Zastosowanie spektrofotometrii (UV-VIS) do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie



Podobne dokumenty
Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Dobór metody analitycznej

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Analityka Chemiczna. Oznaczanie żelaza metodą wagową

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

ANALIZA INSTRUMENTALNA

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

Spis treści. Wstęp. Twardość wody

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

DEZYNFEKCJA WODY CHLOROWANIE DO PUNKTU

Zastosowanie spektrofotometrii w nadfiolecie i świetle widzialnym (UV-VIS) do oznaczania fenoli w wodzie

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Klasa czystości I II III IV V

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

WYKRYWANIE ZANIECZYSZCZEŃ WODY POWIERZA I GLEBY

data ĆWICZENIE 12 BIOCHEMIA MOCZU Doświadczenie 1

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

POLITECHNIKA WROCŁAWSKA INSTYTUT TECHNOLOGII NIEORGANICZNEJ I NAWOZÓW MINERALNYCH. Ćwiczenie nr 6. Adam Pawełczyk

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Ćwiczenie 3: Ocena fizykochemiczna nawozów stałych fosforowych różne formy P 2 O 5

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

BADANIE ZAWARTOŚCI ZWIĄZKÓW AZOTU. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO(V) METODĄ KOLORYMETRYCZNĄ.

ĆWICZENIE 11. ANALIZA INSTRUMENTALNA KOLORYMETRIA - OZNACZANIE Cr(VI) METODĄ DIFENYLOKARBAZYDOWĄ. DZIAŁ: Kolorymetria

Krew należy poddać hemolizie, która zachodzi pod wpływem izotonicznego odczynnika Drabkina.

OZNACZANIE WŁAŚCIWOŚCI BUFOROWYCH WÓD

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

Ćwiczenie 2. Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

8. MANGANOMETRIA. 8. Manganometria

Usuwanie jonów żelaza i manganu z wody

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Wyznaczanie parametrów kolektywnych układu

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

Analiza ilościowa. Kompleksometria Opracowanie: mgr inż. Przemysław Krawczyk

REDOKSYMETRIA ZADANIA

Ćwiczenie 8 KOMPLEKSOMETRIA

BADANIE SPECJACJI WAPNIA I MAGNEZU W GLEBIE

ĆWICZENIE NR 3 BADANIE MIKROBIOLOGICZNEGO UTLENIENIA AMONIAKU DO AZOTYNÓW ZA POMOCĄ BAKTERII NITROSOMONAS sp.

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

8. Trwałość termodynamiczna i kinetyczna związków kompleksowych

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

Oznaczanie chlorowodoru w powietrzu atmosferycznym

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 8. Argentometryczne oznaczanie chlorków metodą Fajansa

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

OZNACZANIE UTLENIALNOŚCI WÓD NATURALNYCH

Badanie procesu starzenia się kwasu ortokrzemowego w roztworach wodnych

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Analiza miareczkowa. Alkalimetryczne oznaczenie kwasu siarkowego (VI) H 2 SO 4 mianowanym roztworem wodorotlenku sodu NaOH

TARNOWSKI KONKURS CHEMICZNY PWSZ w Tarnowie etap II część doświadczalna

Przebieg ćwiczeń z Oceanografii Chemicznej w roku akademickim 2012/2013

wiczenie - Oznaczanie stenia magnezu w surowicy krwi metod kolorymetryczn

ĆWICZENIE WPŁYW STĘŻENIA TLENU ROZPUSZCZONEGO W WODZIE NA SPECJACJĘ I STĘŻENIE ŻELAZA I MANGANU

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

K1. KONDUKTOMETRYCZNE MIARECZKOWANIE STRĄCENIOWE I KOMPLEKSOMETRYCZNE

OZNACZANIE INDEKSU FENOLOWEGO W WODZIE

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

USUWANIE ZWIĄZKÓW FOSFORU Z WÓD NATURALNYCH

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII OGÓLNEJ I ANALITYCZNEJ DLA STUDENTÓW I ROKU OCHRONY ŚRODOWISKA

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

CHEMIA ŚRODOWISKA. MOBILNOŚĆ JONÓW METALI W GLEBIE SYMULACJA WYMYWANIA PRZEZ DESZCZE O RÓŻNYM ph

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

ĆWICZENIE 7 WSPÓŁOZNACZANIE WAPNIA I MAGNEZU I OBLICZANIE TWARDOŚCI WODY. DZIAŁ: Kompleksometria

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

Identyfikacja wybranych kationów i anionów

Potencjometryczna metoda oznaczania chlorków w wodach i ściekach z zastosowaniem elektrody jonoselektywnej

ALKACYMETRIA. Ilościowe oznaczanie HCl metodą miareczkowania alkalimetrycznego

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

( liczba oddanych elektronów)

