3. Jak zmienią się właściwości żelu krzemionkowego jako fazy stacjonarnej, jeśli zwiążemy go chemicznie z grupą n-oktadecylodimetylosililową?

Podobne dokumenty
Chromatografia kolumnowa planarna

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie 1 Analiza jakościowa w chromatografii gazowej Wstęp

Rys. 1. Chromatogram i sposób pomiaru podstawowych wielkości chromatograficznych

ROZDZIELENIE OD PODSTAW czyli wszystko (?) O KOLUMNIE CHROMATOGRAFICZNEJ

Pytania z Wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Kolumnowa Chromatografia Cieczowa I. 1. Czym różni się (z punktu widzenia użytkownika) chromatografia gazowa od chromatografii cieczowej?

Kontrola produktu leczniczego. Piotr Podsadni

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

RP WPROWADZENIE. M. Kamiński PG WCh Gdańsk Układy faz odwróconych RP-HPLC, RP-TLC gdy:

OPTYMALIZACJA EFEKTÓW ROZDZIELANIA W KOLUMNACH KAPILARNYCH DOBÓR PRĘDKOŚCI PRZEPŁYWU GAZU

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

Ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

Techniki immunochemiczne. opierają się na specyficznych oddziaływaniach między antygenami a przeciwciałami

PORÓWNANIE FAZ STACJONARNYCH STOSOWANYCH W HPLC

Pytania z Chromatografii Cieczowej

CHROMATOGRAFIA CHROMATOGRAFIA GAZOWA

Ślesin, 29 maja 2019 XXV Sympozjum Analityka od podstaw

Identyfikacja węglowodorów aromatycznych techniką GC-MS

Prof. dr hab. inż. M. Kamiński 2006/7 Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny PG. Ćwiczenie: LC / GC. Instrukcja ogólna

CHROMATOGRAFIA W UKŁADACH FAZ ODWRÓCONYCH RP-HPLC

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

4A. Chromatografia adsorpcyjna B. Chromatografia podziałowa C. Adsorpcyjne oczyszczanie gazów... 5

Jakościowa i ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką chromatografii gazowej

Metody chromatograficzne w chemii i biotechnologii, wykład 3. Łukasz Berlicki

GraŜyna Chwatko Zakład Chemii Środowiska

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ĆWICZENIE 3: CHROMATOGRAFIA PLANARNA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wysokosprawna chromatografia cieczowa dobór warunków separacji wybranych związków

RP WPROWADZENIE. M. Kamioski PG WCh Gdaosk 2013

5. WYZNACZENIE KRZYWEJ VAN DEEMTER a I WSPÓŁCZYNNIKA ROZDZIELENIA DLA KOLUMNY CHROMATOGRAFICZNEJ

-- w części przypomnienie - Gdańsk 2010

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 5, 4 dodr. Warszawa, 2015.

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

CHROMATOGRAFIA II 18. ANALIZA ILOŚCIOWA METODĄ KALIBRACJI

Flawedo pokroić w paski o szerokości < 2 mm a następnie paski pokroić w drobną kostkę.

4. WYZNACZENIE IZOTERMY ADSORPCJI METODĄ ECP

Ćw. 5 Oznaczanie węglowodorów lekkich w powietrzu atmosferycznym

Teoria do ćwiczeń laboratoryjnych

CHROMATOGRAFIA. Sprawdzono w roku 2014 przez K. Czapińską. Teoria Metody rozdzielcze i proces rozdzielania

PODSTAWY CHROMATOGRAFII GAZOWEJ

OZNACZENIE JAKOŚCIOWE I ILOŚCIOWE w HPLC

Jakościowe i ilościowe oznaczanie alkoholi techniką chromatografii gazowej

Wysokosprawna chromatografia cieczowa instrukcja do ćwiczenia.

