Otrzymywanie 1-fosforanu α-d-glukopiranozy przez fosforolizę skrobi

Podobne dokumenty
Oznaczanie aktywności - i β- amylazy słodu metodą kolorymetryczną

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Chemia Organiczna Syntezy

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

Oranż β-naftolu; C 16 H 10 N 2 Na 2 O 4 S, M = 372,32 g/mol; proszek lub

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona

ĆWICZENIE 5. KOPOLIMERYZACJA STYRENU Z BEZWODNIKIEM MALEINOWYM (polimeryzacja w roztworze)

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

PREPARATYKA NIEORGANICZNA. Przykład 1 Ile kilogramów siarczanu(vi) żelaza (II) można otrzymać z 336 kg metalicznego żelaza?

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

OZNACZANIE AKTYWNOŚCI ALKALICZNEJ DIFOSFATAZY (PIROFOSFATAZY)

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Ćwiczenie 1. Zależność szybkości reakcji chemicznych od stężenia reagujących substancji.

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

Ciągły proces otrzymywania bikarbonatu metodą Solvay a

KWAS 1,2-DIBROMO-2-FENYLOPROPIONOWY

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

OTRZYMYWANIE KARBOKSYMETYLOCELULOZY

Kinetyka chemiczna jest działem fizykochemii zajmującym się szybkością i mechanizmem reakcji chemicznych w różnych warunkach. a RT.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

[1 a] Acetanilid LISTA PREPARATÓW. Odczynniki: anilina 15 g lodowaty kwas octowy 15 ml pył cynkowy 0.1 g węgiel aktywny 0.2 g

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

Synteza Cu(CH 3 COO) 2 H 2 O oraz (NH 4 ) 2 Ni(SO 4 ) 2 6H 2 O

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

Ilościowe oznaczenie glikogenu oraz badanie niektórych jego właściwości

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

e) nasiona słonecznika; śruta poekstrakcyjna słonecznikowa; śruta poekstrakcyjna słonecznikowa z częściowo obłuszczonych nasion słonecznika;

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

ENZYMOLOGIA. Ćwiczenie 4. α-amylaza (cz. I) Oznaczanie aktywności enzymu metodą kolorymetryczną

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

Enzymatyczna hydroliza skrobi do produktów małocząsteczkowych

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH: SULFONOWANIE ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

GRAWITACYJNE ZAGĘSZCZANIE OSADÓW

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 6. Manganometryczne oznaczenia Mn 2+ i H 2 O 2

Oznaczanie aktywności enzymów

Cz. XXVIII - c Węglowodany - cukry - sacharydy: disacharydy i polisacharydy

ALKACYMETRIA. Ilościowe oznaczanie HCl metodą miareczkowania alkalimetrycznego

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

KINETYKA INWERSJI SACHAROZY

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

Ćwiczenia laboratoryjne 2

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Kolor i stan skupienia: czerwone ciało stałe. Analiza NMR: Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Synteza eteru allilowo-cykloheksylowego w reakcji alkilowania cykloheksanolu bromkiem allilu w warunkach PTC.

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI CUKRÓW REDUKUJĄCYCH ORAZ CUKRÓW REDUKUJĄCYCH PO INWERSJI

PROCESY JEDNOSTKOWE W TECHNOLOGIACH ŚRODOWISKOWYCH WYMIANA JONOWA

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

1 ekwiwalent 2.5 ekwiwalenta 0.5 ekwiwalenta

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Chemia nieorganiczna Zadanie Poziom: podstawowy

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

Metody rozdziału substancji, czyli śladami Kopciuszka.

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

2 E Jodan(VII) potasu

Kinetyka reakcji hydrolizy sacharozy katalizowanej przez inwertazę

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Katedra Chemii Organicznej. Przemysłowe Syntezy Związków Organicznych Ćwiczenia Laboratoryjne 10 h (2 x5h) Dr hab.

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

CHEMIA SRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Niniejsze rozporządzenie wiąże w całości i jest bezpośrednio stosowane we wszystkich państwach członkowskich.

