Inne podejścia do klonowania

Podobne dokumenty
Klonowanie molekularne Kurs doskonalący. Zakład Geriatrii i Gerontologii CMKP

KLONOWANIE DNA REKOMBINACJA DNA WEKTORY

Biologia Molekularna z Biotechnologią ===============================================================================================

Metody odczytu kolejności nukleotydów - sekwencjonowania DNA

Przeglądanie bibliotek

Mapowanie fizyczne genomów -konstrukcja map wyskalowanych w jednostkach fizycznych -najdokładniejszą mapą fizyczną genomu, o największej

O trawieniu restrykcyjnym

Ćwiczenia 1 Wirtualne Klonowanie Prowadzący: mgr inż. Joanna Tymeck-Mulik i mgr Lidia Gaffke. Część teoretyczna:

Ćwiczenia 1 Wirtualne Klonowanie. Prowadzący: mgr Anna Pawlik i mgr Maciej Dylewski. Część teoretyczna:

Techniki molekularne w mikrobiologii SYLABUS A. Informacje ogólne

Powodzenie reakcji PCR wymaga właściwego doboru szeregu parametrów:

2. Enzymy pozwalające na manipulację DNA a. Polimerazy DNA b. Nukleazy c. Ligazy

Najważniejsze z nich to: enzymy restrykcyjne wektory DNA inne enzymy np. ligazy, fosfatazy, polimerazy, nukleazy

Najważniejsze z nich to: enzymy restrykcyjne wektory DNA inne enzymy np. ligazy, fosfatazy, polimerazy, nukleazy

KLONOWANIE DNA REKOMBINACJA DNA WEKTORY

Najważniejsze z nich to: enzymy restrykcyjne wektory DNA inne enzymy np. ligazy, fosfatazy, polimerazy, kinazy, nukleazy

Ligazy. Zastosowanie ligazy w inżynierii genetycznej:

TaqNovaHS. Polimeraza DNA RP902A, RP905A, RP910A, RP925A RP902, RP905, RP910, RP925

Inżynieria Genetyczna ćw. 3

SYLABUS. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki

Metody inżynierii genetycznej SYLABUS A. Informacje ogólne

SYLABUS. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki

TaqNova-RED. Polimeraza DNA RP20R, RP100R

PCR - ang. polymerase chain reaction

Wybrane techniki badania białek -proteomika funkcjonalna

DNA i RNA ENZYMY MODYFIKUJĄCE KOŃCE CZĄSTECZEK. DNA i RNA. DNA i RNA

Nowoczesne systemy ekspresji genów

PODSTAWY BIOTECHNOLOGII Piotr Solarczyk

Rok akademicki: 2014/2015 Kod: EIB BN-s Punkty ECTS: 3. Kierunek: Inżynieria Biomedyczna Specjalność: Bionanotechnologie

TATA box. Enhancery. CGCG ekson intron ekson intron ekson CZĘŚĆ KODUJĄCA GENU TERMINATOR. Elementy regulatorowe

Biotechnologia i inżynieria genetyczna

Wektory DNA - klonowanie molekularne

TRANSKRYPCJA - I etap ekspresji genów

REPLIKACJA, NAPRAWA i REKOMBINACJA DNA

Prof. UG, dr hab. Uniwersytet Gdański, Wydział Chemii, Wita Stwosza 63, Gdańsk tel ,

Polimeraza Taq (1U/ l) 1-2 U 1 polimeraza Taq jako ostatni składniki mieszaniny końcowa objętość

WEKTORY WAHADŁOWE ENZYMY W KLONOWANIU POLIMERAZY

PCR - ang. polymerase chain reaction

Ćwiczenie 5 Klonowanie DNA w wektorach plazmidowych

PCR - ang. polymerase chain reaction

Tematyka zajęć z biologii

Dr. habil. Anna Salek International Bio-Consulting 1 Germany

wykład dla studentów II roku biotechnologii Andrzej Wierzbicki

wykład dla studentów II roku biotechnologii Andrzej Wierzbicki

S YL AB US MODUŁ U ( PRZEDMIOTU) I nforma c j e ogólne

SCENARIUSZ LEKCJI BIOLOGII Z WYKORZYSTANIEM FILMU PCR sposób na DNA.

PROJEKT WSPÓŁFINANSOWANY PRZEZ UNIĘ EUROPEJSKĄ Z EUROPEJSKIEGO FUNDUSZU ROZWOJU REGIONALNEGO 1 z 7

Klonowanie i transgeneza. dr n.med. Katarzyna Wicher

Biologia Molekularna Podstawy

Znaczenie genetyki. Opracował A. Podgórski

Proteomika: umożliwia badanie zestawu wszystkich lub prawie wszystkich białek komórkowych

dostateczny oraz: wyjaśnia, z czego wynika komplementarność zasad przedstawia graficznie regułę

POLIMERAZY DNA- PROCARYOTA

Ćwiczenie 7 Klonowanie DNA w wektorach plazmidowych

Prokariota i Eukariota

POLIMERAZY DNA- PROCARYOTA

Hybrydyzacja kwasów nukleinowych

Transformacja pośrednia składa się z trzech etapów:

SCENARIUSZ LEKCJI. TEMAT LEKCJI: Podstawowe techniki inżynierii genetycznej. Streszczenie

Przetarg nieograniczony na zakup specjalistycznej aparatury laboratoryjnej Znak sprawy: DZ-2501/6/17

Inżynieria Genetyczna ćw. 2

Wymagania edukacyjne Biologia na czasie zakres podstawowy

Wektory DNA - klonowanie molekularne

Metody analizy genomu
























Wymagania edukacyjne z przedmiotu Biologia. Podręcznik Biologia na czasie wyd. Nowa Era, zakres podstawowy Rok szkolny 2013/2014

