ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

Podobne dokumenty
UWAGA NA WRZĄCY OLEJ!!!!

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

Izolacja barwników roślinnych.

CHROMATOGRAFIA ADSORPCYJNA I PODZIAŁOWA. 1. Rozdział barwników roślinnych metodą chromatografii adsorpcyjnej (techniką kolumnową)

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

ĆWICZENIE 3: CHROMATOGRAFIA PLANARNA

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

6. Wykorzystanie tyrozynazy otrzymywanej z pieczarki dwuzarodnikowej (Agaricus Bisporus) do produkcji L-DOPA

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

WYŻEJ OPISANA CZĘŚĆ DOŚWIADCZENIA JEST PRZYGOTOWANA EOZYNA ŻÓŁTAWA

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

Techniki molekularne ćw. 1 1 z 6

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

Cel ćwiczenia: Zapoznanie się z metodą analizy jakościowej oraz własnościami fizykochemicznymi barwników fotosyntetycznych.

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

VI. Chemia opakowań i odzieży

G-VII. Substancje o znaczeniu biologicznym

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Ćwiczenie 3. Otrzymywanie i badanie właściwości chemicznych alkanów, alkenów, alkinów i arenów.

ĆWICZENIE 5 MECHANIZMY PROMUJĄCE WZROST ROŚLIN

a) Ćwiczenie praktycze: Sublimacja kofeiny z kawy (teofiliny z herbaty i teobrominy z kakao)

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

ALGALTOXKIT F Procedura testu

Ćwiczenie 1. Zależność szybkości reakcji chemicznych od stężenia reagujących substancji.

Chemia Organiczna Syntezy

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

Ćwiczenie 1. Badanie wypierania wodoru z wody za pomocą metali

2. Ekstrakcja cieczy = C1 C2

III-B. Chemia w kuchni

data ĆWICZENIE 12 BIOCHEMIA MOCZU Doświadczenie 1

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Współczesne metody chromatograficzne: Chromatografia cienkowarstwowa

INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ- Kwasy i wodorotlenki

OPRACOWAŁA : Klaudia Barczyńska

Imię i nazwisko studenta:...

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Synteza Cu(CH 3 COO) 2 H 2 O oraz (NH 4 ) 2 Ni(SO 4 ) 2 6H 2 O

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

IV ANTOCYJANY, GARBNIKI student:...

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

ĆWICZENIE 3. I. Analiza miareczkowa mocnych i słabych elektrolitów

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

ĆWICZENIE 5. KOPOLIMERYZACJA STYRENU Z BEZWODNIKIEM MALEINOWYM (polimeryzacja w roztworze)

Nazwa kwalifikacji: Przygotowywanie sprzętu, odczynników chemicznych i próbek do badań analitycznych Oznaczenie kwalifikacji: A.59 Numer zadania: 01

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

ĆWICZENIA PRZEPROWADZANE W FORMIE POKAZÓW:

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

C 6 H 12 O 6 2 C 2 O 5 OH + 2 CO 2 H = -84 kj/mol

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

Ćwiczenie 3: Ocena fizykochemiczna nawozów stałych fosforowych różne formy P 2 O 5

ĆWICZENIE NR 1 Analiza ilościowa miareczkowanie zasady kwasem.

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

ODWADNIANIE OSADÓW PRZY POMOCY WIRÓWKI SEDYMENTACYJNEJ

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

G-VI. Węgiel i jego związki z wodorem. Pochodne węglowodorów

Transkrypt:

