Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Podobne dokumenty
Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Dobór metody analitycznej

ANALIZA INSTRUMENTALNA

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

ĆWICZENIE 1: BUFORY 1. Zapoznanie z Regulaminem BHP 2. Oznaczanie ph 2.1. metoda z zastosowaniem papierków wskaźnikowych

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Zastosowanie spektrofotometrii (UV-VIS) do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

OZNACZANIE INDEKSU FENOLOWEGO W WODZIE

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

data ĆWICZENIE 12 BIOCHEMIA MOCZU Doświadczenie 1

Krew należy poddać hemolizie, która zachodzi pod wpływem izotonicznego odczynnika Drabkina.

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

Spis treści. Wstęp. Twardość wody

Ćwiczenie 2. Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

8. Trwałość termodynamiczna i kinetyczna związków kompleksowych

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

ĆWICZENIE 11. ANALIZA INSTRUMENTALNA KOLORYMETRIA - OZNACZANIE Cr(VI) METODĄ DIFENYLOKARBAZYDOWĄ. DZIAŁ: Kolorymetria

Obliczanie stężeń roztworów

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

Oznaczanie aktywności proteolitycznej trypsyny metodą Ansona

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Ćwiczenie 7. Wyznaczanie stałej szybkości oraz parametrów termodynamicznych reakcji hydrolizy aspiryny.

Roztwory buforowe modyfikacja wykonania ćwiczenia.

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII OGÓLNEJ I ANALITYCZNEJ DLA STUDENTÓW I ROKU OCHRONY ŚRODOWISKA

Ćwiczenie 3: Ocena fizykochemiczna nawozów stałych fosforowych różne formy P 2 O 5

Usuwanie jonów żelaza i manganu z wody

data ĆWICZENIE 7 DYSTRYBUCJA TKANKOWA AMIDOHYDROLAZ

Analiza miareczkowa. Alkalimetryczne oznaczenie kwasu siarkowego (VI) H 2 SO 4 mianowanym roztworem wodorotlenku sodu NaOH

DEZYNFEKCJA WODY CHLOROWANIE DO PUNKTU

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

8. MANGANOMETRIA. 8. Manganometria

3. Badanie kinetyki enzymów

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

OBLICZANIE WYNIKÓW ANALIZ I

Ćw. 5 Absorpcjometria I

Program ćwiczeń laboratoryjnych z fizykochemicznych podstaw życia dla I r Biologii niestacjonarnej

XLVII Olimpiada Chemiczna

Obliczanie stężeń roztworów

REDOKSYMETRIA ZADANIA

RSM ROZTWÓR SALETRZANO-MOCZNIKOWY

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z FIZYKOCHEMICZNYCH PODSTAW ŻYCIA DLA STUDENTÓW I ROKU BIOLOGII OGÓLNEJ, BIOTECHNOLOGII I BIOINFORMATYKI

Jod. Numer CAS:

ĆWICZENIE 7 WSPÓŁOZNACZANIE WAPNIA I MAGNEZU I OBLICZANIE TWARDOŚCI WODY. DZIAŁ: Kompleksometria

ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

d[a] = dt gdzie: [A] - stężenie aspiryny [OH - ] - stężenie jonów hydroksylowych - ] K[A][OH

INŻYNIERIA PROCESÓW CHEMICZNYCH

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Ćwiczenia nr 2: Stężenia

009 Ile gramów jodu i ile mililitrów alkoholu etylowego (gęstość 0,78 g/ml) potrzeba do sporządzenia 15 g jodyny, czyli 10% roztworu jodu w alkoholu e

K1. KONDUKTOMETRYCZNE MIARECZKOWANIE STRĄCENIOWE I KOMPLEKSOMETRYCZNE

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

10. ALKACYMETRIA. 10. Alkacymetria

Klasa czystości I II III IV V

Szkoła Letnia STC Łódź 2013 Oznaczanie zabarwienia cukru białego, cukrów surowych i specjalnych w roztworze wodnym i metodą MOPS przy ph 7,0

Analiza ilościowa. Kompleksometria Opracowanie: mgr inż. Przemysław Krawczyk

Oznaczanie Mg, Ca i Zn we włosach techniką atomowej spektrometrii absorpcyjnej z atomizacją w płomieniu (FAAS)

POLITECHNIKA GDAŃSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

CHARAKTERYSTYKI SPEKTRALNE UTLENIONEJ I ZREDUKOWANEJ FORMY CYTOCHROMU C

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

Oznaczanie chlorowodoru w powietrzu atmosferycznym

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII OGÓLNEJ I ANALITYCZNEJ DLA STUDENTÓW I ROKU NAUCZANIA BIOLOGII I PRZYRODY STUDIÓW DZIENNYCH