Specjalność (studia II stopnia) Oczyszczanie i analiza produktów biotechnologicznych

PCR - ang. polymerase chain reaction

Wektory DNA - klonowanie molekularne

Wybrane techniki badania białek -proteomika funkcjonalna

Zarys biologii molekularnej genu. Replikacja i stabilność genomu

PCR łańcuchowa reakcja polimerazy

Wstęp. Jak programować w DNA? Idea oraz przykład. Problem FSAT charakterystyka i rozwiązanie za pomocą DNA. Jak w ogólności rozwiązywać problemy

Jak przygotować poster naukowy

ETYCZNE ASPEKTY INŻYNIERII GENETYCZNEJ

Skąd się wzięła biologia syntetyczna? Co to są standardowe części biologiczne?

Analizy wielkoskalowe w badaniach chromatyny

Screening, klonowanie, ekspresja i oczyszczanie białek

Transkrypt:

Inne podejścia do klonowania 12/14-12-2017 Piotr Gawroński piotr_gawronski@sggw.pl 2/68 pt. 12-13 sites.google.com/site/chlorotfs

Klasyczne klonowanie

Universal TA clonning TdT = terminal deoxynucleotidyl-transferase ddttp = dideoxythymidine triphosphate

Wykorzystanie topoizomerazy

Wykorzystanie topoizomerazy

USER cloning Enzym USER wycina U z produktu PCR

Klonowanie wielu fragmentów

Możliwości systemu USER

Możliwości systemu USER

Sequence/Ligase independent cloning (SLIC) Amplifikacja wektora i GOI aa pomocą acr Wygenerowanie 12-20 nt overhangów dla GOI i wektora wykoraystując aktywność 3 egzonukleazy Pol DNA T4 Dodanie dcta hamuje egaonukleaaę

SLIC pozwala na fuzję wielu fragmentów SLIC pozwala na fuzję do 10 niezależnych fragmentów w odpowiedniej orientacji TaKaRa/Clontach posiada gotowe zestawy do klonowania (In-Fusion)

http://www.clontech.com/pl/products/cloning_and_competent_cells/cloning_resources/online_in-fusion_tools? sitex=10023:22372:us

Klonowanie GIBSONA z wykorzystaniem 5 egzonukleazy, polimerazy DNA i ligazy DNA Klonowanie w mniej niż 2 h Wydajne klonowanie fragmentów do 20 kb Możliwość klonowania do 6 fragmentów jednocześnie Fragmenty powinny zachodzić na siebie na długości 15-40 bp

Klonowanie GIBSONA

http://nebuilder.neb.com/

Golden Gate Cloning Wykorzystanie enzymow restrykcyjnych typu IIS (np. BsaI, BsmBI or BbsI), tworzących lepkie końce poza miejscem rozpoznawanym przez enzym. Enzymy typu IIS pozwalają na tworzenie wielu rożnych lepkich końców Enzymy typu IIS rozpoznają miejsca nie będące palindromami

Golden Gate Pozwala na wydajne klonowanie regionów bogatych w GC oraz sekwencji powtórzonych Możliwość klonowania fragmentów o różnych długościach (< 100 bp to > 15 kb) Możliwość klonowania wielu fragmentów jednocześnie (do 9)

Klonowanie Gateway Zalety technologii Gateway Saybka 1-godainna reakcja klonowania a efektywnością >99% Zachowuje orientację i ramkę odcaytu sklonowanego DNA (klony gotowe do ekspresji) bea koniecaności użycia enaymów restrykcyjnych i ligaay Eliminuje koniecaność resekwencjonowania po każdym etapie praeklonowania Wygodne praenosaenie insertu a międay eksperymentami Rekombinacja oparta na systemie z bakteriofaga Lambda Miejsca rekombinacji at Białko prowadzące do reakcji rekombinacji - Clonase (klonaza)

Gateway

Ścieżka lityczna i lizogeniczna Ścieżka lizogeniczna jest katalizowana przez integrazę (Int) z bakteriofaga λ i Integration Host Factor (IHF) z E. coli (BP Clonase mix) Ścieżka lityczna katalizowana jest przez Int i Excisionase (Xis) z bakteriofaga λ oraz IHF z E. coli (LR Clonase mix)

Schemat klonowania w systemie Gateway Z wykorzystaniem klonazy LR i BP możemy subklonować interesujący nas fragment dowolną ilość razy bez konieczności każdorazowego sekwencjonowania.

Uzyskiwanie klonu Entry Jak uzyskiwać wektory z ccdb?

control of cell death (ccdb) Białko CcdB blokuje gyrazę DNA (topoizomerazę II), która uczestniczy w naprawie DNA gdy komórka produkuje CcdB gyraza jest blokowana, komórka nie jest w stanie naprawić DNA i umiera.

Wykorzystanie pentr/d-topo

Plakaty - wytyczne Rozmiar 70x100 cm (szerokość x wysokość) Ciemna czcionka na jasnym tle Plakaty typu infografika są preferowane Maksymalna redukcja tekstu Termin: 9-11.01.2018 ok. 2 godziny w KGHiBR Hasło: Biotechnologia Arabidopsis125 Można się zgłaszać do POLIMAXu (w Limbie) od początku stycznia.

Programy MS PowerPoint Inkscape (https://inkscape.org/en/) Corel Draw Przed drukiem należy wysłać PDF do dr Marka Kotera (marek_koter@sggw.pl) i czekać na zatwierdzenie