Zaawansowane oczyszczanie

Podobne dokumenty
Zaawansowane oczyszczanie

Katedra Chemii Organicznej. Przemysłowe Syntezy Związków Organicznych Ćwiczenia Laboratoryjne 10 h (2 x5h) Dr hab.

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 2

DESTYLACJA JAKO METODA WYODRĘBNIANIA I OCZYSZCZANIA ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

1 ekwiwalent 1,45 ekwiwalenta 0,6 ekwiwalenta

Chemia Organiczna Syntezy

KRYSTALIZACJA JAKO METODA OCZYSZCZANIA I ROZDZIELANIA SUBSTANCJI STAŁYCH

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI PRZEZ DESTYLACJĘ I EKSTRAKCJĘ

[1 a] Acetanilid LISTA PREPARATÓW. Odczynniki: anilina 15 g lodowaty kwas octowy 15 ml pył cynkowy 0.1 g węgiel aktywny 0.2 g

stożek tulejka płaskie stożkowe kuliste Nominalna długość powierzchni szlifowanej 14/ / /32 29.

PROCESY JEDNOSTKOWE W TECHNOLOGIACH ŚRODOWISKOWYCH DESTYLACJA

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 1

ROZDZIELANIE I OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI. EKSTRAKCJA.

Synteza eteru allilowo-cykloheksylowego w reakcji alkilowania cykloheksanolu bromkiem allilu w warunkach PTC.

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

Ciągły proces otrzymywania bikarbonatu metodą Solvay a

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH: SULFONOWANIE ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

Oranż β-naftolu; C 16 H 10 N 2 Na 2 O 4 S, M = 372,32 g/mol; proszek lub

Ćwiczenie 5 Izolacja tłuszczów z surowców naturalnych

1 ekwiwalent 4 ekwiwalenty 5 ekwiwalentów

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Estryfikacja. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Ściąga eksperta. Mieszaniny. - filmy edukacyjne on-line Strona 1/8. Jak dzielimy substancje chemiczne?

1 ekwiwalent 2 ekwiwalenty 2 krople

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Fluorowcowanie część teoretyczna 2. F1 2,4,6-tribromoanilina 4. F2 2,4,6-tribromofenol 6

CHEMIA SRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

1 ekwiwalent 6 ekwiwalentów 0,62 ekwiwalentu

Wykonanie destylacji:

Kolokwium z SUBSTYTUCJI NUKLEOFILOWEJI, ELIMINACJI, ADDYCJI Autorzy: A. Białońska, M. Kijewska

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

PREPARATYKA NIEORGANICZNA. Przykład 1 Ile kilogramów siarczanu(vi) żelaza (II) można otrzymać z 336 kg metalicznego żelaza?

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

UKŁADY WIELOFAZOWE ROZDZIELANIE MIESZANINY CHLORKÓW SODU I POTASU

CEL ĆWICZENIA Zapoznanie studentów z chemią 14 grupy pierwiastków układu okresowego

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

RÓWNOWAGA CIECZ PARA W UKŁADZIE DWUSKŁADNIKOWYM

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

WOJEWÓDZKI KONKURS PRZEDMIOTOWY Z CHEMII DLA UCZNIÓW DOTYCHCZASOWYCH GIMNAZJÓW 2017/2018. Eliminacje szkolne

Ćwiczenia laboratoryjne 2

Ciągły proces otrzymywania bikarbonatu metodą Solvay a

1 ekwiwalent 0,85 ekwiwalentu 1,5 ekwiwalentu

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Chemia. 3. Która z wymienionych substancji jest pierwiastkiem? A Powietrze. B Dwutlenek węgla. C Tlen. D Tlenek magnezu.

Ciągły proces otrzymywania bikarbonatu metodą Solvay a

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

Zadanie: 1 (1pkt) Zadanie: 2 (1 pkt)

REGULAMIN BHP PRACOWNI CHEMICZNEJ. POKAZ SZKŁA. TECHNIKA PRACY LABORATORYJNEJ. Wstęp. Regulamin pracowni studenckiej.