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z FIZYKOCHEMICZNYCH PODSTAW ŻYCIA DLA STUDENTÓW I ROKU BIOLOGII OGÓLNEJ, BIOTECHNOLOGII I BIOINFORMATYKI

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

BADANIE WŁAŚCIWOŚCI FIZYKOCHEMICZNYCH WODY

2. Podczas spalania 2 objętości pewnego gazu z 4 objętościami H 2 otrzymano 1 objętość N 2 i 4 objętości H 2O. Jaki gaz uległ spalaniu?

data ĆWICZENIE 7 DYSTRYBUCJA TKANKOWA AMIDOHYDROLAZ

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

POLITECHNIKA GDAŃSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

ĆWICZENIE 4 OZNACZANIE FENOLU METODĄ BROMIANOMETRYCZNĄ I JODOMETRYCZNĄ. DZIAŁ: Redoksymetria

Oznaczanie par rtęci w powietrzu laboratoryjnym

ODśELAZIANIE WODY. Technologie usuwania Ŝelaza z wody podziemnej i powierzchniowej[2,3]

INŻYNIERIA PROCESÓW CHEMICZNYCH

W probówkach oznaczonych numerami 1-8 znajdują się wodne roztwory (o stężeniu 0,1

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

BIOCHEMICZNE ZAPOTRZEBOWANIE TLENU

CHARAKTERYSTYKI SPEKTRALNE UTLENIONEJ I ZREDUKOWANEJ FORMY CYTOCHROMU C

OZNACZANIE STĘŻENIA GLUKOZY WE KRWI METODĄ ENZYMATYCZNĄ-OXY

Program ćwiczeń laboratoryjnych z fizykochemicznych podstaw życia dla I r Biologii niestacjonarnej

Oznaczanie Mg, Ca i Zn we włosach techniką atomowej spektrometrii absorpcyjnej z atomizacją w płomieniu (FAAS)

Transkrypt:

UNIWERSYTET GDAŃSKI WYDZIAŁ CHEMII ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II Ćwiczenie 4 Zastosowanie spektrofotometrii (UV-VIS) do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie 1. Wprowadzenie Żelazo jest pospolitym składnikiem skorupy ziemskiej (5.08%). Występuje ono w postaci minerałów tlenkowych, siarczkowych oraz jako izomorficzna domieszka krzemianów. Dla przemysłu najcenniejszymi rudami są magnetyt Fe3O4, hematyt Fe2O3, limonit 2Fe2O3 3H2O, syderyt FeCO3 i piryt FeS2. Zawartość żelaza w glebach i jego rozmieszczenie jest bardzo zróżnicowane. Ilość żelaza w polskich glebach mieści się w zakresie od 0,8 do 1,8 %. Gleby ciężkie mogą zawierać niekiedy dwukrotnie więcej tego składnika niż gleby piaszczyste. Pierwiastek ten jest bardzo ruchliwy i w warunkach niesprzyjających szybko migruje w głąb profilu glebowego powodując obniżenie ilości form łatwo przyswajalnych dla roślin. Żelazo znajduje szerokie zastosowanie jako metal konstrukcyjny, a w postaci związków jako pigmenty, środki garbujące, katalizatory zaprawy w farbiarstwie, środki koagulujące, środki kondensujące w reakcjach chlorowania, w galwanotechnice, metalurgii i przy odsiarczaniu gazów. Związki i minerały żelaza oraz jego połączenia kompleksowe z substancjami organicznymi mają duże znaczenie w procesach glebotwórczych, w znacznym stopniu wpływają na zachowanie się innych pierwiastków, szczególnie śladowych. Niedobór