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II. OznaczanieBTEX i n-alkanów w wodzie zanieczyszczonej benzyną metodą GC/FID oraz GC/MS 1

Współczesne metody chromatograficzne: Chromatografia cienkowarstwowa

OFERTA TEMATÓW PROJEKTÓW DYPLOMOWYCH (MAGISTERSKICH) do zrealizowania w Katedrze INŻYNIERII CHEMICZNEJ I PROCESOWEJ

CHROMATOGRAFIA. Sprawdzono w roku 2017 przez A. Hałkę-Grysińską. Teoria Metody rozdzielcze i proces rozdzielania

Adsorpcyjne oczyszczanie gazów z zanieczyszczeń związkami organicznymi

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

CHROMATOGRAFIA ADSORPCYJNA I PODZIAŁOWA. 1. Rozdział barwników roślinnych metodą chromatografii adsorpcyjnej (techniką kolumnową)

1.Wstęp. Ćwiczenie nr 9 Zatężanie z wody związków organicznych techniką SPE (solid phase extraction)

8. CHROMATOGRAFIA CIENKOWARSTWOWA

2 k CHROMATOGRAFIA. Teoria Metody rozdzielcze i proces rozdzielania

Fazą ruchomą może być gaz, ciecz lub ciecz w stanie nadkrytycznym, a fazą nieruchomą ciało stałe lub ciecz.

BADANIA WŁAŚCIWOŚCI LIPOFILOWYCH ZWIĄZKÓW PRZECIWUTLENIAJĄCYCH

Chromatografia z eluentem w stanie nadkrytycznym (SFC)

Rozpuszczalniki.

a) Ćwiczenie praktycze: Sublimacja kofeiny z kawy (teofiliny z herbaty i teobrominy z kakao)

Identyfikacja alkoholi techniką chromatografii gazowej

Metody chromatograficzne w chemii i biotechnologii, wykład 6. Łukasz Berlicki

Podstawy szybkiej chromatografii gazowej

BADANIE ZAWARTOŚCI WIELOPIERŚCIENIOWYCH WĘGLOWODORÓW AROMATYCZNYCH (OZNACZANIE ANTRACENU W PRÓBKACH GLEBY).

Chromatografia. Chromatografia po co? Zastosowanie: Optymalizacja eluentu. Chromatografia kolumnowa. oczyszczanie. wydzielanie. analiza jakościowa

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1144

Jolanta Jaroszewska-Manaj 1. i identyfikacji związków organicznych. Jolanta Jaroszewska-Manaj 2

Fenol, o-, m- i p-krezol metoda oznaczania

OD HPLC do UPLC. Prof. dr hab. inż. Agata Kot-Wasik. Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny, Politechnika Gdańska

Metody chromatograficzne (rozdzielcze) w analizie materiału biologicznego (GC, HPLC)

Analityka Zanieczyszczeń Środowiska

UNIWERSYTET GDAŃSKI WYDZIAŁ CHEMII Katedra Analizy Środowiska WYSOKOSPRAWNA CHROMATOGRAFIA CIECZOWA (HPLC)

POTWIERDZANIE TOŻSAMOSCI PRZY ZASTOSOWANIU RÓŻNYCH TECHNIK ANALITYCZNYCH

Noty wyjaśniające do Nomenklatury scalonej Unii Europejskiej (2018/C 7/03)

Oznaczanie herbicydów z grupy triazyn z zastosowaniem techniki HPLC

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

Zakład Chemii Analitycznej

EKSTRAKCJA W ANALITYCE. Anna Leśniewicz

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 896

Chromatografia. Chromatografia po co? Zastosowanie: Podstawowe rodzaje chromatografii. Chromatografia cienkowarstwowa - TLC

HPLC? HPLC cz.1. Analiza chromatograficzna. Klasyfikacja metod chromatograficznych

Analiza GC alkoholi C 1 C 5. Ćwiczenie polega na oznaczeniu składu mieszaniny ciekłych związków, w skład

Zadanie 2. Jakościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

Ćwiczenie nr 3. Analiza tuszu metodą chromatografii cienkowarstwowej oraz spektrofotometrii UV/Vis

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 896

XXIV KONKURS CHEMICZNY DLA GIMNAZJALISTÓW ROK SZKOLNY 2016/2017

Strona 1 z 6. Wydział Chemii Uniwersytetu Jagiellońskiego Podstawy Chemii - Laboratorium Rozdzielanie Substancji - Wprowadzenie

