Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Podobne dokumenty
Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 2

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 3

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wysokosprawna chromatografia cieczowa dobór warunków separacji wybranych związków

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

Ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

Rys. 1. Chromatogram i sposób pomiaru podstawowych wielkości chromatograficznych

Jakościowa i ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką chromatografii gazowej

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

BADANIE ZAWARTOŚCI WIELOPIERŚCIENIOWYCH WĘGLOWODORÓW AROMATYCZNYCH (OZNACZANIE ANTRACENU W PRÓBKACH GLEBY).

ROZDZIELENIE OD PODSTAW czyli wszystko (?) O KOLUMNIE CHROMATOGRAFICZNEJ

Wysokosprawna chromatografia cieczowa instrukcja do ćwiczenia.

OZNACZENIE JAKOŚCIOWE I ILOŚCIOWE w HPLC

2-Metyloazirydyna. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II. OznaczanieBTEX i n-alkanów w wodzie zanieczyszczonej benzyną metodą GC/FID oraz GC/MS 1

1,4-Fenylenodiamina. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

PORÓWNANIE FAZ STACJONARNYCH STOSOWANYCH W HPLC

ZASTOSOWANIE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ DO OZNACZANIA BENZOESANU SODU W PRODUKTACH SPOŻYWCZYCH

4,4 -Metylenodianilina

Fenol, o-, m- i p-krezol metoda oznaczania

OZNACZANIE WYBRANYCH FARMACEUTYKÓW W PRÓBACH WODY.

HPLC? HPLC cz.1. Analiza chromatograficzna. Klasyfikacja metod chromatograficznych

CHROMATOGRAFIA II 18. ANALIZA ILOŚCIOWA METODĄ KALIBRACJI

4-Chlorofenol. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE. Najważniejsze właściwości fizykochemiczne 4-chlorofenolu:

Prof. dr hab. inż. M. Kamiński 2006/7 Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny PG. Ćwiczenie: LC / GC. Instrukcja ogólna

Jakościowe i ilościowe oznaczanie alkoholi techniką chromatografii gazowej

4. WYZNACZENIE IZOTERMY ADSORPCJI METODĄ ECP

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

2-Cyjanoakrylan metylu metoda oznaczania

Ćwiczenie 1 Analiza jakościowa w chromatografii gazowej Wstęp

Bifenylo-4-amina. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE. mgr inż. ANNA JEŻEWSKA 1 prof. dr hab. BOGUSŁAW BUSZEWSKI 2 1 Centralny Instytut Ochrony Pracy

4A. Chromatografia adsorpcyjna B. Chromatografia podziałowa C. Adsorpcyjne oczyszczanie gazów... 5

Kontrola produktu leczniczego. Piotr Podsadni

Zadanie 4. Zastosowanie wysokosprawnej chromatografii cieczowej do oznaczania benzoesanu sodu w produktach przemysłowych

Diacetyl. Numer CAS:

4,4 -Metylenodianilina

Glifosat. Numer CAS:

Oznaczanie wybranych farmaceutyków w próbach wody

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

Cz. 5. Podstawy instrumentalizacji chromatografii. aparatura chromatograficzna w skali analitycznej i modelowej - -- w części przypomnienie -

Azirydyna. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

Metoda analityczna oznaczania chlorku winylu uwalnianego z materiałów i wyrobów do żywności

Instrukcja ćwiczenia laboratoryjnego HPLC-2 Nowoczesne techniki analityczne

5. WYZNACZENIE KRZYWEJ VAN DEEMTER a I WSPÓŁCZYNNIKA ROZDZIELENIA DLA KOLUMNY CHROMATOGRAFICZNEJ

Kwas trichlorooctowy

Anilina. Numer CAS: anilina, metoda analityczna, metoda chromatografii cieczowej, powietrze na stanowiskach

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

Cyjanamid. Numer CAS: N C N

Ślesin, 29 maja 2019 XXV Sympozjum Analityka od podstaw

NH 2. Numer CAS:

Numer CAS: o C (101,3 kpa)

RP WPROWADZENIE. M. Kamiński PG WCh Gdańsk Układy faz odwróconych RP-HPLC, RP-TLC gdy:

2-Cyjanoakrylan etylu

2-(Dietyloamino)etanol

2,2 -Dichloro-4,4 - -metylenodianilina

Bezwodnik trimelitowy

ĆWICZENIE 3: CHROMATOGRAFIA PLANARNA

WYZNACZANIE ZAKRESU WYKLUCZANIA DLA WYPEŁNIEŃ STOSOWANYCH W WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII WYKLUCZANIA (HPSEC)

1,3-etylenotiomocznika.

