Podstawy technik mikroskopowych / Jan A. Litwin, Mariusz Gajda. - wyd. 7. Kraków, cop Spis treści Od autorów 13

Podobne dokumenty
Techniki histologiczne barwienie

PODSTAWY IMMUNOHISTOCHEMII. Determinanty antygenowe (epitopy) Surowice. Antygeny. Otrzymywanie przeciwciał poliklonalnych. poliwalentne monowalentne

METODY HISTOCHEMICZNE - przygotowanie, metody barwienia, określenie wewnątrzkomórkowych enzymów w tkance

+ ± ± (+) + + (+) Jak uzyskać dobry wynik patomorfologiczny? Virchow 2020(50) Andrzej Marszałek. utrwalanie ROZPOZNANIE.

Spółka z o.o. UCZESTNICY WARSZTATÓW: Lekarze rezydenci i specjaliści, technicy w pracowniach diagnostycznych i histopatologicznych

1. Barwienie przeglądowe ogólna struktura mózgu i płatów wzrokowych Drosophila

Spis treści WPROWADZENIE MIKROSKOPIA. Świetlna

SYLABUS. Techniki mikroskopowe. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki. dr Renata Zadrąg-Tęcza

Metody i techniki badań II. Instytut Inżynierii Materiałowej Wydział Inżynierii Mechanicznej i Mechatroniki ZUT

PODSTAWY IMMUNOHISTOCHEMII. Odpowiedź immunologiczna. Determinanty antygenowe (epitopy) Surowice. Antygeny

lutego 2012

Błona komórkowa neuronu w TEM

h λ= mv h - stała Plancka (4.14x10-15 ev s)

Kierunek i poziom studiów: Biologia, poziom pierwszy

Diagnostyka wirusologiczna w praktyce klinicznej

Metody immunocytochemiczne. Barwienie fluorescencyjne komórek prawidłowych i nowotworowych PRAKTIKUM Z BIOLOGII KOMÓRKI (BT 206, BT 231)

METODYKA STOSOWANA W ZAKŁADZIE BIOLOGII ROZWOJU ROŚLIN

Metody immunocytochemiczne. Barwienie fluorescencyjne komórek prawidłowych i nowotworowych PRAKTIKUM Z BIOLOGII KOMÓRKI (BT 106)

PODSTAWY CYTOCHEMII (BCH 395) Chemia komórki

Immunologia komórkowa

Wersja 2016/25 czerwca Projekt z dnia r. ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ZDROWIA 1) z dnia...

Warszawa, dnia 27 grudnia 2017 r. Poz. 2435

Wprowadzenie do cytometrii przepływowej: metody znakowania komórek

Ilość opakowań na 12 m-cy. Wartość netto w zł (kol. 6 x 7) Jednostka miary/ test Szacunkowa. Wpisać nazwę odczynnika oraz nr katalogowy

SPIS TREŚCI OD AUTORÓW... 5

Spis treści. 1 Budowa genomu jądrowego (M.J. Olszewska, J. Małuszyńska) 13. Przedmowa 10

LABORATORIUM ANALITYCZNEJ MIKROSKOPII ELEKTRONOWEJ (L - 2)

KREW I HEMOPOEZA. Hct = Skład osocza krwi. Elementy morfotyczne krwi. Rozmaz krwi (metoda Maya-Grünwalda i Giemsy) Wskaźnik hematokrytu

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne

SPECYFIKACJA TECHNICZNA - OPIS PRZEDMIOTU ZAMÓWIENIA (cd)

BIOLOGIA KOMÓRKI KOMÓRKI EUKARIOTYCZNE W MIKROSKOPIE ŚWIETLNYM JASNEGO POLA I KONTRASTOWO- FAZOWYM; BARWIENIA CYTOCHEMICZNE KOMÓREK

Część praktyczna: Metody pozyskiwania komórek do badań laboratoryjnych cz. I

Hybrydyzacja kwasów nukleinowych

Nazwa handlowa/numer katalogowy. Wartość netto w zł. Wartość brutto w zł. Producent. L.p. Wyszczególnienie. Pakiet Nr Metanol cz.d.