Chemia Analityczna. Chromatografia. Tłumaczyła: inż. Karolina Hierasimczyk

Metody fizykochemiczne w diagnostyce medycznej i chemii leków II: Chromatografia

DESTYLACJA JAKO METODA WYODRĘBNIANIA I OCZYSZCZANIA ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

TECHNIKI SEPARACYJNE ĆWICZENIE. Temat: Problemy identyfikacji lotnych kwasów tłuszczowych przy zastosowaniu układu GC-MS (SCAN, SIM, indeksy retencji)

ZASTOSOWANIE CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ W BIOTECHNOLOGII ŚRODOWISKOWEJ

HPLC. Badanie czystości chlorowodorku propranololu. chlorowodorku propranololu. Badanie uwalniania. z tabletki

Wykład 1. Anna Ptaszek. 5 października Katedra Inżynierii i Aparatury Przemysłu Spożywczego. Chemia fizyczna - wykład 1. Anna Ptaszek 1 / 36

X / \ Y Y Y Z / \ W W ... imię i nazwisko,nazwa szkoły, miasto

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Strona 1 z 6. Wydział Chemii UJ, Chemia medyczna Podstawy Chemii - Laboratorium Rozdzielanie Substancji - Wprowadzenie

ANALITYKA ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA ROK V SEM. IX

Oznaczanie lekkich węglowodorów w powietrzu atmosferycznym

Transkrypt:

1. Chromatogram gazowy, na którym widoczny był sygnał toluenu (t w =110 C), otrzymany został w następujących warunkach chromatograficznych: - kolumna pakowana o wymiarach 48x0,25 cala (podaj długość i średnicę w cm); - kolumna 12 g, które stanowią: ciekła faza stacjonarna (20%) i nośnik (80%)- Chromosorb P 80/100 mesh (co oznacza mesh?); - gęstość chromosorbu P d=2,26 g/cm 3 ; gęstość ciekłej fazy stacjonarnej d=1,03 g/cm 3 ; - temperatura pieca t k =100 C; - temperatura otoczenia t a =25 C; - ciśnienie zewnętrzne p o =1013 hpa (wyraź ciśnienie w atm i mmhg) = na wyjściu z kolumny; - ciśnienie gazu na wlocie do kolumny p i =2026 hpa (wyraź ciśnienie w atm i mmhg); - natężenie przepływu gazu nośnego (mierzone przepływomierzem) F 0 ~ 2,5 cm 3 /min dla kolumn kapilarnych, F 0 ~ 80 cm 3 /min dla kolumn pakowanych (wzrost spowodowany większą objętością kolumny); - szybkość przesuwu papieru v p =2,54 cm/min; odległość retencji l R =19,5 cm, zredukowana odległość retencji l R =18,9 cm; - prężność pary wodnej w temperaturze 25 C 24 mmhg. Oblicz maksymalną ilość parametrów chromatograficznych. 2. Narysuj chromatogram gazowy mieszaniny substancji rozpuszczonych w acetonie: t RB =12 min.; względny czas retencji substancji A względem substancji B 0,8; czas retencji substancji nieoddziałującej z fazą stacjonarną 3 min. 3. Jak zmienią się właściwości żelu krzemionkowego jako fazy stacjonarnej, jeśli zwiążemy go chemicznie z grupą n-oktadecylodimetylosililową? 4. Rozdzielono jedną niepolarną i jedną polarną substancję techniką HPLC w układzie odwróconych faz i zmieniono fazę ruchomą. Zamiast układu metanol:woda 5:5 użyto układu metanol:woda 7:3. Jak to wpłynęło na wartość współczynnika podziału? Jak zmieni się czas retencji analizowanych związków? Odpowiedź uzasadnij. 5. Rozdzielono niepolarne substancje techniką HPLC w układzie faz odwróconych. Następnie zmieniono skład fazy ruchomej i zamiast mieszaniny metanol:woda 9:1 użyto