GraŜyna Chwatko Zakład Chemii Środowiska

OPTYMALIZACJA EFEKTÓW ROZDZIELANIA W KOLUMNACH KAPILARNYCH DOBÓR PRĘDKOŚCI PRZEPŁYWU GAZU

ZASTOSOWANIE CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ W BIOTECHNOLOGII ŚRODOWISKOWEJ

Disulfid allilowo-propylowy

12 ZASAD ZIELONEJ CHEMII

OD HPLC do UPLC. Prof. dr hab. inż. Agata Kot-Wasik. Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny, Politechnika Gdańska

Analiza instrumentalna

Chlorek chloroacetylu

n-pentanal Numer CAS:

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok OAM

PP7: Wymiana jonowa i chromatografia jonowymienna oznaczanie kationów i anionów

Metody chromatograficzne w chemii i biotechnologii, wykład 5. Łukasz Berlicki

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

KALIBRACJA. ważny etap procedury analitycznej. Dr hab. inż. Piotr KONIECZKA

Identyfikacja węglowodorów aromatycznych techniką GC-MS

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

CHROMATOGRAFIA CHROMATOGRAFIA GAZOWA

Paration metylowy metoda oznaczania

n-heksanal Numer CAS: CH 3 (CH 2 ) 4 CHO

Techniki immunochemiczne. opierają się na specyficznych oddziaływaniach między antygenami a przeciwciałami

Benzen metoda oznaczania

3-Amino-1,2,4-triazol

NH 2 CH 3. Numer CAS:

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 5, 4 dodr. Warszawa, 2015.

Ćw. 5 Oznaczanie węglowodorów lekkich w powietrzu atmosferycznym

PODSTAWY CHROMATOGRAFII GAZOWEJ

Ortokrzemian tetraetylu

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Naftalen metoda oznaczenia

Zadanie 2. Jakościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

Nitroetan UWAGI WSTĘPNE. Nitroetan jest bezbarwną oleistą cieczą o charakterystycznym,

Identyfikacja alkoholi techniką chromatografii gazowej

Fenylohydrazyna. metody oznaczania

Transkrypt:

UNIWERSYTET GDAŃSKI Pracownia studencka Katedry Analizy Środowiska Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych Ćwiczenie nr 2 Oznaczanie benzoesanu denatonium w skażonym alkoholu etylowym metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej ANALIZA CHEMICZNA W KRYMINALISTYCE FIZYKOCHEMICZNE METODY BADAŃ W KRYMINALISTYCE Gdańsk, 2008 1

