Ćw. 5 Absorpcjometria I

Podobne dokumenty
OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

Metody spektroskopowe:

Techniki analityczne. Podział technik analitycznych. Metody spektroskopowe. Spektroskopia elektronowa

SPEKTROFOTOMETRYCZNA ANALIZA ZAWARTOŚCI SUBSTANCJI W PRÓBCE

ANALIZA INSTRUMENTALNA

SPEKTROFOTOMETRIA UV-Vis. - długość fali [nm, m], - częstość drgań [Hz; 1 Hz = 1 cykl/s]

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII OGÓLNEJ I ANALITYCZNEJ DLA STUDENTÓW I ROKU OCHRONY ŚRODOWISKA

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

OZNACZANIE STĘŻENIA BARWNIKÓW W WODZIE METODĄ UV-VIS

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

E (2) nazywa się absorbancją.

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

PRODUKTY CHEMICZNE Ćwiczenie nr 3 Oznaczanie zawartości oksygenatów w paliwach metodą FTIR

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Dobór metody analitycznej

Ćwiczenie 1. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp. Część teoretyczna.

Ćwiczenie 2: Metody spektralne w inżynierii materiałowej AKADEMIA GÓRNICZO- HUTNICZA WYDZIAŁ ODLEWNICTWA KATEDRA INŻYNIERII PROCESÓW ODLEWNICZYCH

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Klasa czystości I II III IV V

Ćwiczenie 31. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

SPEKTROFOTOMETRYCZNA ANALIZA

ĆWICZENIE 11. ANALIZA INSTRUMENTALNA KOLORYMETRIA - OZNACZANIE Cr(VI) METODĄ DIFENYLOKARBAZYDOWĄ. DZIAŁ: Kolorymetria

ĆWICZENIE NR 3 POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE

Podstawy chemii analitycznej: dysocjacja, hydroliza, roztwory buforowe

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

Oznaczanie chlorowodoru w powietrzu atmosferycznym

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

KOLORYMETRYCZNE OZNACZANIE Cd, Mn i Ni

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

K02 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

Spis treści. Wstęp. Twardość wody

Atomowa spektrometria absorpcyjna i emisyjna

Ćwiczenie 30. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna w zakresie UV-VIS, prawa absorpcji, budowa i. Wstęp

Szkoła Letnia STC Łódź 2013 Oznaczanie zabarwienia cukru białego, cukrów surowych i specjalnych w roztworze wodnym i metodą MOPS przy ph 7,0

PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

data ĆWICZENIE 7 DYSTRYBUCJA TKANKOWA AMIDOHYDROLAZ

1. PRZYGOTOWANIE PRÓB KORYGUJĄCYCH

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

Ćwiczenie 2. Fotometryczne oznaczanie zawartości białka

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA ( AAS )

Ćwiczenie 3: Ocena fizykochemiczna nawozów stałych fosforowych różne formy P 2 O 5

Ćwiczenie 3 ANALIZA JAKOŚCIOWA PALIW ZA POMOCĄ SPEKTROFOTOMETRII FTIR (Fourier Transform Infrared Spectroscopy)

Fizykochemiczne metody w kryminalistyce. Wykład 7

Jan Drzymała ANALIZA INSTRUMENTALNA SPEKTROSKOPIA W ŚWIETLE WIDZIALNYM I PODCZERWONYM

ĆWICZENIE NR 3 BADANIE MIKROBIOLOGICZNEGO UTLENIENIA AMONIAKU DO AZOTYNÓW ZA POMOCĄ BAKTERII NITROSOMONAS sp.

OZNACZANIE INDEKSU FENOLOWEGO W WODZIE

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

Zastosowanie spektrofotometrii w nadfiolecie i świetle widzialnym (UV-VIS) do oznaczania fenoli w wodzie

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

BADANIE ZAWARTOŚCI ZWIĄZKÓW AZOTU. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO(V) METODĄ KOLORYMETRYCZNĄ.

Laboratorium 4. Określenie aktywności katalitycznej enzymu. Wprowadzenie do metod analitycznych. 1. CZĘŚĆ TEORETYCZNA

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z FIZYKOCHEMICZNYCH PODSTAW ŻYCIA DLA STUDENTÓW I ROKU BIOLOGII OGÓLNEJ, BIOTECHNOLOGII I BIOINFORMATYKI

ABSORPCYJNA SPEKTORFOTOMETRIA CZĄSTECZKOWA

Synteza nanocząstek Ag i pomiar widma absorpcyjnego

Optyczna spektroskopia oscylacyjna. w badaniach powierzchni

POLITECHNIKA WROCŁAWSKA INSTYTUT TECHNOLOGII NIEORGANICZNEJ I NAWOZÓW MINERALNYCH. Ćwiczenie nr 6. Adam Pawełczyk