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

Synteza Cu(CH 3 COO) 2 H 2 O oraz (NH 4 ) 2 Ni(SO 4 ) 2 6H 2 O

2. Procenty i stężenia procentowe

CHEMIA LEKÓW ORGANICZNYCH INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

KOLEJNOŚĆ CZYNNOŚCI DO ĆWICZENIA NR 5 (kopolimeryzacja styrenu i bezwodnika maleinowego)

Chemia organiczna. Instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla Biotechnologii (I rok)

WYZNACZANIE RÓWNOWAŻNIKA CHEMICZNEGO ORAZ MASY ATOMOWEJ MAGNEZU I CYNY

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

Piroliza odpadowych poliolefin

KETAL ETYLENOWY ACETYLOOCTANU ETYLU

Ćwiczenia nr 2: Stężenia

5. STECHIOMETRIA. 5. Stechiometria

Ćwiczenie 6 Zastosowanie destylacji z parą wodną oraz ekstrakcji ciecz-ciecz do izolacji eugenolu z goździków Wstęp

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

CHEMIA LEKÓW ORGANICZNYCH INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Destylacja z parą wodną

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

ODNAWIALNE ŹRÓDŁA ENERGII I GOSPODARKA ODPADAMI STUDIA STACJONARNE

Laboratorium. Technologia i Analiza Aromatów Spożywczych

Chemia nieorganiczna Zadanie Poziom: podstawowy

Obserwacje: Wnioski:

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Transkrypt:

Zaawansowane oczyszczanie Instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla Chemii Podstawowej (III r.), Chemii Środowiska (II III r.) Informatyki Chemicznej (III r.) Chemii Biologicznej (III r.) Zakład Chemii Organicznej Wydział Chemii Uniwersytet Wrocławski 2006 wersja 2 Spis treści [DF] Destylacja frakcyjna mieszaniny cieczy... 2 [O.1] Rozdzielenie mieszaniny kwasu benzoesowego i benzaldehydu... 3 [O.2] Rozdzielanie mieszaniny aniliny i nitrobenzenu... 4 [O.3] Rozdzielanie mieszaniny fenolu i nitrobenzenu... 5 [O.4] Oczyszczanie benzaldehydu... 6 [O.5] Rozdzielanie mieszaniny aniliny i fenolu... 7 [O.6] Destylacja pod obniżonym ciśnieniem... 8 [KK] Oczyszczanie kwasu karboksylowego... 10 [F] Oczyszczanie fenolu... 11

[DF] Destylacja frakcyjna mieszaniny cieczy Do okrągłodennej kolby destylacyjnej o pojemności 250 ml wlać 100 ml otrzymanej mieszaniny. Wrzucić kamyczek wrzenny. Zmontować aparaturę do destylacji cieczy: A) bez deflegmatora Przeprowadzić destylację otrzymanej mieszaniny zbierając destylat do cylindra miarowego. Co 2 ml zbieranego destylatu notować temperaturę wrzenia. Pozostałość po destylacji (pogon) pozostawić w kolbie destylacyjnej. Po skończonej destylacji zawrócić destylat do kolby destylacyjnej i przeprowadzić część B) ćwiczenia. B) z deflegmatorem Powtórzyć doświadczenie z punktu A) stosując aparaturę do destylacji z deflegmatorem. Zbieramy następujące frakcje: przedgon destyluje do ustalenia się temperatury wrzenia pierwszą frakcję destyluje po ustaleniu się temperatury wrzenia frakcję pośrednią destyluje do ponownego ustalenia się temperatury wrzenia drugą frakcję destyluje po ponownym ustaleniu się temperatury wrzenia Pozostałość po destylacji (pogon) pozostawić w kolbie destylacyjnej. Co 2 ml odbieranego destylatu notujemy temperaturę wrzenia. Dla poszczególnych czystych frakcji mierzymy współczynniki załamania światła. W sprawozdaniu należy przedstawić wykresy zależności temperatury na szczycie nasadki destylacyjnej od objętości otrzymanego destylatu dla obu eksperymentów, temperatury wrzenia oraz współczynniki załamania światła otrzymanych substancji. Należy oszacować skład objętościowy i jakościowy mieszaniny cieczy. 2