Ć W I C Z E N I E 4. Reekstrakcja miedzi z roztworu ciekłego wymieniacza jonowego do roztworów H 2 SO 4

Transkrypt:

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego Oznaczanie dwóch kationów obok siebie metodą miareczkowania spektrofotometrycznego (bez maskowania) jest możliwe, gdy spełnione są warunki: - wartości stałych trwałości obu kompleksów są dostatecznie duże i różnią się wystarczająco, - widma absorpcji kompleksów są takie, że można wybrać długość fali, przy której absorbuje tylko jeden kompleks. Kompleksy Fe(III) i Cu(II) z EDTA spełniają te warunki, gdyż dla Fe log = 25,1, a dla Cu log = 18,3. Kompleks Cu z EDTA ma maksimum absorpcji przy = 745 nm, kompleks Fe z EDTA nie absorbuje przy tej długości fali. - roztwór EDTA 0,1 M - bufor ph 2. Do roztworu badanego (kolba 100 ml) dodać 10 ml buforu ph 2 i rozcieńczyć wodą do kreski. Do kolbek miarowych o pojemności 50 ml odpipetować po 5 ml roztworu badanego, dodać po 10 ml buforu ph 2 i ok. 20 ml wody, odmierzyć z biurety roztwór EDTA, a następnie uzupełnić wodą do kreski. Nr kolby 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 ml EDTA 0 1 1,5 2 3 4 5 6 7 9 Posługując się spektrofotometrem SPECTROQUANT Pharo 300 zmierzyć absorbancje wszystkich sporządzonych roztworów (wobec wody jako odnośnika) przy długości fali odpowiadającej maksimum absorpcji dla kompleksu Cu z EDTA. - wykreślić krzywą miareczkowania A = f(ml EDTA) - obliczyć zawartość żelaza oraz miedzi w otrzymanym do analizy roztworze. 1 ml 0,1M roztworu EDTA odpowiada 5,58 mg Fe 1 ml 0,1M roztworu EDTA odpowiada 6,35 mg Cu

Oznaczanie domieszki w mieszaninie dwuskładnikowej i oznaczanie składników mieszaniny Celem ćwiczenia jest identyfikacja składników próbki na podstawie krzywej absorpcji A = f( ) i ilościowe oznaczenie tych składników metodą dwóch długości fali. 1) porównać widma wzorca i próbki z widmami w tablicach załączonych do ćwiczenia i przeprowadzić identyfikację, 2) wyznaczyć stężenie wzorca i domieszki w próbce metodą dwóch długości fal. Molowe współczynniki absorpcji dla wzorca oraz domieszki przy odpowiednich długościach fal odczytać z katalogu widm załączonego do ćwiczenia.

Badanie składu kompleksu żelaza(ii) z 1,10-fenantroliną metodą miareczkowania spektrofotometrycznego Metoda miareczkowania spektrofotometrycznego pozwala na wyznaczenie liczby ligandów w bardzo trwałych kompleksach. - 1 10 3 M roztwór Fe(III) w 0.01 M kwasie siarkowym, - 1 10 3 M roztwór 1,10-fenantroliny, - bufor octanowy ph 4,5, - kwas askorbowy. Do kolbek o pojemności 25 ml odpipetować po 1ml roztworu Fe(III) oraz odpowiednie objętości roztworu fenantroliny (0; 1,0; 2,0; 2,5; 3,0; 3,5; 4,0; 5,0; 5,5; 6,0 ml) dodać ok. 25 mg kwasu askorbowego (na koniec szpatułki) i 5 ml buforu ph 4,5, uzupełnić wodą do kreski. Po 15 minutach zmierzyć absorbancje w max kompleksu ( max wybrać na podstawie załączonego do ćwiczenia widma absorpcji), korzystając ze spektrofotometru SPECTROQUANT Pharo 300. - wykreślić krzywą A = f( c / c ) i wyznaczyć graficznie skład powstającego kompleksu chelatowego. fenantr Fe