mieszaniny metanol:woda 7:3. Jak to wpłynęło na wartość współczynnika podziału? Jak zmieni się czas retencji analizowanych związków? Odpowiedź uzasadnij. 6. Następujące rozpuszczalniki uporządkuj w kolejności wzrastającej siły elucji w przypadku użycia fazy stacjonarnej - żelu krzemionkowego: woda, metanol, n-heksan, eter dietylowy i uzasadnij. Jak nazywa się taki szereg? 7. W odwróconym układzie faz jako eluentów używa się: a) mieszaniny metanol-woda b) chloroformu c) heksanu d) mieszaniny acetonitryl woda 8. Jeżeli faza stacjonarna jest słabo polarna lub niepolarna a faza ruchoma polarna to wzrost zawartości wody... czas retencji substancji niepolarnych, a wzrost ilości rozpuszczalnika organicznego...ich czas retencji. Im wyższa temperatura kolumny tym... czas retencji i...zdolność rozdzielcza kolumny. Chromatografię z programowaną temperaturą stosujemy wówczas gdy składniki rozdzielanej mieszaniny różnią się znacznie... 9. Uszereguj następujące rozpuszczalniki według wzrastającej mocy elucyjnej: heksan, aceton, woda, kwas octowy, chloroform, benzen, toluen, dichlorometan. 10. Przeprowadzono rozdział mieszaniny związków organicznych (heksan, kwas heksanow, eter dipropylowy, n-heksanol) metodą adsorpcyjnej chromatografii kolumnowej na polarnym adsorbencie. Podaj przewidywaną kolejność elucji. 11. Sklasyfikuj rozpuszczalniki według wzrastającej mocy elucyjnej: dichlorometan, chloroform, woda, n-heptan. 12. Jaka będzie kolejność elucji zwiazków z żelu krzemionkowego dla różnych związków o tej samej ilości atomów węgla w łańcuchu: alkohol, kwas, eter, alkan? Jaki to układ faz?

13. Który rozpuszczalnik dodany do eteru naftowego (faza ruchoma) zwiększy moc elucyjną fazy ruchomej w układzie NP? a) benzen; b) octan etylu; c) metanol; d) pentan. 14. Im większe stężenie substancji w fazie stacjonarnej, tym: a) czas retencji b) wartość K c) wartość k. 15. Im większe stężenie substancji w fazie stacjonarnej, tym: d) czas retencji dłuższy e) czas retencji krótszy f) wartość K mniejsza g) wartość K większa h) wartość k większa i) wartość k mniejsza 16. Zdefiniuj pojęcie: półka teoretyczna. Wyznacz liczbę półek teoretycznych kolumny A i kolumny B na podstawie kształtu sygnału tego samego związku. Czas retencji sygnału na kolumnie A wynosi 6 min., a szerokość sygnału na linii podstawy 0,45 min. Czas retencji sygnału na kolumnie B wynosi 7 min., a szerokość sygnału na linii podstawy 0,35 min. Która z kolumn i dlaczego charakteryzuje się większą sprawnością? 17. Techniką HPLC rozdzielano substancje A, B, C na kolumnie o długości 15 cm. Przepływ fazy ruchomej wynosił 0,4 ml/min.; t M = 2 min. Czasy retencji poszczególnych analitów i szerokości sygnałów wynosiły odpowiednio: Substancja t R [min] w [min] A 5,4 0,4 B 13,4 0,8 C 16,2 1,0

Oblicz: a) liczbę półek teoretycznych N b) współczynnik retencji (k) dla składnika B c) zdolność rozdzielczą dla pików A i B oraz B i C d) współczynnik selektywności α. 18. Wiedząc, że czasy retencji [min] dla składników A, B i C wynoszą odpowiednio1,3; 3,0; 5,5. Szybkość przesuwu taśmy rejestratora 30 mm/min., a początek i koniec poszczególnych sygnałów znajdował się odpowiednio w odległości: A- 3,5 i 4,3 cm; B- 8,8 i 9,2 cm; C- 16 i 17 cm a) oblicz liczbę półek teoretycznych w kolumnie dla każdego piku. b) podaj wysokość odpowiadającą półce teoretycznej dla każdego piku. c) czy wartości te powinny być jednakowe? TAK/NIE, dlaczego? 19. Przepuszczając mieszaninę zawierającą sześć składników przez kolumnę do GC o długości 30 m otrzymano chromatogram otrzymany poniżej. Szybkość przesuwu taśmy rejestratora 5 mm/min. Odczytaj z chromatogramu odległości retencji, szerokości pików przy podstawie, policz t R, t R, t m. Oblicz: a) oblicz liczbę półek w kolumnie dla każdego piku b) podaj wysokość odpowiadającą półce teoretycznej dla każdego piku c) współczynnik retencji k (dla składnika C) d) zdolność rozdzielczą dla pików A i B e) współczynnik selektywności α pików B i C. t

