sączy się pod zmniejszonym ciśnieniem na lejku Büchnera, następnie pozostawia na szalce Petriego do wysuszenia.

Ćwiczenie nr 4 Określanie czystości związków po krystalizacji oznaczanie temperatury topnienia, chromatografia cienkowarstwowa (TLC) 1. Temperatura topnienia a czystość substancji. 2. Sposoby i aparaty do oznaczania temperatury topnienia. 3. Chromatografia jako metoda rozdzielania mieszanin. 4. Istota chromatografii rozdzielczej i adsorpcyjnej. 5. Technika chromatografii cienkowarstwowej. 1. Wykonanie chromatografii TLC związku po krystalizacji z ćw. nr 3. 2. Oznaczanie temperatury topnienia związku po krystalizacji z ćw. nr 3. Ćwiczenie nr 5 Rozdzielanie mieszanin i wyodrębnianie związków na drodze ekstrakcji 1. Istota ekstrakcji, współczynnik podziału. 2. Kryteria wyboru rozpuszczalnika do ekstrakcji. 3. Technika ekstrakcji. 4. Środki suszące. 5. Odparowanie rozpuszczalnika. Rozdzielanie mieszaniny anizolu z fenolem Do rozdzielacza o pojemności 100 cm 3 wprowadza się 1 cm 3 mieszaniny anizolu i fenolu oraz 50 cm 3 eteru. Roztwór eterowy wytrząsa się dwukrotnie z 10 cm 3 0,5 molowego roztworu NaOH (należy pamiętać o wyrównywaniu ciśnienia w rozdzielaczu!), zlewając za każdym razem dolną warstwę do kolby stożkowej o pojemności 100 cm 3. Następnie warstwę eterową przemywa się 10 cm 3 wody i łączy dolną warstwę z poprzednimi ekstraktami ( frakcja fenolowa ). Roztwór eterowy wylewa się górą rozdzielacza do kolby stożkowej o pojemności 100 cm 3, rozdzielacz przemywa kilkoma cm 3 eteru i eter ten również dodaje się do kolby. Do uzyskanej frakcji obojętnej (anizol) wsypuje się 1 łyżeczkę MgSO 4 i odstawia na ok. 15 minut, pamiętając o przemieszaniu co jakiś czas zawartości kolby. Wodną frakcję fenolową wlewa się do rozdzielacza, a kolbę przemywa kilkoma cm 3 wody. Do roztworu w rozdzielaczu dodaje się 2-4 cm 3 6 molowego HCl, tak aby uzyskać odczyn

kwaśny (odczyn sprawdza się papierkiem wskaźnikowym), a następnie wytrząsa trzykrotnie z 10 cm 3 eteru (warstwę wodną zlewa się do kolbki, a po wylaniu górą rozdzielacza warstwy eterowej do suchej kolby stożkowej o pojemności 100 cm 3, ponownie umieszcza się warstwę wodną w rozdzielaczu). Połączone ekstrakty eterowe przemywa się 3-4 cm 3 wody i suszy MgSO 4 przez ok. 15 minut. Po wysuszeniu, z obu frakcji odsącza się środek suszący, zbierając przesącz do okrągłodennych kolb o pojemności 100 cm 3, a następnie odparowuje się eter w wyparce próżniowej. WYKAZ LITERATURY LITERATURA PODSTAWOWA: 1. A. Vogel, Preparatyka organiczna, WNT, Warszawa 1984. 2. J. A. Moore, D. L. Dalrymple, Ćwiczenia z chemii organicznej, PWN, Warszawa, 1974. 3. L. Achremowicz, M. Soroka, Laboratorium chemii organicznej, Skrypt Politechniki Wrocławskiej, Wrocław 1980. LITERATURA UZUPEŁNIAJĄCA: 1. Praca zbiorowa pod redakcją J. T. Wróbla, Preparatyka i elementy syntezy organicznej, PWN, Warszawa 1983. 2. Tłumaczenie zbiorowe z języka niemieckiego pod redakcją B. Bochwica, Preparatyka organiczna, PWN, Warszawa 1975.

WARUNKI ZALICZENIA LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ Warunkiem zaliczenia laboratorium jest uzyskanie pozytywnej oceny z wszystkich ćwiczeń objętych harmonogramem. Ogólna ocena z danego ćwiczenia jest wystawiana na podstawie oceny z kolokwium, prawidłowo wykonanego doświadczenia i poprawnie sporządzonego sprawozdania (sprawozdanie sporządza się na papierze wg załączonego wzoru i przechowuje w teczce). Oceny dokonuje prowadzący zajęcia na bieżąco. Obowiązuje obecność na wszystkich ćwiczeniach laboratoryjnych zgodnie z harmonogramem zajęć. W przypadku udokumentowanej, usprawiedliwionej nieobecności istnieje możliwość odrobienia zaległości w dodatkowym terminie wskazanym przez prowadzącego. WZÓR SPRAWOZDANIA Prawidłowo sporządzona notatka powinna zawierać: 1. Ogólne dane: datę wykonania oraz zaliczenia doświadczenia, tytuł ćwiczenia i ocenę, ujęte w tabelkę: Nr ćwiczenia: Tytuł ćwiczenia: Data wykonania: Data zaliczenia: Ocena: K: W: Ocena średnia: Podpis prowadzącego: S: K kolokwium W wykonanie ćwiczenia S sprawozdanie 2. Przepis literaturowy dla danego doświadczenia. 3. Spis elementów aparatury z rysunkami. 4. Spis odczynników oraz ich krótką charakterystykę toksykologiczną i zagrożenia pożarowe (A. I. Vogel, Preparatyka organiczna). 5. Opis czynności oraz własne spostrzeżenia przy wykonywaniu doświadczenia (w punktach). Punkty od 1 do 4 student opracowuje samodzielnie w domu na podstawie podanej literatury i obowiązany jest opisać je przed przystąpieniem do ćwiczeń; punkt 5 należy opracować w trakcie i po zakończeniu doświadczenia w laboratorium, po czym przedłożyć sprawozdanie do zaliczenia.