I. CEL ĆWICZENIA Celem ćwiczenia jest analiza zawartości benzoesanu denatonium w próbkach skażonego alkoholu etylowego. Analiza jakościowa zostanie wykonana poprzez porównanie czasu retencji analitu z czasem retencji wzorca otrzymanych w tych samych warunkach chromatograficznych. Analiza ilościowa zostanie wykonana metodą krzywej kalibracyjnej (krzywej wzorcowej). II. WYKONANIE ĆWICZENIA 1. Warunki analizy chromatograficznej HPLC (ćwiczenie wykonywane w sali 33) Chromatograf cieczowy WATERS 600-MS jest połączony z detektorem spektrofotometrycznym UV-Vis firmy LKB seria 2151 Variable Wavelenght Monitor oraz dozownikiem typu zaworu z pętlą o objętości 20 µl. Do analizy zostanie wykorzystana kolumna analityczna Gemini 5µ o wymiarach 150 4,6 mm (firmy Phenomenex). Wypełnienie stanowi żel krzemionkowy z chemicznie związanymi grupami alkilowymi z podstawnikami fenylowymi, czyli tzw. faza odwrócona C 6 -Phenyl. Średnica ziaren - 5 µm. Fazą ruchomą jest mieszanina: 0,1% wodny roztwór H 3 PO 4 /acetonitryl w stosunku 30:70 (v/v); rozdział izokratyczny. Prędkość przepływu fazy ruchomej: 0,6 ml/min. Należy używać rurki teflonowej A oznaczonej solvent A. Ustawienie pokrętła Absorbance range na detektorze: 0.32. Czas analizy 25 minut. Przed rozpoczęciem analiz należy przemyć kolumnę fazą ruchomą w ciągu minimum 30 minut aż do uzyskania stabilnej linii zerowej (przepływ 0,6 ml/min). Po zakończeniu analiz należy koniecznie przemyć kolumnę wodą (wcześniej odgazowaną) w ciągu minimum 30 minut aż do uzyskania stabilnej linii zerowej i pozostawić napełnione wodą rurki teflonowe zakończone filtrami zanurzone w wodzie. Uwaga: nie wolno doprowadzić do zapowietrzenia pomp poprzez zaciągnięcie powietrza przez rurki, używanie nieodgazowanych rozpuszczalników lub pozostawienie rurek, które nie są zanurzone w odpowiedniej ilości cieczy. 2

2. Odczynniki i sprzęt laboratoryjny (ćwiczenie wykonywane w sali 33) Roztwór 0,1% H 3 PO 4 w 1 litrze wody wykonany poprzez rozpuszczenie 1 ml 85% H 3 PO 4 w 1 litrze wody. Faza ruchoma o składzie: 0,1% wodny roztwór H 3 PO 4 /acetonitryl w stosunku 30:70 (v/v). Fazę ruchomą należy przed użyciem odgazować przez 15 min w łaźni ultradźwiękowej (250 ml). Acetonitryl do mycia strzykawek (25 ml). Roztwór podstawowy benzoesanu denatonium w etanolu o stężeniu równym 2 mg/ml. Roztwory wzorcowe benzoesanu denatonium w etanolu o stężeniach równych: 0, 5, 10, 20 i 40 mg/l. Strzykawka do HPLC o objętości 25 µl. Cylinder miarowy 50 ml. 3. Warunki analizy chromatograficznej HPLC (ćwiczenie wykonywane w sali 46) Chromatograf cieczowy PERKIN ELMER 200 lc jest połączony z detektorem spektrofotometrycznym UV-Vis seria 200 oraz dozownikiem typu zaworu z pętlą o objętości 100 µl. Do analizy zostanie wykorzystana kolumna analityczna o wymiarach 150 4,6 mm (firmy SUPELCO). Wypełnienie stanowi żel krzemionkowy z chemicznie związanymi grupami oktadecylowymi, czyli tzw. faza odwrócona RP-18. Średnica ziaren - 5 µm. Fazą ruchomą jest mieszanina: 0,1% wodny roztwór H 3 PO 4 /acetonitryl w stosunku 70:30 (v/v); rozdział izokratyczny. Prędkość przepływu fazy ruchomej: 0,5 ml/min. Należy używać rurki teflonowej D oznaczonej solvent D. Czas analizy 15 minut. Przed rozpoczęciem analiz należy przemyć kolumnę fazą ruchomą w ciągu minimum 30 minut aż do uzyskania stabilnej linii zerowej (przepływ 0,5 ml/min). Po zakończeniu analiz należy koniecznie przemyć kolumnę wodą (wcześniej odgazowaną) w ciągu minimum 30 minut aż do uzyskania stabilnej linii zerowej i pozostawić napełnione wodą rurki teflonowe zakończone filtrami zanurzone w wodzie. Uwaga: nie wolno doprowadzić do zapowietrzenia pomp poprzez zaciągnięcie powietrza przez rurki, używanie nieodgazowanych rozpuszczalników lub pozostawienie rurek, które nie są zanurzone w odpowiedniej ilości cieczy. 3