[O.1] Rozdzielenie mieszaniny kwasu benzoesowego i benzaldehydu Montujemy zestaw do destylacji z parą wodną. Otrzymaną próbkę, zawierającą aldehyd benzoesowy i kwas benzoesowy, umieszczamy w kolbie do destylacji z parą wodną, naczynie spłukujemy 100 ml wody. Powoli dodajemy nasycony roztwór NaHCO 3 aż do rozpuszczenia całej porcji kwasu i uzyskania słabo zasadowego odczynu. Prowadzimy destylację z parą wodną aż do uzyskania klarownego destylatu. Oddzielamy aldehyd benzoesowy, wytrząsamy przez 15 minut z bezwodnym MgSO 4 i sączymy do wytarowanego naczynia. Oznaczamy współczynnik załamania światła. Do pozostałości po destylacji dodajemy porcję węgla aktywnego, ogrzewamy do wrzenia, sączymy i po ostygnięciu ostrożnie zakwaszamy stężonym kwasem solnym. Po ochłodzeniu odsączamy kwas benzoesowy, przemywamy wodą i zostawiamy do wysuszenia. Wydzielone substancje w czystych, zamykanych i opisanych pojemnikach oddajemy wraz ze sprawozdaniem. zawierać wzory strukturalne, ilość wydzielonych substancji, współczynnik załamania światła benzaldehydu, temperaturę topnienia kwasu benzoesowego oraz odpowiednie wartości literaturowe i numery pomiarów. Należy krótko wyjaśnić sposób postępowania i celowości wykonywania poszczególnych operacji w trakcie rozdziału (schemat rozdziału i równania reakcji). 3

[O.2] Rozdzielanie mieszaniny aniliny i nitrobenzenu Montujemy zestaw do destylacji z parą wodną. Otrzymaną próbkę, zawierającą anilinę i nitrobenzen, umieszczamy w kolbie do destylacji z parą wodną, naczynie spłukujemy 100 ml wody. Zawartość zakwaszamy kwasem solnym aż do uzyskania trwałego odczynu kwaśnego. Prowadzimy destylację z parą wodną aż do uzyskania klarownego destylatu. Oddzielamy nitrobenzen, wytrząsamy przez 15 minut z bezwodnym MgSO 4 i sączymy do wytarowanego naczynia. Oznaczamy współczynnik załamania światła. Pozostałość w kolbie destylacyjnej alkalizujemy stężonym roztworem NaOH i ponownie destylujemy z parą wodną do uzyskania klarownego destylatu, po czym oddestylowujemy jeszcze 100 ml roztworu. Nasycamy destylat NaCl, po czym ekstrahujemy czterokrotnie 40 mililitrowymi porcjami eteru (pierwszymi dwoma porcjami eteru należy uprzednio przepłukać naczynie po destylacie). Ekstrakty eterowe łączymy, przemywamy nasyconym roztworem NaCl i suszymy stałym KOH. Jeżeli KOH upłynnia się, należy warstwę organiczną oddzielić od wodnej i ponownie suszyć stałym KOH. Ekstrakt dekantuje się (lub sączy przez sączek fałdowany) do kolby okrągłodennej i oddestylowuje eter, następnie przenosi pozostałość do mniejszej kolby (100 ml), przemywając oddestylowanym wcześniej eterem, oddestylowuje resztki eteru, a po wypuszczeniu wody z chłodnicy, destyluje się anilinę, zbierając frakcje wrzącą w temperaturze 181-185 C. Zebrany eter należy przelać do pojemnika na zlewki eteru. Wydzielone substancje w czystych, zamykanych i opisanych pojemnikach oddajemy wraz ze sprawozdaniem. zawierać wzory strukturalne, ilość wydzielonych substancji, współczynniki załamania światła i temperatury wrzenia substancji oraz odpowiednie wartości literaturowe i numery pomiarów. Należy krótko wyjaśnić sposób postępowania i celowości wykonywania poszczególnych operacji w trakcie rozdziału (schemat rozdziału i równania reakcji). 4