Zastosowanie spektrofotometrii UV-VIS do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie 2 żelaza dla roślin nie jest związany najczęściej z jego rzeczywistym brakiem w glebach, ale z ograniczoną rozpuszczalnością związków żelaza. Żelazo występuje we wszystkich wodach lądowych i morskich (stopień utlenienia +2 lub +3). Związki Fe 2+ są łatwo rozpuszczalne w wodzie o ph< 7. W wodach powierzchniowych ulegają szybko utlenieniu i wytrącają się w postaci różnych tlenków. Związki żelaza Fe 3+ w fazie rozpuszczonej utrzymują się w postaci połączeń kompleksowych. Tlenki żelaza w stanie koloidalnym odgrywają ważną rolę w procesach sorpcji i koagulacji innych substancji koloidalnych oraz jonów. Koloidalna zawiesina tlenków żelaza w wodzie katalizuje procesy utleniania, co jest powszechnie wykorzystywane przy oczyszczaniu ścieków. Zawartość żelaza w rzekach jest wyższa od jego zawartości wodach morskich i najczęściej jest wynikiem ich zanieczyszczeń. W wodzie deszczowej zawartość żelaza występuje zazwyczaj w granicach kilkudziesięciu ppb (10-100 USA), w morzach np. Bałtyckim średnio 8.9 ppb, w rzekach polskich średnio 187 ppb. Żelazo jako tzw. biopierwiastek odgrywa ważną rolę w organizmach żywych. W roślinach tworzy różne połączenia ze związkami organicznymi głównie typu porfiryn i białek dając związki o podstawowym znaczeniu w metabolizmie roślin. Fizjologiczna funkcja związków żelaza polega głównie na udziale w różnych reakcjach oksydacyjno- redukcyjnych związanych z takimi procesami jak oddychanie, fotosynteza przemiany związków azotowych. Obecność żelaza niezbędna jest do syntezy chlorofilu, a ściślej do metabolizmu RNA w chloroplastach. Żelazo występuje we wszystkich tkankach organizmów zwierzęcych w ilościach od kilkunastu do kilkuset ppm. W organizmie ludzkim znajduje się 3,5-4,5 g żelaza. Największa jego zawartość 60-70% przypada na hemoglobinę i mioglobinę. Poziom żelaza w poszczególnych tkankach i płynach ustroju człowieka zmienia się w zależności od wieku i stopnia zaopatrzenia organizmu w ten składnik pokarmowy. Najmniejszym wahaniom podlega zawartość żelaza w szpiku kostnym i uważana jest za dobry wskaźnik diagnostyczny. Pobieranie żelaza z pożywienia zależy w głównym stopniu od formy jego występowania. Stopień absorpcji tego metalu mieści się najczęściej w granicach 5-20% jego ogólnej zawartości w pożywieniu. Rola żelaza w organizmie jest prawie wyłącznie związana z procesami oddychania komórkowego. Jest ono składnikiem wielu ważnych białek, np. hemoglobiny czy mioglobiny, występuje również w centrach aktywnych licznych enzymów takich jak: katalaza, peroksydazy oraz cytochromy. Żelazo jest niezbędne dla organizmu jako składnik krwiotwórczy oraz do transportu i magazynowania tlenu. Zapotrzebowanie na żelazo jest zmienne i zależy między innymi od wieku, płci i stanu organizmu. Norma dobowego spożycia waha się w dość dużych granicach. U osób dorosłych: od 10 mg/dobę u mężczyzn, do 2

Zastosowanie spektrofotometrii UV-VIS do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie 3 20 mg u kobiet, z zastrzeżeniem że w okresie ciąży i karmienia powinno to być ok. 30 mg/dobę. Niedobór spotyka się w stanach zwiększonego zapotrzebowania, zaburzeń wchłaniania lub zwiększonej utraty żelaza. W takim przypadku może wystąpić niedokrwistość. Metody oznaczania żelaza w różnych roztworach i różnymi metodami są określane przy pomocy znormalizowanych przepisów analitycznych tzw. norm. Sposób oznaczania żelaza jest uzależniony od zawartości żelaza w badanej próbce. Oznaczenie wagowe podobnie jak oznaczania miareczkowe redoksymetryczne są preferowane w przypadku analizy materiału, w którym żelazo stanowi główny składnik. Do oznaczania bardzo małych zawartości żelaza stosuje się różne metody instrumentalne między innymi sposoby spektrofotometryczne. 2. Zasada oznaczania żelaza w wodzie 2.1. Spektrofotometryczne oznaczanie żelaza metodą 1,10-fenantrolinową Oznaczenie żelaza polega na redukcji Fe 3+ do Fe 2+, po redukcji przeprowadza się żelazo w kompleks z 1,10-fenantroliną. Intensywność powstałego pomarańczowego zabarwienia jest proporcjonalna do zawartości żelaza w próbce, określa się ją spektrofotometrycznie przy długości fali 510 nm. 2.2. Spektrofotometryczne oznaczanie Fe(III) metodą rodankową Jony rodankowe (tiocyjanianowe) w niezbyt kwaśnym środowisku reagują z Fe(III) tworząc czerwono zabarwione kompleksy żelazowo-rodankowe (λ = 480 nm). W wyniku stopniowej reakcji kompleksowania w roztworze mogą powstawać kompleksy Fe(SCN) 2+, Fe(SCN)2 +, aż do Fe(SCN)6 3-. Stężenia reagentów i ph środowiska decydują, które z kompleksów przeważają w roztworze. Metodą rodankową można oznaczać Fe(III) lub całkowitą zawartość żelaza, po wcześniejszym utlenieniu Fe(II). Oznaczaniu przeszkadzają aniony tworzące z Fe(III) trwałe kompleksy: fluorki, fosforany, cytryniany i szczawiany. Przeszkadzają również jony metali tworzące w warunkach reakcji barwne kompleksy (Co, Mo, Bi, Ti). 3