Diagnostyka zakażeń EBV

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne. Nie dotyczy

Powłoki skórne. Powłoki skórne = skóra + tkanka podskórna + twory skórne (gruczoły, włosy, paznokcie)

Specjalność (studia II stopnia) Oczyszczanie i analiza produktów biotechnologicznych

Zestawienie urządzeń

BIOLOGIA KOMÓRKI. Podstawy mikroskopii fluorescencyjnej -1 Barwienia przyżyciowe organelli komórkowych

PROJEKT WSPÓŁFINANSOWANY PRZEZ UNIĘ EUROPEJSKĄ Z EUROPEJSKIEGO FUNDUSZU ROZWOJU REGIONALNEGO 1 z 7

Temat ćwiczenia: Techniki stosowane w badaniach toksyczności in vitro

Spis treści. Wstęp. Komórki: erytrocyt, trombocyt, leukocyt. Tkanka: krew człowieka. Narząd: serce.

Wyklady IIIL 2016/ :00-16:30 środa Wprowadzenie do immunologii Prof. dr hab. med. ML Kowalski

Zarys klinicznej bakteriologii weterynaryjnej Tom I - red. K. Malicki, M. Binek

Katedra Fizyki Ciała Stałego Uniwersytetu Łódzkiego

Hybrydyzacja kwasów nukleinowych

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ZDROWIA 1) z dnia... w sprawie standardów organizacyjnych opieki zdrowotnej w dziedzinie patomorfologii

KREW I HEMOPOEZA. Skład osocza krwi. Hct = Elementy morfotyczne krwi. Wskaźnik hematokrytu

MIKROSKOPIA ELEKTRONOWA. Publikacja współfinansowana ze środków Unii Europejskiej w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego

WYMAGANIA EDUKACYJNE Z BIOLOGII KLASA 5 DOBRY. DZIAŁ 1. Biologia jako nauka ( 4godzin)

Wprowadzenie do cytometrii przepływowej: metody znakowania komórek

FORMULARZ CENOWY WYSZCZEGÓLNIENIE ASORTYMENTOWE I ILOŚCIOWE PRZEDMIOTU ZAMÓWIENIA. Część 1 Bakteriologia inne

Fizjologia nauka o czynności żywego organizmu

Pracownicy samodzielni: dr hab. Piotr Bębas Kierownik Zakładu prof. dr hab. Krystyna Skwarło-Sońta pracownik emerytowany

(metale i ich stopy), oparta głównie na badaniach mikroskopowych.

Techniki analityczne. Podział technik analitycznych. Metody spektroskopowe. Spektroskopia elektronowa

TECHNIKI MIKROSKOPOWE

BIOLOGIA KOMÓRKI. Ocena końcowa z kursu będzie liczona jako: 20% oceny z ćwiczeń 80% oceny z egzaminu

BIOTECHNOLOGIA STUDIA I STOPNIA

PYTANIA EGZAMINACYJNE EGZAMIN MAGISTERSKI kursy wspólne, optyka biomedyczna, elektronika medyczna. Iwona Hołowacz OBM, EBM.

Dr inż. Marta Kamińska

WYDZIAŁ LEKARSKI II. Poziom i forma studiów. Osoba odpowiedzialna (imię, nazwisko, , nr tel. służbowego) Rodzaj zajęć i liczba godzin

Nowoczesna pracownia histologiczna. Agata Szade

Metody badania ekspresji genów

NARODOWY PROGRAM ZWALCZANIA CHORÓB NOWOTWOROWYCH

Program studiów II stopnia dla studentów kierunku chemia od roku akademickiego 2015/16

Skaningowy Mikroskop Elektronowy. Rembisz Grażyna Drab Bartosz

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU)

II.1.4) Określenie przedmiotu oraz wielkości lub zakresu zamówienia: 3.1. Przedmiotem zamówienia jest dostawa produktów do żywienia pozajelitowego

Wykorzystanie metod immunocytochemicznych w diagnostyce medycznej PRAKTIKUM Z BIOLOGII KOMÓRKI (BT 206, BT 231)