INSTRUKCJA DO ĆWICZENIA NR 2 CIĄGŁA PRODUKCJA POLI(ALKOHOLU WINYLOWEGO)

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

WYCHOWANIE FIZYCZNE - STUDIA ZAOCZNE 2010/2011

Wyznaczanie krzywej progresji reakcji i obliczenie szybkości początkowej reakcji katalizowanej przez β-fruktofuranozydazy

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Badanie aktywności enzymów z klasy oksydoreduktaz. Oznaczenie witaminy C

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

CHROMATOGRAFIA ADSORPCYJNA I PODZIAŁOWA. 1. Rozdział barwników roślinnych metodą chromatografii adsorpcyjnej (techniką kolumnową)

ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

Transkrypt:

Katedra Chemii rganicznej, Bioorganicznej i Biotechnologii trzymywanie 1-fosforanu α-d-glukopiranozy przez fosforolizę skrobi Prowadzący: Miejsce ćwiczeń: sala 102 mgr inż. Marta Grec

1. Cel ćwiczenia Celem ćwiczenia jest otrzymanie 1-fosforanu α -D-glukopiranozy w wyniku enzymatycznej fosforolizy skrobi 2. Wstęp teoretyczny W organizmach zwierząt 1-fosforan α-d-glukopiranozy stanowi produkt pośredni w metabolizmie glikogenu zapasowej formy glukozy 1. Glikogen jest rozgałęzionym polimerem, złożonym z reszt glukozy. Większość reszt glukozy w glikogenie jest połączona wiązaniami α -1-4-glikozydowymi. Rozgałęzienia, występujące przeciętnie co dziesięć reszt glukozy, tworzone są przez wiązania α-1-6-glikozydowe. Rozkład glikogenu przebiega w trzech etapach: Uwolnienie glukozo-1-fosforanu Przekształcenie glukozo-1-fosforanu w glukozo-6-fosforan Metabolizm glukozo-6-fosforanu (m.in. przetworzenie w wolną glukozę) Ten trójetapowy proces wymaga wspólnego działania kilku enzymów. Pierwszy etap katalizuje fosforylaza glikogenowa. Fosforylaza glikogenowa katalizuje odłączenie pojedynczej reszty glukozy z glikogenu przez dodanie do niej ortofosforanu (P i ). Reakcja ta prowadzi do powstania 1-fosforanu α-d-glukopiranozy. Rozszczepienie wiązania poprzez dodanie ortofosforanu nazywa się fosforolizą (Schemat 1). GLIKGEN + P i GLUKZ-1-FSFRAN + GLIKGEN (n reszt) fosforylaza glikogenowa (n-1 reszt) Schemat 1 Fosforylaza glikogenowa katalizuje kolejne reakcje usuwania reszt glukozowych z nieredukującego końca cząsteczki glikogenu (końca z wolną grupą - przy C-4). rtofosforan rozrywa wiązanie glikozydowe między węglem C-1 reszty końcowej a węglem C-4 reszty z nią sąsiadującej. Przy tym rozszczepieniu zostaje zachowana konfiguracja α przy węglu C-1. Glukozo-1-fosforan uwalniany z glikogenu może być łatwo przekształcany przez fosfoglukomutazę do glukozo-6-fosforanu, który jest ważnym metabolitem pośrednim. Fosforolityczne rozszczepienie glikogenu jest energetycznie korzystne, gdyż uwolniony cukier jest już zfosforylowany. 2

W roślinach występują główne dwie formy zapasowe cukrów: skrobia i sacharoza. Skrobia, podobnie jak glikogen (jej odpowiednik występujący u zwierząt), jest polimerem reszt glukozowych. Jest jednak mniej rozgałęziona niż glikogen. 1-Fosforan α-d-glukopiranozy powstaje zatem również w wyniku reakcji fosforolizy enzymatycznej skrobi (Schemat 2). Katalizatorem tej reakcji jest enzym: α-1,4-glukan: ortofosforan glukozylotransferazy (fosforylaza α -glukanowa). H... H 3 P 4 enzym n H P Schemat 2 W procesie tym fosforylaza α-glukanowa odszczepia od końca łańcucha resztę glukozy i przenosi ją na fosforan nieorganiczny. Powstaje w ten sposób glukozo-1-fosforan, a łańcuch skrobiowy skraca się o jedną cząsteczkę. Zfosforylowana, tj. uaktywniona, glukoza może w takiej postaci ulegać dalszym przemianom. 3. Wykonanie ćwiczenia Sprzęt: - cylinder miarowy 250 ml - kolumny szklane 5/60, 2 2.5/46 - lejek zwykły i do sączenia pod próżnią - zlewki i kolbki stożkowe - sączki - zestaw do sączenia pod próżnią - ph-metr - bagietka Materiał i odczynniki: - bufor fosforanowy (0,8M) o ph=6,7 (250 ml) - skrobia rozpuszczalna - tymol (5% r-r wodny) - octan magnezu czterowodny - 14% r-r amoniaku( 8N ) - Dowex 50 WX 8, 20-50 mesh, zdolność wymienna 1.9 mvala/ml - Amberlyst A-26, 0.3-1.0 mm, zdolność wymienna 1.1 mvala/ml - 5% roztwór HCl - 5% roztwór Na - 5% roztwór K - metanol 3