Zastosowanie spektrofotometrii UV-VIS do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie 4 3. Wykonanie ćwiczenia 3.1. Oznaczanie Fe(II) metodą 1,10-fenantrolinową Do 6 starannie umytych kolb miarowych o pojemności 50 cm 3 wprowadzić kolejno: 0; 0,5; 1,0; 1,5; 2,0 i 2,5 ml wzorcowego roztworu soli żelaza (II) o stężeniu 50 ppm. Następnie do każdej kolby dodać 2,0 cm 3 10 % roztworu chlorowodorku hydroksyloaminy, oraz 5,0 cm 3 10% cytrynianu sodu. Później dodać 5,0 cm 3 roztworu 1,10-fenantroliny (0,25% roztwór 1,10-fenantroliny w 0,1M HCl). Uzupełnić kolby wodą destylowaną do kreski i dokładnie wymieszać. Po upływie 10 minut zmierzyć absorbancję roztworu przy długości fali 500 nm. Oznaczenie Fe 2+ w badanej próbce Badany roztwór o objętości 10,00 cm 3 wprowadzić do kolby o pojemności 50,00 cm 3. Następnie dodać 2,0 cm 3 10 % roztworu chlorowodorku hydroksyloaminy oraz 5,0 cm 3 10% cytrynianu sodu. Następnie dodać 5,0 cm 3 roztworu 1,10-fenantroliny (0,25% roztwór 1,10fenantroliny w 0,1M HCl). Uzupełnić kolby wodą do kreski i dokładnie wymieszać. Po upływie 10 minut zmierzyć absorbancję roztworu przy długości fali 500 nm. 3.2. Oznaczanie Fe(III) metodą rodankową Do 7 kolb miarowych o pojemności 25 cm 3 odmierzyć następujące objętości roztworu wzorca Fe (III) o stężeniu 0,6 mg/100ml: 0; 2,0; 4,0; 6,0; 8,0; 10,0. Następnie do każdej kolbki dodać 1 cm 3 2M roztworu HNO3 oraz 5 cm 3 20% roztworu KSCN. Wszystkie kolby uzupełnić wodą destylowaną do kreski. Zamknąć kolbę korkiem i starannie wymieszać odwracając dnem do góry kilkakrotnie. Odczytać absorbancję przy długości fali (λmax) równej 480 nm. Oznaczenie Fe 3+ w badanej próbce Otrzymaną do analizy próbkę o nieznanej zawartości Fe 3+ w kolbie o pojemności 100 cm 3 Uzupełnić wodą destylowaną do kreski. Do kolby miarowej o pojemności 25 cm 3 odmierzyć 10 cm 3 próbki, dodać 1 cm 3 2M roztwór HNO3 oraz 5 cm 3 20% roztwór KSCN i uzupełnić wodą destylowaną do kreski. Zamknąć kolbę korkiem i starannie wymieszać odwracając dnem do góry kilkakrotnie. Odczytać absorbancję przy długości fali (λmax) równej 480 nm. Sprzęt: kolbka miarowa o pojemności 100 cm 3-3 szt. kolba miarowa o pojemności 25 cm 3-7 szt. kolba miarowa o pojemności 50 cm 3-7 szt. pipeta szklana o pojemności: 1 cm 3-4 szt. 4

Zastosowanie spektrofotometrii UV-VIS do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie 5 5 cm 3-4 szt. 10 cm 3-2 szt. Odczynniki: roztwór wzorca Fe 3+ o stężeniu 0,6 mg/100ml, roztwór HNO3 o stężeniu 2 mol/dm 3, roztwór KSCN o stężeniu 20 %, roztwór soli żelaza (II) o stężeniu 50 ppm, 10 % roztwór chlorowodorku hydroksloaminy, 10% cytrynian sodu, roztwór 1,10-fenantroliny (0,25% roztwór 1,10-fenantroliny w 0,1M HCl). 4. Zakres wymaganych wiadomości 1. Spektrofotometria UV/VIS 2. Prawa absorpcji 3. Odstępstwa od praw absorpcji 4. Analiza ilościowa metodą krzywej kalibracyjnej 5. Analiza ilościowa pośrednia i bezpośrednia 6. Wybór analitycznej długości fali 7. Błędy w analizie absorpcyjnej 8. Możliwości i ograniczenia spektrofotometrycznej analizy ilościowej 9. Aparatura 5. Literatura Szczepaniak W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej. W-wa, PWN, 1996. Minczewski J., Marczenko Z., Chemia analityczna. W-wa, PWN, 1976. tom 3. Ewing G. W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej. W-wa, PWN, 1980 5