[O.3] Rozdzielanie mieszaniny fenolu i nitrobenzenu Montujemy zestaw do destylacji z parą wodną. Otrzymaną próbkę, zawierającą fenol i nitrobenzen, umieszczamy w kolbie do destylacji z parą wodną, naczynie spłukujemy 100 ml wody. Powoli dodajemy 20% roztwór NaOH aż do uzyskania wyraźnie zasadowego odczynu. Prowadzimy destylację z parą wodną aż do uzyskania klarownego destylatu. Oddzielamy nitrobenzen, wytrząsamy przez 15 minut z bezwodnym MgSO 4 i sączymy do wytarowanego naczynia. Oznaczamy współczynnik załamania światła. Pozostałość w kolbie destylacyjnej zakwaszamy rozcieńczonym (1:1) kwasem siarkowym i ponownie destylujemy z parą wodną do uzyskania klarownego destylatu, destylat nasycamy NaCl, po czym ekstrahujemy trzykrotnie 40 mililitrowymi porcjami eteru (pierwszymi dwoma porcjami eteru należy uprzednio przepłukać naczynie po destylacie). Połączone wyciągi eterowe suszymy bezwodnym MgSO 4, sączymy i oddestylowujemy eter. Pozostałość powinna wykrystalizować po oziębieniu, w przeciwnym razie przenosimy pozostałość do mniejszej kolby (100 ml), przemywając oddestylowanym wcześniej eterem, oddestylowujemy resztki eteru i destylujemy ostrożnie fenol z małej kolbki w temperaturze 182 C. Zebrany eter należy przelać do pojemnika na zlewki eteru. Wydzielone substancje w czystych, zamykanych i opisanych pojemnikach oddajemy wraz ze sprawozdaniem. zawierać wzory strukturalne, ilość wydzielonych substancji, współczynniki załamania światła i temperatury wrzenia/topnienia substancji oraz odpowiednie wartości literaturowe i numery pomiarów. Należy krótko wyjaśnić sposób postępowania i celowości wykonywania poszczególnych operacji w trakcie rozdziału (schemat rozdziału i równania reakcji). 5

[O.4] Oczyszczanie benzaldehydu Otrzymaną próbkę alkoholowego roztworu aldehydu wytrząsamy z trzykrotną objętością nasyconego roztworu wodorosiarczynu sodu (NaHSO 3 ), obserwując efekt egzotermiczny. Wydzielony osad odsączamy pod zmniejszonym ciśnieniem, przemywamy niewielką ilością alkoholu i pozostawiamy do wyschnięcia. Krystaliczną pochodną rozkłada się ostrożnie 2M roztworem kwasu siarkowego, ogrzewając łagodnie na łaźni wodnej aż do zakończenia wydzielania dwutlenku siarki (ostrożnie). Roztwór po ochłodzeniu ekstrahuje się trzykrotnie eterem, przemywa wodą i nasyconym roztworem NaCl, po czym suszy bezwodnym siarczanem magnezu. Po odsączeniu środka suszącego oddestylowujemy eter, przenosimy pozostałość do mniejszej kolby (100 ml), przemywając oddestylowanym wcześniej eterem, oddestylowujemy resztki eteru i destylujemy aldehyd benzoesowy w temperaturze 180 C. Zebrany eter należy przelać do pojemnika na zlewki eteru. Wydzielone substancje w czystych, zamykanych i opisanych pojemnikach oddajemy wraz ze sprawozdaniem. zawierać wzory strukturalne, ilość wydzielonych substancji, współczynniki załamania światła i temperatury wrzenia/topnienia substancji oraz odpowiednie wartości literaturowe i numery pomiarów. Należy obliczyć zawartość aldehydu w otrzymanej próbce i wydajność wydzielania aldehydu z adduktu. Należy krótko wyjaśnić sposób postępowania i celowości wykonywania poszczególnych operacji w trakcie rozdziału (schemat rozdziału i równania reakcji). 6