10. ALKACYMETRIA. 10. Alkacymetria

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

KONDUKTOMETRIA. Konduktometria. Przewodnictwo elektrolityczne. Przewodnictwo elektrolityczne zaleŝy od:

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

SPECYFIKACJA WYMAGAŃ UŻYTKOWNIKA URZĄDZENIA (URS) Urządzenie: Spektrofotometr (Propozycja zakupu)

DETEKCJA W MIKRO- I NANOOBJĘTOŚCIACH. Ćwiczenie nr 3 Detektor optyczny do pomiarów fluorescencyjnych

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

Ćwiczenie O 13 -O 16 BADANIE ABSORPCJI ŚWIATŁA W MATERII Instrukcja dla studenta

TRANSPORT NIEELEKTROLITÓW PRZEZ BŁONY WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PRZEPUSZCZALNOŚCI

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

3. Badanie kinetyki enzymów

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

OCENA CZYSTOŚCI WODY NA PODSTAWIE POMIARÓW PRZEWODNICTWA. OZNACZANIE STĘŻENIA WODOROTLENKU SODU METODĄ MIARECZKOWANIA KONDUKTOMETRYCZNEGO

RSM ROZTWÓR SALETRZANO-MOCZNIKOWY

REFRAKTOMETRIA. 19. Oznaczanie stężenia gliceryny w roztworze wodnym

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

Transkrypt:

Ćw. 5 Absorpcjometria I Absorpcja promieniowania elektromagnetycznego z obszaru widzialnego i nadfioletowego przez atomy i cząsteczki powoduje zmianę ich stanu elektronowego. Zjawiska te moŝna badać za pośrednictwem elektronowych widm absorpcyjnych. Metoda optyczna wykorzystująca absorpcję promieniowania elektromagnetycznego w nadfiolecie (z ang. Ultra-Violet = UV) i w zakresie widzialnym (ang. visible = Vis.) przez substancje nosi nazwę spektrofotometrii UV Vis. Jest to metoda szeroko wykorzystywana w analizie jakościowej I ilościowej związków organicznych i nieorganicznych. Dla widm optycznych sformułowano ogólne prawa absorpcji promieniowania wiąŝące wielkość absorpcji z ilością badanej substancji. Prawa absorpcji I prawo absorpcji (prawo Bouguera Lamberta). Wiązka światła monochromatycznego przy przechodzeniu przez jednorodny ośrodek absorbujący o grubości l ulega osłabieniu wg równania: I = I 0 e -k l gdzie: I 0 - natęŝenie wiązki promieniowania monochromatycznego padającego na jednorodny ośrodek absorbujący, I - natęŝenie promieniowania po przejściu przez ośrodek absorbujący, k - współczynnik absorpcji, charakterystyczny dla danej substancji przy określonej długości fali promieniowania. ZaleŜność tę wygodniej jest przedstawić w formie logarytmicznej: A = ln(i 0 /I) =k l lub: A = 1og(I 0 /I) = a l gdzie: a = 0,4343 k A zdolność pochłaniania promieniowania przez ośrodek materialny, zwana absorbancją. Obok terminu absorbancja uŝywane są takŝe inne terminy, takie jak: wartość absorpcji, ekstynkcja (E) lub gęstość optyczna. I prawo absorpcji moŝna takŝe sformułować w następujący sposób: absorbancja jest proporcjonalna do grubości warstwy absorbującej, o ile wiązka promieniowania monochromatycznego przechodzi przez jednorodny ośrodek absorbujący. Często przy określeniu ilości zaabsorbowanego promieniowania spotykamy się z wielkością określoną mianem transmitancji (T), zdefiniowanej następująco: T = I / I 0 A zatem: A = log(1/t) Wartość transmitancji podawana jest najczęściej w procentach. Wtedy: %T = I / I 0 100% II prawo absorpcji (prawo Beera). Prawo to dotyczy absorpcji promieniowania elektromagnetycznego przez roztwory i moŝna je sformułować w następujący sposób: w przypadku, gdy współczynnik absorpcji rozpuszczalnika 1