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne Ekstrakcja barwników asymilacyjnych 400 mg - zhomogenizowany w ciekłym azocie proszek z natki pietruszki 6 ml - etanol 96% 2x probówki plastikowe typu Falcon na 15 ml 5x probówki szklane waga laboratoryjna Do dwóch plastikowych probówek na 15 ml odwazyć po 200 mg zhomogenizowanego wcześniej w ciekłym azocie proszku z natki pietruszki. Do pierwszej wlać 6 ml wody destylowanej a do drugiej 6 ml 96% etanolu. Obie probówki wstawić na 5 min do wrzącej łaźni wodnej a następnie odwirować przez 5 min. Z każdej z probówek pobrac delikatnie nadsącz (tak aby nie naruszyć peletu) do czystych szklanych probówek. Porównac zabarwienie ekstraktu wodnego i etanolowego. Następnie ekstrakt etanolowy rozpipetować po ok 2 ml do trzech kolejnych pobówek i pozostawic do dalszych doświadczeń. Rozpuszczalnik H 2 0 Etanol 96% Zabarwienie Rozpuszczalność chlorofilu ekstrakt etanolowy z poprzedniego doswiadczenia 3 ml benzyna ekstrakcyjna 1x probówka szklana Do jednej z probówek z alkoholowym ekstraktem chlorofilu z poprzedniego doświadczenia dolać około 1,5 razy więcej benzyny ekstrakcyjnej, przez chwilę mocno wytrząsać, a następnie probówkę odstawić do statywu do ponownego rozdzielenia się mieszaniny. Zanotować zabarwienie górnej i dolnej warstwy cieczy. Warstwa Rozpuszczalnik Zabarwienie Barwniki asymilacyjne górna dolna 19

Reakcja chlorofilu z zasadami ekstrakt etanolowy z pierwszego doswiadczenia 2,5 ml benzyna ekstrakcyjna 0,5 ml - 10% NaOH 1x probówka szklana 3x pipetka plastikowa Do 2 ml etanolowego ekstraktu chlorofilu z pierwszego doświadczenia dodać 0,5 ml roztworu zasady sodowej, wymieszać i wstawić na 2 min do wrzącej łaźni wodnej. Po ochłodzeniu roztworu dodać 2,5 ml benzyny ekstrakcyjnej, wstrząsnąć i odstawić probówkę do rozdzielenia się warstw cieczy. Zanotować zabarwienie górnej i dolnej warstwy cieczy. Porównac zabarwienie warstw z poprzednim doswiadczeniem Warstwa Rozpuszczalnik Zabarwienie Barwniki asymilacyjne górna dolna Reakcja chlorofilu z kwasami ekstrakt etanolowy z pierwszego doswiadczenia 1 ml 10% HCl 2 kryształki - octan miedzi 2x probówka szklana Do probówki z 2 ml etanolowego ekstraktu chlorofilu z doświadczenia pierwszego dodać 5-6 kropli 10% kwasu solnego i dokładnie wymieszać. Zanotować zabarwienie ekstraktu. Część roztworu odlać do czystej probówki i pozostawić dla kontroli, a do pozostałej objętości wrzucić 2 kryształki octanu miedzi i ogrzać na wrzącej łaźni wodnej. Porównać zabarwienia roztworów. Roztwór ekstrakt alkoholowy chlorofilu ekstrakt + kwas feofityna + octan miedzi Barwa roztworu 20

Oznaczanie zawartości barwników asymilacyjnych metodą spektrofotometryczną Odczynniki: zhomogenizowany i zliofilizowany proszek z liści 6 gatunków roślin 80% buforowany aceton (200 ml buforu fosforanowego ph 7,8 + 800 ml acetonu) Bufor fosforanowy ph 7,8 2,5mM 4stC (Na2HPO4 7H2O (268,07mg/mmol) 0,55g/L i NaH2PO4 bezw (120 mg/mmol) 0,05g/L) 25% HCl na 1 gr (5 zespołów) potrzeba: zhomogenizowany i zliofilizowany proszek z liści 6 gatunków roślin: 6x 100 mg 80% buforowany aceton: 105 ml 25% HCl: 3,5 ml Sprzęt: Spektrofotometr wytrząsarka łaźnia wodna łaźnia lodowa probówki eppendorfa 1,5ml Probówki PP zakręcane (bo do wrzącej łaźni wodnej) (co najmniej 7-15ml) Kuwety szklane pipety szklane i automatyczne Procedura: przygotować 6 probówek 10 ml do każdej odważyć ok 20mg liofilizowanego proszku z rożnych gatunków roślin dodać 3 ml buforowanego acetonu o temp 4stC wytrząsać przez 30 min zwirować 10 min 5000 rcf 4stC zlać zwirowane ekstrakty do cylindra miarowego i uzupełnić do 3 ml buforowanym acetonem 80% po czym przelać do nowej probówki i zatkać Z ekstraktu pobrać 1 ml dodać 1 ml 80% acetonu i oznaczyć absorbancje (program chlo1mz). Jeżeli absorbancja 0,2-0,8 ok, jeżeli za duża zmienić rozcieńczenie. Jako referencję wlać 80% buforowany aceton 2ml Oznaczyć pozostałe próbki już z docelowym rozcieńczeniem. Ekstrakt pozostały w probówce wylać a probówkę zostawić do oznaczeń feofityny. Kuwetę po oznaczeniu na chlo1mz zlać do probówki i dodać 50 ul/ml 25% HCL w celu przekształcenia do feofityny. Po dokonaniu wszystkich oznaczeń na chlo1mz rozpocząć oznaczanie feofityny na programie chlofeo. W tym celu przelać zawartość probówki do kuwety i wstawić do spektrofotometru. Jako referencji użyć 2 ml acetonu buforowanego 80% z dodatkiem 25% HCL (50uL/ml) obliczyć zawartość chlorofilu, karotenoidów i feofityny z następujących wzorów: Obliczenia 21