ĆWICZENIA Z BIOCHEMII

WNIOSEK DO KOMISJI DS. LICENCJONOWANIA I PRZYZNAWANIA LICENCJI POLSKIEGO TOWARZYSTWA PATOLOGÓW DLA ZAKŁADÓW (PRACOWNI) PATOMORFOLOGII

Tematy- Biologia zakres rozszerzony, klasa 2TA,2TŻ-1, 2TŻ-2

SYLABUS. Elektronowa mikroskopia w nauce o materiałach Nazwa jednostki prowadzącej Wydział matematyczno - Przyrodniczy

Krajowy Fundusz na rzecz Dzieci Program zajęć w Instytucie Biologii Doświadczalnej PAN w dniu r.

PODSTAWY METALOGRAFII ILOŚCIOWEJ I KOMPUTEROWEJ ANALIZY OBRAZU

KARTA KURSU. Kod Punktacja ECTS* 3. Poznanie sposobów i typów hodowli komórek i tkanek zwierzęcych oraz metodyki pracy w warunkach sterylnych.

Metody badań struktury i funkcji komórek

DIAGNOSTYKA BEZPOŚREDNIA. Joanna Kądzielska Katedra Mikrobiologii Lekarskiej Warszawski Uniwersytet Medyczny

Metody biologii komórki

(86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego: , PCT/EP03/050738

METODY BADANIA KOMÓREK I TKANEK

Nanotechnologie w diagnostyce

Mikroskopy świetlne wykorzystują widzialne pasmo fal elektromagnetycznych Metody biologii komórki BADANIA MIKROSKOPOWE

2019 DIAGNOSTYKA HEMATOLOGICZNA

Wartość netto w zł. L.p. Wyszczególnienie. Pakiet Nr Metanol cz.d.a litr % roztwór KOH (wodorotlenek potasu) ml 100

WIELKOPOLSKI KONKURS BIOLOGOCZNY DLA GIMNAZJUM W ROKU SZKOLNYM ETAP REJONOWY

Wstęp Cele pracy Materiał i metody

METODYKA WYBRANYCH POMIARÓW. w inżynierii rolniczej i agrofizyce. pod redakcją AGNIESZKI KALETY

DIAGNOSTYKA HEMATOLOGICZNA

BIOLOGIA KOMÓRKI. Mikroskopia fluorescencyjna -2 Przyżyciowe barwienia organelli wewnątrzkomórkowych

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

l.p. Kod ICD Nazwa Świadczenia Umowy Uwagi Jednostka organizacyjna Pracownia/grupa badań

biologia w gimnazjum UKŁAD KRWIONOŚNY CZŁOWIEKA

Mikroskopia fluorescencyjna

ZASADY BADAŃ BAKTERIOLOGICZNYCH

2. Metody, których podstawą są widma atomowe 32

Mikroskopia konfokalna: techniki obrazowania i komputerowa analiza danych.

1 Diagnostyka. patomorfologiczna zasady i cele. Wenancjusz Domagała

Transkrypt:

Podstawy technik mikroskopowych / Jan A. Litwin, Mariusz Gajda. - wyd. 7. Kraków, cop. 2011 Spis treści Od autorów 13 1. Mikroskopy świetlne 15 1.1. Budowa mikroskopu świetlnego 15 1.1.1. Zespół mechaniczny 15 1.1.2. Zespół optyczny 17 1.2. Teoria mikroskopu 20 1.2.1. Powstawanie obrazu mikroskopowego 20 1.2.2. Powiększenie całkowite mikroskopu 20 1.2.3. Zdolność rozdzielcza mikroskopu 21 1.3. Specjalne odmiany mikroskopów świetlnych 23 1.3.1. Ciemne pole 23 1.3.2. Mikroskop polaryzacyjny 24 1.3.3. Mikroskop fazowo-kontrastowy 25 1.3.4. Mikroskop interferencyjny 27 1.3.5. Kontrast interferencyjno-róŝnicowy (optyka Nomarskiego) 27 1.3.6. Mikroskop fluorescencyjny 28 1.3.7. Mikroskop konfokalny 30 1.3.8. Mikroskop dwufotonowy 32 1.3.9. Mikroskop odwrócony 32 1.3.10. Mikroskop cyfrowy 33 1.4. Rejestracja obrazu mikroskopowego 34 1.4.1. Mikrofotografia 34 1.4.2. Wideo mikroskopia 35 1.4.3. Mikroskopia wirtualna 35 2. Mikroskopy elektronowe 37 2.1. Zasady optyki elektronowej 37 2.2. Transmisyjny mikroskop elektronowy 40 2.2.1. Działo elektronowe 41 2.2.2. Kondensor 42 2.2.3. Soczewka obiektywowa 42 2.2.4. Soczewki projekcyjne 42 2.2.5. Stolik przedmiotowy 42 2.2.6. Ekran luminescencyjny 43 2.2.7. System fotograficznej rejestracji obrazu 43 2.2.8. Zespól pomp próŝniowych 44 2.2.9. Pulpit sterowniczy 44 2.3. Wysokonapięciowy mikroskop elektronowy 45 2.4. Skaningowy mikroskop elektronowy 45 2.5. Niskonapięciowy mikroskop elektronowy 47 2.6. Mikroanalizator rentgenowski 47

3. Przygotowanie materiału do badań w mikroskopie świetlnym 49 3.1. Rodzaje preparatów mikroskopowych 49 3.2. Pobieranie materiału 50 3.3. Utrwalanie 51 3.3.1. Cele utrwalania 51 3.3.2. Rodzaje utrwalaczy 52 3.3.3. Metody utrwalania 52 3.3.4. Chemiczne podstawy procesu utrwalania 54 3.3.5. Oddziaływanie mikrofal na tkankę 55 3.3.6. Wypłukiwanie utrwalacza 55 3.4. Odwadnianie 55 3.5. Płyny pośrednie 56 3.6. Zatapianie w parafinie 56 3.6.1. Formowanie bloczków 5 7 3.6.2. Alternatywna technika parafinowa: opracowanie materiału bez rozpuszczalników organicznych za pomocą mikrofal (ang. microwave paraffin processing) 58 3.6.3. Zalety i ograniczenia techniki parafinowej 58 3.7. Zatapianie w celoidynie 59 3.8. Zatapianie w Ŝywicach 59 3.8.1. Zatapianie w Ŝywicach akrylowych 60 3.8.2. Zatapianie w Ŝywicach epoksydowych 60 3.9. Krojenie skrawków 60 3.9.1. Mikrotomy 60 3.9.2. Zasady krojenia 62 3.9.3. Krojenie skrawków parafinowych 63 3.9.4. Krojenie skrawków celoidynowych 64 3.9.5. Krojenie skrawków z Ŝywic akrylowych 65 3.9.6. Krojenie skrawków z Ŝywic epoksydowych 65 3.10. Barwienie 65 3.10.1. Przygotowanie skrawków do barwienia 65 3.10.2. Barwienie barwnikami kwaśnymi i zasadowymi 66 3.10.3. Barwienie przyŝyciowe 67 3.10.4. Impregnacja związkami metali 67 3.10.5. Bejcowanie 67 3.10.6. RóŜnicowanie 68 3.10.7. Płukanie 68 3.11. Zamykanie preparatów 68 3.12. Automatyzacja procesów opracowania materiału do badań mikroskopowych 69 3.13. Przygotowanie tkanek zmineralizowanych do badań mikroskopowych 70 3.13.1. Technika szlifów 70 3.13.2. Technika skrawków 71 3.14. Przepisy praktyczne 73 3.14.1. Utrwalacze 73 3.14.2. Odwadnianie 74