20. Wykonano analizę chromatograficzną próbki X stosując kolumnę o liczbie półek teoretycznych: a) 400 b) 1000. W którym przypadku kształt sygnału chromatograficznego był bardziej ostry i dlaczego? 21. Wykonano analizę chromatograficzną mieszaniny analitów A i B stosując dwie różne kolumny chromatograficzne. Uzyskano następujące wartości parametrów: a) t RA = 4,0 min.; t RB = 5,0 min.; w A = 0,5 min.; w B =0,5 min.; b) t RA = 4,5 min.; t RB = 6,0 min.; w A = 0,5 min.; w B =0,6 min. Korzystając z odpowiednich równań uzasadnij, w którym przypadku uzyskaliśmy lepszą rozdzielczość pików. 22. W celu rozdziału trzech analitów (X, Y i Z) przetestowano trzy różne kolumny chromatograficzne (A, B, i C). Uzyskano następujące wartości parametrów: a) t RX = 4,0 min.; t RY = 4,3 min.; t RZ = 4,7 min.; w X = 0,4 min.; w Y =0,3 min.; w Z =0,4 min.; b) t RX = 4,4 min.; t RY = 4,8 min.; t RZ = 5,4 min.; w X = 0,4 min.; w Y =0,4 min.; w Z =0,4 min.; c) t RX = 4,4 min.; t RY = 4,7 min.; t RZ = 5,1 min.; w X = 0,2 min.; w Y =0,2 min.; w Z =0,3 min. Korzystając z otrzymanych danych uzasadnij, która z kolumn najlepiej nadaje się do analizy substancji X, Y i Z. 23. Rozdzielono dwie substancje A i B za pomocą HPLC. Ich czasy retencji wynosiły odpowiednio 1,5 i 1,9 min., a szerokości sygnałów w połowie ich wysokości 0,3 i 0,4 min. Oblicz rozdzielczość otrzymanych pików. 24. Rozdzielczość sygnałów odpowiadających substancjom A i B (rozdzielanych za pomocą HPLC) wynosiła 1,4, czasy retencji wynosiły odpowiednio 1,9 i 2,5 min., a szerokość sygnału A w połowie jego wysokości 0,3 min. Ile wynosiła szerokość w połowie wysokości sygnału B? Ile wynoszą szerokości obu sygnałów przy podstawie jeśli oba są jednakowe? Czy sygnały są rozdzielone do linii podstawowej? 25. Rozdzielczość sygnałów odpowiadających substancjom A i B (rozdzielanych za pomocą HPLC) wynosiła 1,7, czasy retencji wynosiły odpowiednio 1,9 i 2,5 min., a szerokość

sygnału A w połowie jego wysokości 0,2 min. Ile wynosiła szerokość w połowie wysokości sygnału B? Ile wynoszą szerokości obu sygnałów przy podstawie jeśli oba są jednakowe? Czy sygnały są rozdzielone do linii podstawowej? 26. Planujemy rozdzielić substancje A i B metodą chromatografii gazowej. Zakładamy, że rozdzielczość pików ma wynosić 1,5. Czasy retencji: A 5 min. 15 s; B 5 min. 50 s; czas martwy 2 min. 13 s. Oblicz liczbę półek teoretycznych potrzebną do uzyskania rozdziału uwzględniającego wcześniejsze założenia. 27. Ile powinna wynosić liczba półek teoretycznych, aby rozdzielić dwie substancje o czasach retencji 10,2 i 10,7 min. z rozdzielczością równą 2? Czas martwy 2 min. 15 s. 28. Rozdzielano dwie substancje metodą GC-FID stosując cztery różne kolumny chromatograficzne. Korzystając z otrzymanych chromatogramów obliczono rozdzielczość pików, która wynosiła odpowiednio: 5; 1; 1,5; 0,75. Która z kolumn najlepiej nadaje się do rozdziału testowanych substancji? Odpowiedź uzasadnij. 29. Rozdzielono metodą TLC barwniki zawarte w tuszu z markera. Czoło rozpuszczalnika znajdowało się w odległości 7 cm od linii startu, a środki plamek odpowiadających poszczególnym barwnikom A, B i C znajdowały się odpowiednio w odległości 4,2; 4,5 i 5,2 cm od linii startu. Oblicz współczynnik opóźnienia dla poszczególnych barwników. 30. Jakie wartości może przyjmować współczynnik opóźnienia R f? 31. Od czego zależy wartość współczynnika R f? 32. O czym świadczy R f =1? 33. Oznaczano próbkę X metodą TLC. Dla jednego z analitów R f był równy 0. Co na podstawie tej wartości można powiedzieć o tej substancji i układzie chromatograficznym?

