ĆWICZENIE 3 LUMINOFORY ORGANICZNE I NIEORGANICZNE.

Podobne dokumenty
ĆWICZENIE 3 LUMINOFORY ORAZ ZJAWISKA WYGASZANIA LUMINESCENCJI

ĆWICZENIE 2 WYZNACZANIE WYDAJNOŚCI KWANTOWYCH ORAZ CZASÓW ZANIKU LUMINESCENCJI ZWIĄZKÓW W ROZTWORZE ORAZ CIELE STAŁYM, CZ. II.

Wyznaczanie wydajności kwantowej luminescencji oraz czasu zaniku luminescencji związku koordynacyjnego

PRACOWNIA PODSTAW BIOFIZYKI

POLITECHNIKA GDAŃSKA

Instrukcja do ćwiczeń

PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

rodzaje luminescencji (czym wywołana?)

Techniki analityczne. Podział technik analitycznych. Metody spektroskopowe. Spektroskopia elektronowa

Spektroskopia emisyjna. Fluorescencja i Fosforescencja

Instrukcje opracowane przez: dr inż. Urszulę Kucharską dr hab. inż. Joannę Leszczyńską

SF5. Spektroskopia absorpcyjna i emisyjna cząsteczek organicznych

X + hv X* X + ciepło + hv. Ze względu na czynnik, który wywołuje to promieniowanie, luminescencję dzielimy na:

Emisja spontaniczna i wymuszona

Katedra Chemii Nieorganicznej i Analitycznej Uniwersytet Łódzki ul.tamka 12, Łódź

METODYKA POMIARÓW WIDM FLUORESCENCJI (WF) NA MPF-3 (PERKIN-HITACHI)

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Repeta z wykładu nr 11. Detekcja światła. Fluorescencja. Eksperyment optyczny. Sebastian Maćkowski

Spektroskopia Analiza rotacyjna widma cząsteczki N 2. Cel ćwiczenia: Wyznaczenie stałych rotacyjnych i odległości między atomami w cząsteczce N 2

czyli reakcje wymiany ligandów i ich zastosowanie Mateusz Bożejko Edmund Pelc Liceum Ogólnokształcące nr III we Wrocławiu

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Ćwiczenie 1. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp. Część teoretyczna.

SPEKTROSKOPIA MOLEKULARNA 2015/16 nazwa przedmiotu SYLABUS A. Informacje ogólne

PRACOWNIA PODSTAW BIOFIZYKI

Dobór warunków dla poprawnego pomiaru widm emisji i wydajności kwantowych emisji

Pomiary widm fotoluminescencji

Ćwiczenie nr 5 Doświadczenie Franka-Hertza. Pomiar energii wzbudzenia atomów neonu.

Pracownia Spektroskopii Molekularnej A Wydział Chemii Uniwersytetu Warszawskiego. Semestr zimowy 2010/2011. Widma fluorescencyjne chininy

PRODUKTY CHEMICZNE Ćwiczenie nr 3 Oznaczanie zawartości oksygenatów w paliwach metodą FTIR

spektropolarymetrami;

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

METODY SPEKTROSKOPOWE II. UV-VIS od teorii do praktyki Jakub Grynda Katedra Technologii Leków i Biochemii

Spektroskopia molekularna. Spektroskopia w podczerwieni

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ

SPEKTROSKOPIA ATOMOWA I MOLEKULARNA

SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie ryboflawiny.

Warszawa, r. prof. dr hab. inż. Michał Malinowski Zakład Optoelektroniki IMiO Wydział Elektroniki i Technik Informacyjnych PW

Właściwości luminescencyjne fosfinowych związków koordynacyjnych rutenu(ii) z ligandami N-heteroaromatycznymi

WYZNACZANIE ODLEGŁOŚCI KRYTYCZNEJ POMIĘDZY CZĄSTECZKAMI DONORA I AKCEPTORA W PROCESIE REZONANSOWEGO PRZENIESIENIA ENERGII (FRET)

Cel ćwiczenia: Celem ćwiczenia jest zapoznanie z właściwościami optycznymi tkanek i wybranych chromoforów.