[O.5] Rozdzielanie mieszaniny aniliny i fenolu Montujemy zestaw do destylacji z parą wodną. Otrzymaną próbkę, zawierającą anilinę i fenol, umieszczamy w kolbie do destylacji z parą wodną, naczynie spłukujemy 100 ml wody. Powoli dodajemy rozcieńczony w stosunku 1:1 kwas solny aż do uzyskania kwaśnego odczynu. Prowadzimy destylację z parą wodną do uzyskania klarownego destylatu, destylat nasycamy NaCl, po czym ekstrahujemy trzykrotnie 40 ml porcjami eteru (pierwszymi dwoma porcjami eteru należy przepłukać naczynie po destylacie). Połączone wyciągi eterowe suszymy bezwodnym MgSO 4, sączymy i oddestylowujemy eter. Pozostałość powinna wykrystalizować po oziębieniu, w przeciwnym razie przenosimy pozostałość do mniejszej kolby (100 ml), przemywając oddestylowanym wcześniej eterem, oddestylowujemy resztki eteru i destylujemy ostrożnie fenol z małej kolbki w temperaturze 182 C. Bezbarwny destylat powinien zakrzepnąć. Zebrany eter należy przelać do pojemnika na zlewki eteru. Pozostałość w kolbie destylacyjnej alkalizujemy stężonym roztworem NaOH i ponownie destylujemy z parą wodną do uzyskania klarownego destylatu, po czym oddestylowujemy jeszcze 100 ml roztworu. Nasycamy destylat NaCl, po czym ekstrahujemy czterokrotnie 40 ml porcjami eteru (przepłukać naczynie po destylacie!). Ekstrakty eterowe łączymy, przemywamy nasyconym roztworem NaCl i suszymy stałym KOH. Jeżeli KOH upłynnia się, należy warstwę organiczną oddzielić od wodnej i ponownie suszyć ją stałym KOH. Ekstrakt dekantuje się (lub sączy przez sączek fałdowany) do kolby okrągłodennej i oddestylowuje eter, następnie przenosi pozostałość do mniejszej kolby (100 ml), przemywając oddestylowanym wcześniej eterem, oddestylowuje resztki eteru, a po wypuszczeniu wody z chłodnicy, destyluje się anilinę, zbierając frakcje wrzącą w temperaturze 181-185 C. Zebrany eter należy przelać do pojemnika na zlewki eteru. zawierać wzory strukturalne, ilość wydzielonych substancji, współczynniki załamania światła i temperatury wrzenia/topnienia substancji oraz odpowiednie wartości literaturowe i numery pomiarów. Należy krótko wyjaśnić sposób postępowania i celowości wykonywania poszczególnych operacji w trakcie rozdziału (schemat rozdziału i równania reakcji). 7