3.14.3. Zatapianie w parafinie 75 3.14.4. Zatapianie w celoidynie 76 3.14.5. Zatapianie w Ŝywicy akrylowej Histocryl 77 3.14.6. Barwienie hematoksyliną i eozyną 77 3.14.7. Barwienie trichromem Massona 78 3.14.8. Barwienie włókien spręŝystych rezorcyno-fuksyną 78 3.14.9. Impregnacja srebrem włókien kratkowych (metoda Gomoriego) 79 3.14.10. Barwienie rozmazów krwi i szpiku metodą Maya-Grxinwalda i Giemsy 80 3.14.11. Barwienie wymazów pochwowych metodą Papanicolaou 80 4. Przygotowanie materiału do badań w mikroskopie elektronowym 83 4.1. Utrwalanie pierwotne 83 4.1.1. Rodzaje utrwalaczy 83 4.1.2. ph utrwalacza 84 4.1.3. Osmolarność utrwalacza 84 4.1.4. Temperatura utrwalania 84 4.1.5. Wypłukiwanie utrwalacza 84 4.2. Osmowanie (utrwalanie wtórne) 85 4.3. Odwadnianie 85 4.4. Zatapianie 85 4.4.1. Zatapianie w Ŝywicach epoksydowych 85 4.4.2. Zatapianie w Ŝywicach akrylowych 86 4.5. Krojenie skrawków 86 4.5.1. Przygotowanie bloczka do krojenia (trymowanie) 86 4.5.2. Ultramikrotomy 87 4.5.3. Przygotowanie noŝa szklanego 88 4.5.4. Krojenie i ocena grubości skrawków 89 4.6. Montowanie skrawków 90 4.7. Kontrastowanie skrawków 90 4.8. Specjalne techniki przygotowania materiału do badań w transmisyjnym mikroskopie elektronowym 91 4.8.1. Technika barwienia negatywowego 91 4.8.2. Technika cieniowania metalami 92 4.8.3. Technika replik 92 4.8.4. Technika mroŝenia i łamania (ang. freeze-fracture) 93 4.9. Przygotowanie materiału do badań w skaningowym mikroskopie elektronowym 95 4.9.1. Suszenie w punkcie krytycznym 95 4.9.2. Napylanie próŝniowe 95 4.9.3. Technika odlewów mikrokorozyjnych 9 7 4.10. Przepisy praktyczne 9 7 4.10.1. Utrwalacze 97 4.10.2. Odwadnianie 98 4.10.3. Zatapianie w Ŝywicy Epon 812 98 4.10.4. Zatapianie w Ŝywicy Araldite 99 4.10.5. Barwienie skrawków półcienkich do celów mikroskopii świetlnej 99

4.10.6. Barwienie (kontrastowanie) skrawków ultracienkich do celów mikroskopii elektronowej 100 5. Technika mroŝeniowa 101 5.1. ZamraŜanie materiału 101 5.1.1. Fizyczne podstawy zamraŝania materiału biologicznego 101 5.1.2. ZamraŜanie w ciekłych gazach 102 5.1.3. ZamraŜanie dwutlenkiem węgla 103 5.1.4. ZamraŜanie w kriostacie 103 5.1.5. Krioprotekcja 104 5.2. Przechowywanie zamroŝonego materiału 104 5.3. Krojenie skrawków z zamroŝonego materiału 104 5.3.1. Kriostat 104 5.3.2. Krioultramikrotom 106 5.4. MroŜenie z substytucją (podstawianiem) 107 5.5. Liofilizacja 107 5.5.1. Fizyczne podstawy procesu liofilizacji 107 5.5.2. Przebieg procesu liofilizacji 108 5.5.3. Przygotowanie materiału liofilizowanego do badań mikroskopowych 109 5.5.4. Zastosowanie liofilizacji 109 6. Podstawy klasycznej histochemii 111 6.1. Reakcje histochemiczne 111 6.1.1. Podstawy reakcji histochemicznych 111 6.1.2. Typy reakcji histochemicznych 112 6.2. Przygotowanie materiału do badań histochemicznych 112 6.2.1. Utrwalanie 113 6.2.2. Przygotowanie materiału do badań w mikroskopie świetlnym 113 6.2.3. Przygotowanie materiału do badań w transmisyjnym mikroskopie elektronowym 114 6.3. Wykrywanie białek 114 6.4. Wykrywanie cukrowców 115 6.4.1. Reakcja PAS (ang. Periodic Acid-Schiff) 115 6.4.2. Wykrywanie kwaśnych glikozoaminoglikanów błękitem alcjanowym 116 6.4.3. Wykrywanie kwaśnych glikozoaminoglikanów Ŝelazem koloidalnym 116 6.4.4. Metachromazja 117 6.5. Wykrywanie lipidów 117 6.6. Wykrywanie kwasów nukleinowych 118 6.6.1. Reakcja Feulgena 118 6.6.2. Metoda Bracheta 118 6.6.3. Metody fluorescencyjne 119 6.7. Wykrywanie amin biogennych 120 6.8. Wykrywanie wybranych składników patologicznych 120 6.8.1. Hemosyderyna i złogi Ŝelaza 120 6.8.2. Lipofuscyny 121 6.8.3. Amyloid 121 6.9. Wykrywanie enzymów 121 6.9.1. Reakcja histoenzymatyczna 122