Przygotowanie buforu fosforanowego Do kolby miarowej na 500 ml wsypać przez suchy lejek 27.8 g NaH 2 P 4 oraz 71.7 g Na 2 HP 4 12 H 2, po czym po dodaniu 300 ml wody destylowanej ogrzać w łaźni wodnej do rozpuszczenia soli. Następnie zawartość kolby dopełnić wodą destylowaną do kreski. Przygotowanie roztworu skrobi 10 g skrobi rozpuszczalnej dodać powoli do 250 ml wrzącej wody, silnie przy tym mieszając zawartość zlewki bagietką szklaną. Po rozpuszczeniu skrobi roztwór chłodzić do temperatury pokojowej. Przygotowanie preparatu enzymatycznego. koło 200g cienko obranych ze skórki ziemniaków przepuścić przez sokowirówkę lub utrzeć na tarce. trzymany sok wlać do cylindra, dodać wody do objętości 250 ml i pozostawić na około 15 do 20 minut, do opadnięcia ziarenek skrobi. Zlany znad osadu sok stosować jako źródło enzymu. trzymywanie 1-fosforanu α-d-glukopiranozy Do zlewki na 800 ml wlać przygotowany roztwór skrobi, sok z ziemniaków i dodać 250 ml buforu fosforanowego oraz 0.5 ml 5% roztworu tymolu i inkubować w temperaturze pokojowej przez 24 godziny. Dla przerwania reakcji inkubat podgrzać do temperatury 95 C na wrzącej łaźni wodnej i utrzymać w tej temperaturze przez 3 minuty, po czym chłodzić do temperatury pokojowej. Skoagulowane białko usunąć przez sączenie na lejku z sączkiem karbowanym (ustawić dwa zestawy). Do przesączu dodać 43g czterowodnego octanu magnezu, mieszając do momentu rozpuszczenia soli, po czym za pomocą 14% roztworu amoniaku ustawić ph roztworu na 8.5. Zobojętnianie wykonać mierząc zmiany ph za pomocą pehametru i używając do mieszania mieszadła magnetycznego (zużywa się orientacyjnie około 35 ml 14% roztworu amoniaku). Wytrącony osad fosforanu amonowomagnezowego szybko opada na dno zlewki. Roztwór sączyć na lejku Buchnera. Przesącz poddać chromatografii kolumnowej na wymieniaczach jonowych. Po przepuszczeniu przesączu przez kationit, wyciek należy jak najszybciej przenieść na kolumnę anionitową ze względu na dużą labilność otrzymanego fosforanu w środowisku kwaśnym. Przygotowanie kolumny kationitowej. Przez kolumnę zawierającą 400ml kationitu przepuścić 1,5 dm 3 5% HCl w ciągu 45 minut, a następnie przez około 1 godzinę przemywać kolumnę 3 dm 3 wody destylowanej. Kiedy wyciek osiągnie ph~5.5 przez kolumnę przepuścić mieszaninę inkubacyjną z prędkością 50ml/min. Po naniesieniu całego roztworu, kolumnę przemyć 300 ml wody destylowanej utrzymując tą samą szybkość przepływu. Po wprowadzeniu inkubatu na kolumnę zacząć kontrolować ph wycieku. Gdy ph osiągnie wartość około 2.5 zacząć zbierać wyciek w zlewkach w ilości po 50 ml. Wyciek kierować do przerobu na kolumnie anionitowej A-I. 4

Przygotowanie kolumn anionitowych Kolumnę anionitową, zawierającą 50ml anionitu, przemyć 1 godzinę 500 ml 5% Na, a następnie przez 1 godzinę 2 dm 3 wody destylowanej. Na tak przygotowana kolumnę wprowadzić wyciek z kolumny kationitowej, który przepuszcza się z szybkością 600 ml/godzinę, po czym z tą samą szybkością myć kolumnę wodą destylowaną dla usunięcia resztek skrobi. 1-Fosforan α-d-glukopiranozy wymyć z kolumny 200 ml 5% K. Należy zebrać 4 frakcje po 50 ml, które następnie rozcieńczyć metanolem w stosunku 3:1 (metanol:frakcja) i pozostawić w lodówce do wykrystalizowania fosforanu. trzymane kryształy, które są dihydratem soli dipotasowej 1-fosforanu α -Dglukopiranozy, sączyć na lejku Buchnera. trzymany fosforan wysuszyć. Po wysuszeniu zważyć produkt celem określenia wydajności procesu. [1] J.M. Berg, J.L. Tymoczko, L. Stryer, Biochemia, PWN, Warszawa 2005 5