[O.6] Destylacja pod obniżonym ciśnieniem Wszystkie operacje należy wykonywać pod wyciągiem z opuszczoną szybą i w okularach ochronnych. Student otrzymuje jedną z trzech substancji (ok. 40 ml): anilinę (tw. 184ºC), nitrobenzen (210 ºC) lub aldehyd benzoesowy (179 ºC, przykładowe temperatury wrzenia benzaldehydu pod obniżonym ciśnieniem: 79 ºC /25mmHg; 69 ºC /15mmHg; 62 ºC /10mmHg). Substancje mogą być zawilgocone oraz mogą zawierać rozpuszczalniki mieszające się z wodą. Otrzymaną próbkę należy poddać ekstrakcji wodą w rozdzielaczu (pięciokrotnie, zwracając uwagę, która warstwa jest wodna, a która organiczna), następnie solanką (dwukrotnie, do wyklarowania warstwy organicznej). Starannie oddzieloną warstwę organiczną suszy się odpowiednim bezwodnym środkiem suszącym: anilinę KOH, nitrobenzen chlorkiem wapnia, aldehyd benzoesowy siarczanem magnezu. Ze względu na gęstość i lepkość cieczy skuteczne osuszenie wymaga wytrząsania ze środkiem suszącym (w zamkniętej kolbie stożkowej ze szlifem) przez przynajmniej 30 minut. Oczyszczaną ciecz przesącza się przez sączek karbowany bezpośrednio do kolby destylacyjnej, sączenie może trwać dość długo (sugeruje się użycie kolby dwuszyjnej i wprowadzenie kapilary destylacyjnej przez boczną szyjkę). Po zmontowaniu pozostałych elementów zestawu do destylacji pod obniżonym ciśnieniem rozpoczyna się chłodzenie wymrażacza ciekłym azotem (ostrożnie!) i uruchamia się pompę próżniową. Należy zwrócić uwagę na intensywność przepływu powietrza przez kapilarę, gdy strumień jest zbyt duży, należy zacisnąć wlot węża nałożonego na kapilarę. Na manometrze odczytuje się ciśnienie panujące w zestawie, powinno wynosić ok. 20 mm Hg. Jeżeli ciśnienie jest wyższe, należy znaleźć i usunąć nieszczelności. Po dokonaniu odczytu kran manometru powinien być zamknięty, aby uniknąć zniszczenia przyrządu podczas zmian ciśnienia. Po ustaleniu ciśnienia należy oszacować przewidywaną temperaturę wrzenia przy danym ciśnieniu, korzystając z nomogramu lub programu komputerowego, np.: http://www.sigmaaldrich.com/area_of_interest/research_essentials/solvents/key_resources/nomograph.html Ogrzewanie należy prowadzić ostrożnie i powoli, górną część kolby i nasadkę można owinąć folią aluminiową. Zasadniczą frakcję zbiera się do jednego z wybranych odbieralników po skontrolowaniu ciśnienia. Po zakończeniu zbierania frakcji głównej należy zmienić odbieralnik. Pojemność odbieralników powinna być dostosowana do przewidywanej objętości frakcji. Po zebraniu potrzebnej frakcji usuwa się źródło ciepła i utrzymując obniżone ciśnienie studzi się stopniowo aparaturę, powietrze wpuszcza się dopiero, gdy 8

można dotknąć dłonią kolby destylacyjnej. Destylowanie do końca jest wyjątkowo niebezpieczne. Należy oznaczyć współczynnik załamania światła destylatu oraz wydajność oczyszczania. W sprawozdaniu należy podać temperaturę wrzenia destylatu i ciśnienie destylacji. Uwagi praktyczne: Przynajmniej dzień przed wykonaniem ćwiczenia należy zgłosić do laborantów zapotrzebowanie na ciekły azot. Smaru używa się jedynie do szlifu obrotowego odbieralnika (z umiarem) oraz ewentualnie do szlifu kolby destylacyjnej (lubi się zapiekać) i termometru (też lubi). Końcówkę kapilary wyciąga się w płomieniu bezpośrednio przed destylacją. Wymrażacz wyjmuje się z naczynia z azotem po odłączeniu próżni, natomiast opróżnia ze skroplin dopiero po roztopieniu zawartości. Kapilara wrzenna Woda Wylot Wlot Manometr Łaźnia grzejna Odbieralniki Do pompy próżniowej Pułapka wymrażająca Naczynie Dewara Schemat aparatury do destylacji pod obniżonym ciśnieniem. Rzeczywisty wygląd zależy od dostępnego zestawu szkła. Kolejność łączenia elementów (manometr, wymrażacz) oraz sposób i miejsca zamocowania elementów należy przedyskutować z prowadzącym przed rozpoczęciem ćwiczenia. 9