6.9.2. Reakcja precypitacji z kationami metali (reakcja Gomoriego) 122 6.9.3. Reakcja sprzęgania do związków azowych 123 6.9.4. Reakcja indygogenna 123 6.9.5. Reakcja utleniania lub redukcji substratu 123 6.10. Reakcje kontrolne 124 6.11. Przepisy praktyczne 125 6.11.1. Reakcja PAS 125 6.11.2. Reakcja Feulgena 126 6.11.3. Wykrywanie białek błękitem bromofenolowym 126 6.11.4. Barwienie lipidów Sudanem III i IV 127 6.11.5. Fluorescencyjna metoda wykrywania amin biogennych 127 6.11.6. Wykrywanie fosfatazy alkalicznej metodą sprzęgania 127 6.11.7. Wykrywanie kwaśnych hydrolaz lizosomowych metodą sprzęgania 128 6.11.8. Wykrywanie dehydrogenaz 129 6.11.9. Wykrywanie peroksydaz 129 6.11.10. Metoda score" 130 7. Podstawy immunohistochemii 131 7.1. Antygen i przeciwciało 131 7.2. Otrzymywanie i oczyszczanie przeciwciał do badań immunohistochemicznych 133 7.2.1. Otrzymywanie przeciwciał poliklonałnych 133 7.2.2. Otrzymywanie przeciwciał monoklonalnych 134 7.3. Znakowanie przeciwciał 136 7.3.1. Znakowanie fluorochromami 136 7.3.2. Znakowanie enzymami 137 7.3.3. Znakowanie ferrytyną 138 7.3.4. Znakowanie koloidalnym złotem 139 7.4. Przygotowanie materiału do badań immunohistochemicznych 139 7.4.1. Utrwalanie 139 7.4.2. Zatapianie 140 7.4.3. Naklejanie skrawków 140 7.4.4. Odsłanianie miejsc antygenowych 141 7.5. Wykonanie reakcji immunohistochemicznej 141 7.5.1. Mikroskopia świetlna 141 7.5.2. Mikroskopia elektronowa 142 7.6. Typy reakcji immunohistochemicznych 143 7.6.1. Reakcja bezpośrednia 143 7.6.2. Reakcja pośrednia dwuetapowa 144 7.6.3. Reakcja z mostkiem immunoglobulinowym i kompleksem enzymantyenzym 145 7.6.4. Reakcja z białkiem A 147 7.6.5. Reakcja z awidyną i biotyną 147 7.6.6. Reakcja z łańcuchami polimerowymi 149 7.6.7. Wzmocnienie reakcji za pomocą tyramidów 149 7.6.8. Jednoczesne wykrywanie kilku antygenów 151 7.7. Reakcje kontrolne 151 7.8. Wykrywanie reszt cukrowcowych za pomocą lektyn 152