jest równy zeru, to wiązka promieniowania monochromatycznego przy przechodzeniu przez jednorodny roztwór substancji absorbującej o stęŝeniu c ulega osłabieniu według równania: I = I 0 e -k l c W formie logarytmicznej zaleŝność ta ma postać: A = ln(i 0 /I) = k l c lub: A = 1og(I 0 /I) = a l c Prawo to moŝna takŝe sformułować w ten sposób: w przypadku, gdy współczynnik absorpcji rozpuszczalnika jest równy zeru, to absorbancja wiązki promieniowania monochromatycznego przechodzącej przez jednorodny roztwór jest wprost proporcjonalna do stęŝenia roztworu c i do grubości warstwy absorbującej l. III prawo absorpcji (prawo addytywności absorpcji). Absorbancja roztworu wieloskładnikowego równa się sumie absorbancji poszczególnych składników: A = A 1 + A 2 + A 3 + + A n gdzie: A 1, A 2, A 3, A n - absorbancje składników roztworu Prawo addytywności umoŝliwia analizę ilościową układów wieloskładnikowych. W równaniu na absorbancję: A = a l c wielkością jest właściwym współczynnikiem absorpcji w przypadku, gdy stęŝenie wyraŝamy w g/cm 3. Natomiast, gdy stęŝenie wyraŝone jest w molach/dm 3 równanie to przybiera postać: A = l c. Współczynnik nazywamy molowym współczynnikiem absorpcji. Wartość A za1eŝy od stęŝenia roztworu, a funkcja A = f(c) jest linią prostą, a ile roztwór spełnia prawo Beera (rys. 1). Często występują odchylenia od praw absorpcji i wówczas funkcja ta przyjmuje postać przedstawioną na rys. 2. Wielkość stęŝenia substancji, przy którym zaczynają pojawiać się odchylenia od praw absorpcji zaleŝy od natury oznaczanej substancji, stopnia monochromatyczności pochłanianego promieniowania, czułości aparatu i obecności substancji towarzyszących. Najczęściej 2

spotykanym odchyleniem jest tzw. odchylenie ujemne, którego przyczyną jest fakt, Ŝe ze wzrostem stęŝenia cząsteczki mogą ulegać polimeryzacji, asocjacji lub solwatacji. Aparatura Spektrofotometr Marcel Mini-2 produkcji polskiej firmy Marcel. Spektrofotometr Marcel Mini-2 Instrukcja obsługi spektrofotometru I> Pomiar widmowy - Naciśnij 1 i wybierz Zatwierdź (uruchomienie programu) - WłóŜ kuwetę z wodą destylowaną i naciśnij ZERO A - WłóŜ kuwetę z próbką i naciśnij START - Strzałkami nawigacji ustaw maksimum absorbancji i odczytaj długość fali dla maksymalnej absorbancji - Naciśnij WYDRUK i 3 ( Tabela Pomiarów ) - Z wydruku (tabeli) odczytaj ponownie długość fali dla maksymalnej wartości absorbancji - Naciśnij PROGRAM (powrót do menu) II> Pomiar stęŝenia fenoli - Naciśnij 2 i Zatwierdź - włóŝ kuwetę z wodą destylowaną i naciśnij ZERO A - włóŝ kuwetę z próbką i naciśnij KALIBRACJA, KALIBRACJA - kiedy w podświetlonym okienku pojawi się wartość zmierzonej absorbancji naciśnij 3

START. WłóŜ kuwetę z następną próbką i powtarzaj w/w czynność dla wszystkich 5 próbek (krzywa kalibracyjna). - Naciśnij ZATWIERDŹ, ZATWIERDŹ - WłóŜ kuwetę z próbką (analiza) i odczytaj wartość absorbancji i wyliczonego przez program stęŝenia. - Naciśnij WYDRUK -Naciśnij PROGRAM (powrót do menu) III> Pomiar stęŝenia azotynów - Naciśnij 3 i Zatwierdź - włóŝ kuwetę z wodą destylowaną i naciśnij ZERO A - włóŝ kuwetę z próbką i naciśnij KALIBRACJA, KALIBRACJA -kiedy w podświetlonym okienku pojawi się wartość zmierzonej absorbancji, naciśnij START. WłóŜ kuwetę z następną próbką i powtarzaj w/w czynność dla wszystkich 5 próbek (krzywa kalibracyjna). - Naciśnij ZATWIERDŹ, ZATWIERDŹ - WłóŜ kuwetę z próbką (analiza) i odczytaj wynik. - Naciśnij WYDRUK - Naciśnij PROGRAM (powrót do menu) Wykonanie ćwiczenia 1: Absorpcjometryczne oznaczanie azotynów w ekstrakcie z gleby. Zasada oznaczenia Azotyny w roztworze kwaśnym (ph = 2-2,5) reagują z kwasem sulfanilowym: Powstały związek dwuazoniowy ulega reakcji sprzęgania z α-naftylaminą, w wyniku czego powstaje barwnik dwuazowy o zabarwieniu czerwonofioletowym: PoniewaŜ intensywność powstałego zabarwienia jest proporcjonalna do ilości azotynów w roztworze, moŝna określić ich zawartość w nieznanej próbce przez pomiar absorbancji przy długości fali odpowiadającej maksimum absorpcji otrzymanego barwnika i odczytanie stęŝenia azotynów z krzywej wzorcowej: A = f(c). 4