2. Metody, których podstawą są widma atomowe 32

Ćwiczenie 31. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp

ZASADY ZALICZENIA PRZEDMIOTU MBS

WYZNACZANIE PARAMETRÓW WYGASZANIA FLUORESCENCJI AKRYDYNY PRZEZ ZWIĄZKI TIOORGANICZNE METODAMI STACJONARNYMI (A) I CZASOWO ROZDZIELCZYMI (B)

Instytut Fizyki Doświadczalnej Wydział Matematyki, Fizyki i Informatyki UNIWERSYTET GDAŃSKI

MIKROSKOP FLUORESCENCYJNY. POMIAR WYDAJNOŚCI KWANTOWEJ FLUORESCENCJI ANTRACENU, PERYLENU ORAZ 9,10-DIFENYLOANTRACENU W ROZTWORZE

Badanie absorpcji światła molekuł wieloatomowych na przykładzie chlorofilu A i rodaminy 6G. Ćwiczenie 20

Spektroskopowe metody identyfikacji związków organicznych

Uniwersytet Śląski w Katowicach str. 1 Wydział

Uniwersytet Śląski w Katowicach str. 1 Wydział

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Rozmycie pasma spektralnego

Metody optyczne w medycynie

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Reguły barwności cząsteczek chemicznych

Widma UV charakterystyczne cechy ułatwiające określanie struktury pirydyny i pochodnych

ELEKTROFOREZA. Wykonanie ćwiczenia 8. ELEKTROFOREZA BARWNIKÓW W ŻELU AGAROZOWYM

SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie Al w postaci chelatowego kompleksu glinu z moryną.

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

BARWY W CHEMII Dr Emilia Obijalska Katedra Chemii Organicznej i Stosowanej UŁ

Absorpcja promieni rentgenowskich 2 godz.

JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

Spektroskopia emisyjna. Fluorescencja i Fosforescencja

EFEKT SOLWATOCHROMOWY. WYZNACZANIE MOMENTU DIPOLOWEGO CZĄSTECZKI W STANIE WZBUDZONYM METODĄ SOLWATOCHROMOWĄ

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

Kierunek: TOWAROZNAWSTWO, sem.iii ĆWICZENIE 8

Ćwiczenie 3 Pomiar równowagi keto-enolowej metodą spektroskopii IR i NMR

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

Atomowa spektrometria absorpcyjna i emisyjna

ĆWICZENIE Nr 4 LABORATORIUM FIZYKI KRYSZTAŁÓW STAŁYCH. Badanie krawędzi absorpcji podstawowej w kryształach półprzewodników POLITECHNIKA ŁÓDZKA

EKSTRAHOWANIE KWASÓW NUKLEINOWYCH JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

8. Trwałość termodynamiczna i kinetyczna związków kompleksowych

ANALIZA INSTRUMENTALNA

Ćwiczenie 30. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna w zakresie UV-VIS, prawa absorpcji, budowa i. Wstęp

PODSTAWY METODY SPEKTROSKOPI W PODCZERWIENI ABSORPCJA, EMISJA

Ćwiczenie 2 Przejawy wiązań wodorowych w spektroskopii IR i NMR

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

Jan Drzymała ANALIZA INSTRUMENTALNA SPEKTROSKOPIA W ŚWIETLE WIDZIALNYM I PODCZERWONYM

Jak analizować widmo IR?

Ćwiczenie 3 ANALIZA JAKOŚCIOWA PALIW ZA POMOCĄ SPEKTROFOTOMETRII FTIR (Fourier Transform Infrared Spectroscopy)

spektroskopia UV Vis (cz. 2)

SPEKTROFOTOMETRYCZNA ANALIZA

ANALITYKA W KONTROLI JAKOŚCI

PRACOWNIA Z BIOFIZYKI DLA ZAAWANSOWANYCH

PRACOWNIA CHEMII. Reakcje fotochemiczne (Fiz3)

SKUTECZNOŚĆ IZOLACJI JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

BARWY W CHEMII Dr Emilia Obijalska Katedra Chemii Organicznej i Stosowanej UŁ

Ćw. 11 wersja testowa Wyznaczanie odległości krytycznej R 0 rezonansowego przeniesienia energii (FRET)