7.9. Przepisy praktyczne 154 7.9.1. Pośrednia reakcja immunofluorescencyjna na skrawkach parafinowych 154 8. Hybrydyzacja in situ 157 8.1. Wytwarzanie i rodzaje sond 158 8.2. Znakowanie sond 159 8.3. Przygotowanie materiału do hybrydyzacji in situ 160 8.3.1. Utrwalanie 160 8.3.2. Zatapianie 160 8.3.3. Permeabilizacja 160 8.3.4. Zapobieganie reakcjom nieswoistym 161 8.4. Hybrydyzacja 162 8.4.1. Denaturacja kwasów nukleinowych 162 8.4.2. Hybrydyzacja i wpływające na nią czynniki 162 8.5. Wykrywanie sond związanych z tkanką 163 8.6. Reakcje kontrolne 163 8.7. Łańcuchowa reakcja polimerazy in situ (in situ PCR) 164 8.8. Metoda PRINS 165 9. Fluorescencyjne metody badania Ŝywych komórek 167 9.1. Znaczniki organelli komórkowych 167 9.2. Znaczniki wewnątrzkomórkowego stęŝenia jonów i potencjału elektrycznego 168 9.3. Metoda FRET 169 9.4. Białka fluoryzujące 170 9.4.1. Białka fluoryzujące jako znaczniki białek wewnątrzkomórkowych 170 9.4.2. Białka fluoryzujące jako wskaźniki ekspresji genów 171 9.4.3. Białka fluoryzujące jako znaczniki linii komórkowych 172 10. Podstawy autoradiografii 173 10.1. ZałoŜenia techniki autoradiograficznej 173 10.2. Zastosowanie autoradiografii 174 10.3. Izotopy promieniotwórcze stosowane w autoradiografii 175 10.4. Wprowadzanie znakowanych substancji do komórek i tkanek 175 10.5. Przygotowanie preparatu autoradiograficznego (autoradiogramu) 176 10.5.1. Technika emulsji zdzieranej 176 10.5.2. Technika emulsji płynnej 176 10.6. Ekspozycja 177 10.7. Wywołanie autoradiogramu 178 10.8. Procedura histologiczna towarzysząca autoradiografii 178 10.9. Zdolność rozdzielcza autoradiogramów 178 10.10. Tło 179 10.11. Reakcje kontrolne 180 10.12. Opracowanie i ocena wyników 180 10.13. WyposaŜenie pracowni autoradiograficznej 181

11. Hodowla komórek i tkanek 183 11.1. Klasyfikacja i terminologia 183 11.2. Ustalone linie komórkowe 184 11.3. PoŜywki i warunki hodowli 184 11.4. Metodyka hodowli 186 11.5. Kontrola Ŝywotności komórek w hodowli 187 11.6. Transformacja komórek 188 11.7. Agregacja i segregacja komórek 188 11.8. Fuzja i hybrydyzacja komórek 189 11.9. Hodowla fibroblastów, leukocytów i limfocytów 189 11.10. Zastosowanie hodowli komórek i tkanek 190 11.11. Przepisy praktyczne 191 11.11.1. Zakładanie hodowli fibroblastów 191 11.11.2. Zakładanie hodowli leukocytów 191 11.11.3. Ocena Ŝywotności komórek 191 12. Analiza ilościowa preparatów mikroskopowych 193 12.1. Densytometria i fluorymetria 194 12.1.1. Fizyczne podstawy densytometrii 194 12.1.2. Metodyka pomiarów densytometrycznych i fluorymetrycznych 195 12.1.3. Urządzenia stosowane w densytometrii i fluorymetrii 196 12.2. Cytometria przepływowa 196 12.2.1. Fizyczne podstawy pomiaru cytometrycznego 197 12.2.2. Budowa cytometru 197 12.2.3. Przygotowanie komórek do pomiarów cytometrycznych 199 12.2.4. Zastosowanie badań cytometrycznych 200 12.3. Morfometria 201 12.3.1. Planimetria 201 12.3.2. Stereologia 201 12.3.3. Tradycyjne narzędzia stosowane w badaniach morfometrycznych 202 12.4. Komputerowa (cyfrowa) analiza obrazu 202 12.4.1. Przekształcanie obrazu mikroskopowego w formę cyfrową 203 12.4.2. Przetwarzanie obrazu cyfrowego 204 12.4.3. Analiza morfometryczna wybranych obiektów 208 12.4.4. Analiza fotometryczna wybranych obiektów 208 12.4.5. Urządzenia do komputerowej analizy obrazu 208 12.4.6. Przygotowanie preparatów do automatycznych pomiarów ilościowych 209 oprac. BPK