wg Porra et al 1989 Chlorofil A = 12,25*A663,6-2,55*A646,6 (ug/ml) Chlorofil B = 20,31*A646,6-4,91*A663,6 (ug/ml) Chlorofil A + B = 17,76*A646,6 + 7,34*A663,6 (ug/ml) wg Lichtenthaller 1987 Karotenoidy = (1000 *A470 1,82CA 85,02CB)/198 (ug/ml) Feofityna całkowita = 3,84*A665,4+33,36*A653,4 (ug/ml) w celu przeliczenia na g suchej masy wyniki pomnożyć przez rozcieńczenie próbek (2x) oraz końcową objętość ekstraktu (3 ml) i podzielić przez 1000*masa naważki (mg/g sm) Chromatografia bibułowa barwników asymilacyjnych 200 mg proszku z liści szpinaku odważyć w probówce na 7 ml. Zalać 4 ml 96% alkoholem etylowym. Wytrząsać przez kilka minut. Przesączyć do probówki przez bibułę filtracyjną umieszczoną w lejku. Ekstrakt przechowywać w łaźni lodowej w ciemności. Na pasek bibuły o szerokości 1.5 cm i długości 20 cm nanieść kapilarą wyciąg barwników z liści w następujący sposób: 2 cm od końca paska bibuły nanosić krople barwników do momentu aż powstanie linii. Zostawić bibułę do wysuszenia. Zabieg nanoszenia powtórzyć kilka razy aż powstanie ciemnozielona linia grubości kilku mm. Do szklanej probówki nalać 2-3 cm 3 mieszaniny rozwijającej: eter naftowy+aceton 9:1. Włożyć pasek bibuły do probówki i zanurzyć koniec paska tak aby pasek barwników był około 1 cm nad roztworem rozwijającym. Po rozwinięciu chromatogramu wyjąć bibułę i wysuszyć. Właściwości antocyjanin i betacyjanidyn 200 mg - zhomogenizowany w ciekłym azocie proszek z liści kapusty czerwonej 22

200 mg - zhomogenizowany w ciekłym azocie proszek z buraka czerwonego 2x probówki plastikowe typu Falcon na 15 ml 1 ml 10% HCl 1 ml 10% NaOH 6x probówki szklane 5x pipetka plastikowa waga laboratoryjna Do dwóch plastikowych probówek na 15 ml odwazyć: do pierwszej 200 mg zhomogenizowanego wcześniej w ciekłym azocie proszku z z liści kapusty czerwonej, do drugiej 200 mg zhomogenizowanego wcześniej w ciekłym azocie proszku z buraka czerwonego. Do każdej probówki wlać 6 ml wody destylowanej. Obie probówki wstawić na 5 min do wrzącej łaźni wodnej a następnie odwirować przez 5 min. Przygotować sześć szklanych probówek. Do probówki nr 1, 2 i 3 dodac delikatnie po ok. 2 ml nadsączu (tak aby nie naruszyć peletu) z roztworu wodnego z liści kapusty, a do probówek nr 4, 5 i 6 po ok. 2 ml nadsączu z wodnego roztworu z buraka. Następnie do probówek 1 i 4 dodać 6 kropli 10% HCl, do probówek 2 i 5 dodać 6 kropli wody destylowanej, do probówek 3 i 6 dodać 6 kropli 10% NaOH. Porównać zabarwienie w probówkach. 23