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

Przejścia promieniste

Identyfikacja węglowodorów aromatycznych techniką GC-MS

Zastosowanie spektroskopii UV/VIS do określania struktury związków organicznych

Spektroskopia emisyjna. Fluorescencja i Fosforescencja

Transkrypt:

Laboratorium specjalizacyjne A ĆWICZENIE 3 LUMINOFORY ORGANICZNE I NIEORGANICZNE. Zagadnienia: Podział luminoforów: fluorofory oraz fosfory Luminofory organiczne i nieorganiczne Różnorodność stanów wzbudzonych w związkach metali przejściowych Stacjonarne widma emisji i wzbudzenia Celem ćwiczenia jest charakterystyka właściwości luminescencyjnych przykładowych luminoforów organicznych i nieorganicznych WSTĘP Luminoforem jest cząsteczka lub grupa funkcyjna zdolna do luminescencji. Ze względu na podział zjawisk luminescencji na fluorescencję i fosforescencję wyróżniamy odpowiednio fluorofory i fosfory. Zdolność luminescencji posiada wiele substancji zarówno organicznych jak i nieorganicznych. Ze względu na stany wzbudzone podstawowy podział pozwala wyodrębnić trzy grupy: -fluorofory organiczne, m.in. cząsteczki aromatyczne i heterocykliczne, cząsteczki licznych barwników (np. fluoresceina, eozyna), cząsteczki o znaczeniu biologicznym (aromatyczne aminokwasy, zasady nukleinowe, chlorofil i karotenoidy oraz niektóre witaminy i hormony) -związki metali przejściowych, m.in. związki koordynacyjne rutenu(ii), renu(i), platyny(ii), irydu(iii), miedzi(i); -związki metali bloku f, m.in. jony lantanowców na +3 stopniu utlenienia (europu, terbu) Zjawiska luminescencji w związkach organicznych związane są ze stanami wzbudzonymi przejść π π* lub n π*, a także z przejściami przeniesienia ładunku. Stany te są singletowe mamy zatem do czynienia ze zjawiskiem fluorescencji. Rozróżnienia tych stanów wzbudzonych dokonuje się śledząc kształt, intensywność i zakres pasm emisji w zależności od zastosowanych warunków (medium i temperatura).

Stan wzbudzony Intensywność pokojowej Kształt w pasma temperaturze Solwatochromizm Struktura π π* LE subtelna Duża brak n π* Rozmyte Mała występuje CT Szerokie, Umiarkowana pojedyncze lub duża silny Zjawiska luminescencji w związkach metali przejściowych są na ogół związane z następującymi stanami wzbudzonymi: Stany zlokalizowane na jonie/atomie centralnym (LF/MC) (stany wzbudzone przejść d-d/przejść pola ligandów) Stany wzbudzone przejść przeniesienia ładunku z metalu na ligand (MLCT) Stany wzbudzone przejść przeniesienia ładunku z liganda na metal (LMCT) Stany wzbudzone związane z przeniesieniem ładunku pomiędzy ligandami (LLCT) oraz wewnątrz liganda (ILCT). stany wzbudzone związane z przeniesieniem ładunku pomiędzy atomami centralnymi (MMCT) stany wzbudzone związane z przejściami elektronowymi w obrębie ligandów (IL). W odpowiednich warunkach mamy do czynienia bądź z fluorescencją, bądź fosforescencją. W przypadku połączeń koordynacyjnych metali 4d- i 5d-elektronowych sprzężenie spinowoorbitalne przyczynia się do mieszania stanów singletowych z trypletowymi, i co za tym idzie zniesienia spinowo zabronionego charakteru przejścia T1 S0.