34. Oblicz indeks retencji dla substancji X, której czas retencji wynosi 10 min. 30 s. Czas martwy wynosi 2 min., czasy retencji dla n-alkanów: C 12 7 min 30 s, C 13 10 min, C 14 12 min 30 s, C 15 15 min. Analizę chromatograficzną prowadzono stosując program temperaturowy: 80-250 C przy naroście 6 C/min. 35. Oblicz indeksy retencji substancji Y i Z, których czasy retencji wynoszą odpowiednio 15,4 i 17,2 min. Czas martwy wynosi 2 min., czasy retencji dla n-alkanów: C 12 14,5 min., C 13 16,1 min, C 14 17,8 min., C 15 19,6 min. Podczas analizy chromatograficznej temperatura kolumny wynosiła 100 C. 36. Przeprowadzono analizę chromatograficzną mieszaniny węglowodorów. Na chromatogramie zmierzono następujące czasy retencji: czas martwy - 2 min, n-hexan 9 min, n-heptan - 16 min, n-oktan - 35 min, cyklohexan - 13 min, toluen - 18 min. Obliczyć indeksy retencji cyklohexanu i toluenu. Analiza chromatograficzna była prowadzona w warunkach izotermicznych. 37. Oblicz indeks retencji substancji Y, której czas retencji wynosi 6,3 minuty. Czasy retencji węglowodorów C 7 i C 9 wynoszą odpowiednio 5,1 i 7,6 min., czas martwy 1,9 min. Analiza była prowadzona w programowanej temperaturze. 38. Oblicz liczbę pików, która może być rozdzielona pomiędzy pikami odpowiadającym n-alkanom C 24 i C 25, C 26 i C 27, C 32 i C 33, wiedząc, że ich czasy retencji wynoszą odpowiednio 73,9; 80,8; 87,5; 93,9; 122,9; 128,5 min. Szerokości wszystkich sygnałów w połowie ich wysokości były jednakowe i wynosiły 0,2 min. 39. W poniższej tabelce znajdują się wartości indeksów Kovats a (IR) diastereoizomerów glikozydów (S)-(+)- i (R)-(-)-2-butylu względem n-alkanów. Wiedząc, że czasy retencji węglowodorów C 24, C 25, C 26, C 27, C 28, C 29, C 30, C 31, C 32, C 33, C 34, wynoszą odpowiednio 73,9; 80,8; 87,5; 93,9; 100,3; 106,2; 112,2; 117,8; 122,9; 128,5; 133,4 min., oblicz czasy retencji wszystkich sygnałów otrzymanych dla odpowiednich pochodnych L-ramnozy i D- galaktozy. Warunki rozdziału metodą GC-FID: kolumna DB-23 60 m, 50-260 C, przyrost temperatury 1 C/min.

Monosacharyd Furanozyd 1. Piranozyd α lub β α lub β α lub β α lub β α lub β α lub β α lub β α lub β L-ramnoza 2533 2579 2514 2540 2641 2702 2652 2703 D-galaktoza 3163 3192 3165 3220 3198 3370 3225 3387 gdzie S-Ag pochodzi od aglikonu konfiguracji S; L-cukier-S-Agl D-cukier-R-Agl w analizie GC 40. Korzystając z zamieszczonego niżej chromatogramu policz indeks Kovats a substancji 3 zakładając, że substancja 2 to undekan a substancja 4 to dodekan. 1 2 3 4 5 6 2 4 6 8 10 12 14 t