Oznaczanie śladowych ilości żelaza w próbce Przygotowanie krzywej wzorcowej Fe(II)-fenantrolina 1,10-fenantrolina tworzy z żelazem(ii) pomarańczowy kompleks w zakresie ph od 2 do 9. Za pomocą fenantroliny można oznaczać żelazo(ii) lub całkowitą ilość żelaza w roztworze (po redukcji Fe(III) do Fe(II)). - 1,10-fenantrolina, roztwór 1 %, - Fe(III), roztwór wzorcowy roboczy 50 g/ml w 0,01 M kwasie siarkowym, sporządzony z siarczanu(vi) amonu i żelaza(iii), - cytrynian sodu, roztwór 10 %. - kwas askorbowy. Do kolbek miarowych o poj. 25 ml wprowadzić następujące ilości roztworu wzorcowego żelaza(iii) o c = 50 g/ml: 0; 0,5; 1,0; 1,5; i 2,0 ml. Dodać szczyptę kwasu askorbowego oraz 5 ml 10% roztworu cytrynianu sodu (ph 3-4), i w razie potrzeby dodać jeszcze 5 ml roztworu cytrynianu sodu. Następnie do kolbki wprowadzić 1 ml roztworu 1,10- fenantroliny, dopełnić roztwór wodą do kreski i wymieszać. Po 10 minutach zmierzyć absorbancję roztworu przy długości fali 512 nm, stosując jako odnośnik wodę. Sporządzić krzywą wzorcową A 512 nm = f(cfe g/ml ). Z kolbki o poj. 50 ml (opatrzonej napisem: próbka badana jony żelaza) pobrać odpowiednią objętość próbki (próbka zawiera nie więcej niż 1 mg żelaza) do kolbki o poj. 25 ml i postępować dalej tak jak przy sporządzaniu krzywej wzorcowej. Spektofotometr SPECTROQUANT Pharo 300 - wykreślić krzywą wzorcową, - obliczyć molowy współczynnik absorpcji oraz absorpcję właściwą, - obliczyć zawartość żelaza w próbce badanej (wynik podać w g). Oznaczanie kwasu octowego za pomocą czerwieni fenolowej

Czasami jest tak, że substancja oznaczana ma widmo absorpcji, którego nie można wykorzystać do przeprowadzenia analizy ilościowej. W takich przypadkach można zastosować pośredni sposób oznaczania, dodając do badanego roztworu odpowiednią ilość takiej substancji barwnej, która reagowałaby ilościowo z substancją oznaczaną. Zmiana absorbancji wskaźnika przy określonej długości fali (najczęściej max ), zaistniała w wyniku reakcji z substancją oznaczaną, pozwala przeprowadzić analizę ilościową. W procesach fermentacji glukozy wywołanych przez bakterie, jednym z produktów jest kwas octowy. Powstaje on najczęściej przy zbyt małym dopływie tlenu i dużym stężeniu reagentów. Jeśli proces fermentacyjny ma na celu otrzymanie etanolu, to nawet małe ilości kwasu octowego stanowią niepożądane zanieczyszczenie. Stężenie kwasu octowego można kontrolować (sterować procesem fermentacji), wywołując reakcję między kwasem a czerwienią fenolową w określonym środowisku. Zmiany absorbancji roztworu czerwieni fenolowej są w pewnym zakresie liniowo zależne od stężenia kwasu octowego, co pozwala sporządzić krzywą wzorcową. - czerwień fenolowa, roztwór wodny - bufory o ph 7,5; 7,0; 6,0; 3,0 - roztwór wzorcowy kwasu octowego, 0,1 mg/ml a) badanie właściwości czerwieni fenolowej Do kolbek miarowych o poj. 50 ml wprowadzić po 3 ml roztworu czerwieni fenolowej i kolejno po 5 ml odpowiedniego buforu (ph 7,5; 7,0; 6,0; 3,0) i uzupełnić wodą do kreski. Zarejestrować krzywe absorpcji roztworów w zakresie VIS. Odczytać parametry uzyskanych punktów izozbestycznych i obliczyć stężenie czerwieni fenolowej [g/l]. Sporządzić charakterystykę spektrofotometryczną czerwieni fenolowej (w tabeli), podając maksima absorpcji dla formy kwaśnej i zasadowej barwnika, zakresy ph dla każdej z form. b) oznaczanie kwasu octowego za pomocą czerwieni fenolowej metodą krzywej wzorcowej Do kolbek o poj. 50 ml wprowadzić po 3 ml roztworu czerwieni fenolowej i po 4 ml buforu o ph 7,5 oraz kolejno po 0, 2, 5, 10 i 20 ml roztworu kwasu octowego o stężeniu 0,1 mg/ml. Uzupełnić wodą do kreski i wymieszać. Zarejestrować krzywe absorpcji dla przygotowanych roztworów (Spektofotometr SPECTROQUANT Pharo 300) i wykreślić zależność zmian absorbancji roztworu ( przy = 545 nm od stężenia dodanego kwasu octowego. Następnie tak jak przy krzywej postępować dla próbki o nieznanym stężeniu kwasu octowego i wyznaczyć stężenie tego kwasu [mg], korzystając z krzywej wzorcowej.