ĆWICZENIE 1. Charakterystyka właściwości luminescencyjnych przykładowych luminoforów organicznych. Odczynniki Sprzęt, aparatura pomiarowa Naftalen Spektrofluorymetr Hitachi F-7000 Benzofenon Przystawka niskotemperaturowa Antracen Naczynie Dewara Acetonitryl Kuwety fluorescencyjne Dichlorometan Pipety Metanol:etanol (vol. 4:1) Gruszki Ciekły azot Zlewki Wykonanie: 1. Przygotować roztwory podstawowe luminoforów (ok. 5 10-5 M) w acetonitrylu, dichlorometanie. 2. Uruchomić spektrofluorymetr Hitachi F-7000 zgodnie z instrukcjami prowadzącego. 3. Na podstawie przygotowanych w ćwiczeniu 1 widm absorpcji określić parametry pomiarów widm emisyjnych (przewidywane długości fali wzbudzenia). 4. W celu weryfikacji długości fali wzbudzenia i zakresu emisji wykonać mapy 2D luminescencji. Doboru parametrów eksperymentu (zakres pomiaru, prędkość skanowania, szczeliny, woltaż lampy ksenonowej) dokonać zgodnie z instrukcjami prowadzącego. 5. Zarejestrować widma emisji i wzbudzenia przygotowanych roztworów w temperaturze pokojowej. 6. Przystosować aparat do pomiarów w temperaturze ciekłego azotu, w tym celu zamontować przystawkę niskotemperaturową. Pod okiem prowadzącego napełnić przystosowane do pomiarów luminescencyjnych naczynie Dewara ciekłym azotem. Ćwiczenie wykonywać w okularach ochronnych, pamiętać o ochronie dłoni w czasie wykonywania operacji z ciekłym azotem. 7. Do zamontowanego w przystawce naczynia Dewara wypełnionego ciekłym azotem wprowadzić ostrożnie kuwetę wypełnioną roztworem badanej próbki w mieszaninie metanolowo-etanolowej i wykonać widma emisji. 8. Zanotować wartości długości fali zaobserwowanych maksimów oraz oszacować przesunięcia Stokesa 9. Wskazać cechy zarejestrowanych widm emisji dla związków organicznych.

ĆWICZENIE 2. Porównanie właściwości luminescencyjnych przykładowych luminoforów nieorganicznych w roztworze oraz ciele stałym. Odczynniki Sprzęt, aparatura pomiarowa Wybrane związki platyny(ii) i/lub miedzi(i) Spektrofluorymetr Hitachi F-7000 Acetonitryl Uchwyty do kuwet Kuwety Zlewki Pipety Gruszki Wykonanie: 1. Przygotować roztwory podstawowe luminoforów (ok. 5 10-5 M) w acetonitrylu. 2. Uruchomić spektrofluorymetr Hitachi F-7000 zgodnie z instrukcjami prowadzącego. 3. W celu weryfikacji długości fali wzbudzenia i zakresu emisji wykonać mapy 2D luminescencji. Doboru parametrów eksperymentu (zakres pomiaru, prędkość skanowania, szczeliny, woltaż lampy ksenonowej) dokonać zgodnie z instrukcjami prowadzącego. 4. Zarejestrować widma emisji i wzbudzenia przygotowanych roztworów w temperaturze pokojowej. 5. Przygotować aparat do pomiarów w ciele stałym w tym celu wymienić uchwyty kuwet z przystosowanych do roztworów na przystosowane do pomiarów w ciele stałym. 6. Zmierzyć widma dwuwymiarowe i widma emisji oraz wzbudzenia dla badanych próbek. 7. Zanotować wartości długości fali zaobserwowanych maksimów oraz oszacować przesunięcia Stokesa 8. Wskazać cechy zarejestrowanych widm emisji dla związków organicznych.

OPRACOWANIE WYNIKÓW: Na podstawie ćwiczeń student obowiązany jest przygotować: -widma ekscytacji i emisji (zależność intensywności fluorescencji od długości fali) -w oparciu o zmierzone parametry dokonać obliczeń i uzupełnić tabelę: Próbka λ exc [nm] ([cm -1 ]) λ em [nm] ([cm -1 ]) ΔE exc-em [ev] E em [ev]* * E em = 1241/λ em -wyciągnąć wnioski na podstawie uzyskanych danych. BIBLIOGRAFIA: 1) A. Kawski, Fotoluminescencja roztworów. 1992. PWN, Warszawa (rozdz.1, 6) 2) J. R. Lakowicz, Principles of fluorescence spectroscopy. III edycja. 2006. Springer 3) C. A. Parker, Photoluminescence of Solutions. 1968. Elsevier Publishing Company