[KK] Oczyszczanie kwasu karboksylowego Próbka może być zanieczyszczona substancjami niepolarnymi oraz solami nieorganicznymi. Otrzymaną próbkę rozpuszcza się w 10% roztworze NaOH i odsącza ewentualne zanieczyszczenia stałe. Jeżeli uzyskany roztwór jest zabarwiony, dodaje się porcję węgla aktywnego, zagotowuje i odsącza osad na gorąco. Roztwór (o temperaturze pokojowej!) ekstrahuje się eterem (połowa objętości fazy wodnej, nie mniej niż 40 ml), a następnie ostrożnie zakwasza rozcieńczonym w stosunku 1:1 kwasem siarkowym (należy oszacować ilość na podstawie zużytego NaOH). Po ochłodzeniu powinien wydzielić się osad kwasu, który odsącza się pod zmniejszonym ciśnieniem, przemywa wodą i suszy. Jeżeli kwas się nie wydzieli, należy roztwór ekstrahować trzykrotnie 50 ml chlorku metylenu, połączone warstwy organiczne przemyć nasyconym roztworem NaCl i wysuszyć bezwodnym siarczanem magnezu. Po odsączeniu środka suszącego należy oddestylować chlorek metylenu aż do momentu krystalizacji kwasu. Użyty eter i ewentualnie chlorek metylenu należy przelać do pojemników na odpowiednie zlewki. Uzyskany kwas karboksylowy należy przekrystalizować z metanolu, zachowując odpowiednie środki ostrożności. Należy użyć najmniejszej niezbędnej ilości metanolu (zależy ona od ilości kwasu i jego rozpuszczalności). Na podstawie oznaczonej temperatury topnienia (i ewentualnych reakcji charakterystycznych) ustala się, który kwas znajdował się w próbce. zawierać wzory strukturalne, ilość wydzielonej substancji, zmierzoną temperaturę topnienia, odpowiednie wartości literaturowe, ewentualny opis dalszej identyfikacji kwasu oraz numery pomiarów. Należy krótko wyjaśnić sposób postępowania i celowości wykonywania poszczególnych operacji w trakcie rozdziału (schemat rozdziału i równania reakcji). 10

[F] Oczyszczanie fenolu Otrzymana próbka może być zanieczyszczona substancjami niepolarnymi oraz solami nieorganicznymi. Otrzymaną próbkę rozpuszcza się w 10% roztworze NaOH i odsącza ewentualne zanieczyszczenia stałe. Jeżeli uzyskany roztwór jest zabarwiony, dodaje się porcję węgla aktywnego, zagotowuje i odsącza osad na gorąco. Roztwór (o temperaturze pokojowej!) ekstrahuje się eterem (połowa objętości fazy wodnej, nie mniej niż 40 ml), a następnie ostrożnie zakwasza rozcieńczonym w stosunku 1:1 kwasem siarkowym (należy oszacować ilość na podstawie zużytego NaOH). Po ochłodzeniu roztwór ekstrahuje się trzykrotnie 50 ml chlorku metylenu, połączone warstwy organiczne przemywa wodą i nasyconym roztworem NaCl, po czym suszy siarczanem magnezu. Po odsączeniu środka suszącego należy oddestylować chlorek metylenu aż do momentu krystalizacji fenolu. Użyty eter i chlorek metylenu należy przelać do pojemników na odpowiednie zlewki. Na podstawie oznaczonej temperatury topnienia (i ewentualnych reakcji charakterystycznych) ustala się, który fenol znajdował się w próbce. zawierać wzory strukturalne, ilość wydzielonej substancji, zmierzoną temperaturę topnienia, odpowiednie wartości literaturowe, ewentualny opis dalszej identyfikacji fenolu oraz numery pomiarów. Należy krótko wyjaśnić sposób postępowania i celowości wykonywania poszczególnych operacji w trakcie rozdziału (schemat rozdziału i równania reakcji). 11