Odczynniki roztwór azotynu sodowego zawierający 0,0001 mg/cm 3 jonów NO 2 - roztwór kwasu sulfanilowego zawierający 8 g kwasu w 1 dm 3 roztworu roztwór α-naftylaminy zawierający 0,5 g substancji w 100 cm 3 roztworu Opis czynności 1. Odmierzyć do kolbek miarowych o poj. 50 cm 3 następujące ilości wzorcowego roztworu azotynów: 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14 i 16 cm 3. 2. Do kaŝdej kolbki dodać: 10 cm 3 wody destylowanej. 1 cm 3 roztworu kwasu sulfanilowego, odczekać 5 minut i wprowadzić 1 cm 3 α-naftylaminy, dopełnić roztwory wodą destylowaną do kreski i wymieszać. 3. Wykonać wykres zaleŝności absorbancji od długości fali ( od 420 do 600 nm) dla próbki o największym stęŝeniu. 4. Zmierzyć absorbancję poszczególnych roztworów wobec wody jako odnośnika przy długości fali, dla kt6rej absorbancja jest największa. 5. Do otrzymanego do analizy roztworu dodać 10 cm 3 wody destylowanej, 1 cm 3 roztworu kwasu sulfanilowego, odczekać 5 minut i wprowadzić 1 cm 3 α-naftylaminy, dopełnić roztwór wodą destylowaną do kreski i wymieszać. 6. Zmierzyć absorbancję badanego roztworu (grubość kuwety, długość fali światła dobrać tak dla roztworów wzorcowych). 7. Otrzymane wartości absorbancji zaznaczyć na wykresie w układzie współrzędnych: absorbancja (A) i stęŝenie N0 2 - (w mg). Wykreślić krzywą wzorcową. Z wykresu odczytać oznaczoną ilość N0 2 - (mg). Wykonanie ćwiczenia 2: Oznaczanie fenolu w wodzie. Jednym z toksycznych zanieczyszczeń wody jest fenol, który często przenika ze ścieków wielu fabryk chemicznych do wód powierzchniowych, a niekiedy i do gruntowych. Oznaczenie ilościowe tego związku w ściekach, wodach powierzchniowych, a zwłaszcza w wodzie przeznaczonej do picia jest szczególnie istotne z punktu widzenia ochrony środowiska. Wiadomo bowiem, Ŝe juŝ stęŝenie fenolu powyŝej 0,5 mmoli/dm 3 obniŝa wartość konsumpcyjną wody, a wyŝsze jego zawartości są szkodliwe dla zdrowia człowieka i często zabójcze dla fauny rzek i strumieni. Do oznaczania niskich stęŝeń fenolu w wodzie dogodne są metody fotometryczne i spektrofotometryczne. Znanych jest wiele reakcji fenolu z róŝnymi odczynnikami prowadzące do otrzymania barwnych związków. Pomiar absorbancji roztworów otrzymanych substancji barwnych prowadzi do ilościowego oznaczenia fenolu w oparciu o krzywą wzorcową. Jednym ze stosowanych często odczynników do przeprowadzenia barwnej reakcji z fenolem jest 4-aminoantypiryna. Metoda, w której wykorzystuje się ten odczynnik pozwala na oznaczenie fenolu występującego w minimalnym stęŝeniu 0,05 mmoli/dm 3. 5

Odczynniki: 2% wodny roztwór 4-aminoantypiryny 2 M roztwór amoniaku 1% roztwór K 3 [Fe(CN) 6 ] roztwór wzorcowy fenolu (1 10-4 mol/dm 3 ) Opis czynności. 1. Przygotować serię roztworów wzorcowych. Do 5 kolbek o poj. 50 cm 3 odpipetować następujące objętości roztworu podstawowego: 3, 6, 9, 15 i 20 cm 3 (0,06; 0,12; 0,18; 0,30 i 0.40 mmo1i/dm 3 ). 2. Do kaŝdej kolbki dodać 20 cm 3 wody destylowanej, 0,3 cm 3 roztworu 4-aminoantypiryny, 1 cm 3 roztworu amoniaku i 1 cm 3 roztworu Ŝelazicyjanku potasu. Dopełnić roztwory wodą destylowaną do kreski. 3. W ten sam sposób, jak w punkcie 2, postąpić z otrzymaną do analizy próbką. 4. Po upływie 5 minut zmierzyć absorbancję roztworów wzorcowych i roztworu próbki przy długości fali 510 nm. 5. Otrzymane wartości absorbancji nanieść na wykres A = f(c). Wyznaczyć z wykresu stęŝenie analizowanej próbki i podać wynik (po przeliczeniu) w ug fenolu (masa cząsteczkowa fenolu wynosi 94). Sprawozdanie powinno zawierać wszystkie wydruki z pomiarów przeprowadzonych w tym ćwiczeniu. NaleŜy takŝe samodzielnie(w Excelu) wykreślić krzywą kalibracyjną, wyznaczyć jej równanie i uŝyć do obliczenia zawartości analitu w otrzymanej próbce. 6