4. Odczynniki i sprzęt laboratoryjny (ćwiczenie wykonywane w sali 46) Roztwór 0,1% H 3 PO 4 w 1 litrze wody wykonany poprzez rozpuszczenie 1 ml 85% H 3 PO 4 w 1 litrze wody. Faza ruchoma o składzie: 0,1% wodny roztwór H 3 PO 4 /acetonitryl w stosunku 70:30 (v/v). Fazę ruchomą należy przed użyciem odgazować przez 15 min w łaźni ultradźwiękowej (250 ml). Roztwór podstawowy benzoesanu denatonium o stężeniu równym 2 mg/ml. Roztwory wzorcowe benzoesanu denatonium w etanolu o stężeniach równych: 0, 5, 10, 20 i 40 mg/l. Acetonitryl do mycia strzykawek (25 ml). Strzykawka do HPLC o objętości 100 µl. Cylinder miarowy 50 ml. 5. Wykonanie oznaczenia a. Przed każdą analizą należy przemyć strzykawkę oraz pętlę dozownika kilkakrotnie rozpuszczalnikiem a następnie jednokrotnie badaną próbką. Uwaga: dozując próbkę za pomocą strzykawki nie wolno wprowadzić do dozownika bąbli powietrza. b. Wykonać analizy HPLC roztworów wzorcowych benzoesanu denatonium o stężeniach równych: 0, 5, 10, 20 i 40 mg/l w kolejności od najniższego stężenia do najwyższego. Z otrzymanego chromatogramu odczytać czas retencji substancji wzorcowej oraz pole powierzchni piku chromatograficznego. Analizę danego roztworu wykonać trzykrotnie. Wyniki analiz przedstawić w Tabeli 1. Obliczyć średni czas retencji wzorca benzoesanu denatonium oraz jego przedział ufności. c. Narysować wykres zależności pola powierzchni piku chromatograficznego (A) od stężenia benzoesanu denatonium (c): A = f(c). Obliczyć równanie prostej opisującej krzywą wzorcową metodą najmniejszych kwadratów. d. Wykonać analizy HPLC próbek skażonego alkoholu etylowego. Porównując czasy retencji pików na otrzymanym chromatogramie próbki alkoholu etylowego z czasem 4

retencji wzorca benzoesanu denatonium należy zidentyfikować pik chromatograficzny analitu. Z otrzymanego chromatogramu odczytać czas retencji analitu oraz pole powierzchni piku chromatograficznego. Analizę danego roztworu wykonać trzykrotnie. Wyniki analiz przedstawić w Tabeli 2. e. Korzystając z wcześniej wyznaczonej krzywej wzorcowej obliczyć zawartość benzoesanu denatonium w badanych próbkach alkoholu etylowego i zamieścić wyniki w Tabeli 3. Wyniki porównać z wytycznymi zawartymi w Rozporządzeniu Ministra Finansów z dnia 10 października 2007 r. W sprawozdaniu należy dokładnie opisać sposób wykonania analizy zwracając uwagę na analizę jakościową oraz analizę ilościową, ponadto należy zamieścić wszystkie wykonane obliczenia oraz wyniki. Analizy chromatograficzne roztworów wzorcowych oraz próbek badanych należy udokumentować poprzez zamieszczenie w tekście sprawozdania odpowiednio opracowanych chromatogramów. Tabela 1. Wyniki analizy chromatograficznej HPLC roztworów wzorcowych benzoesanu denatonium Roztwór Stężenie c [mg/l] 1 5 Czas retencji [min] Pole powierzchni piku A Średnie pole powierzchni piku 2 10 3 20 4 40 5

Tabela 2. Wyniki analizy chromatograficznej HPLC próbek skażonego alkoholu etylowego Próbka Czas retencji [min] Pole powierzchni piku A Średnie pole powierzchni piku 1 2 3 4 Tabela 3. Wyniki oznaczenia zawartości benzoesanu denatonium w próbkach skażonego alkoholu etylowego Nr próbki Stężenie benzoesanu denatonium [mg/l] 1 2 3 4 Zakres wymagań: 1. Wysokosprawna chromatografia cieczowa. 2. Detektor spektrofotometryczny UV/Vis, prawo Lamberta-Beera, absorpcja promieniowania UV przez związki organiczne. Literatura: 1. Szczepaniak W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN, W-wa, 1996. 2. Witkiewicz Z., Podstawy chromatografii, WNT, W-wa, 1995, 2005. 6