OZNACZANIE AZOTU MINERALNEGO W GLEBIE



Podobne dokumenty
OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

BADANIE ZAWARTOŚCI ZWIĄZKÓW AZOTU. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO(V) METODĄ KOLORYMETRYCZNĄ.

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

ĆWICZENIE NR 3 BADANIE MIKROBIOLOGICZNEGO UTLENIENIA AMONIAKU DO AZOTYNÓW ZA POMOCĄ BAKTERII NITROSOMONAS sp.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

DEZYNFEKCJA WODY CHLOROWANIE DO PUNKTU

Klasa czystości I II III IV V

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

VI. OCENA NARAŻENIA ZAWODOWEGO I ŚRODOWISKOWEGO NA DZIAŁANIE KSENOBIOTYKÓW

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

[1 a] Acetanilid LISTA PREPARATÓW. Odczynniki: anilina 15 g lodowaty kwas octowy 15 ml pył cynkowy 0.1 g węgiel aktywny 0.2 g

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Ćwiczenia laboratoryjne 2

STRUKTURA A WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE I FIZYCZNE PIERWIASTKÓW I ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

Katedra Chemii Organicznej. Przemysłowe Syntezy Związków Organicznych Ćwiczenia Laboratoryjne 10 h (2 x5h) Dr hab.

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

OZNACZANIE UTLENIALNOŚCI WÓD NATURALNYCH

Obliczanie stężeń roztworów

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI CUKRÓW REDUKUJĄCYCH ORAZ CUKRÓW REDUKUJĄCYCH PO INWERSJI

009 Ile gramów jodu i ile mililitrów alkoholu etylowego (gęstość 0,78 g/ml) potrzeba do sporządzenia 15 g jodyny, czyli 10% roztworu jodu w alkoholu e

6. ph i ELEKTROLITY. 6. ph i elektrolity

OCHRONA ŚRODOWISKA W ENERGETYCE NEUTRALIZACJA ŚCIEKÓW

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

OBLICZANIE WYNIKÓW ANALIZ I

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

STAłA I STOPIEŃ DYSOCJACJI; ph MIX ZADAŃ Czytaj uważnie polecenia. Powodzenia!

Piotr Chojnacki 1. Cel: Celem ćwiczenia jest wykrycie jonu Cl -- za pomocą reakcji charakterystycznych.

Chemia Organiczna Syntezy

EDTA (roztwór 0,02 mol/l) Zgodnie z rozporządzeniem (WE) 1272/2008 związek nie jest. substancją niebezpieczną.

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

KOLORYMETRYCZNE OZNACZANIE AZOTANÓW FLUORKÓW I FOSFORANÓW Instrukcja do ćwiczeń opracowana w Katedrze Chemii Środowiska Uniwersytetu Łódzkiego.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

Projekt współfinansowany przez Unię Europejską w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego

OZNACZANIE INDEKSU FENOLOWEGO W WODZIE

Identyfikacja wybranych kationów i anionów

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

Trichlorek fosforu. metoda oznaczania dr EWA GAWĘDA Centralny Instytut Ochrony Pracy Państwowy Instytut Badawczy Warszawa ul.

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 2

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH: SULFONOWANIE ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

10. ALKACYMETRIA. 10. Alkacymetria

Ćwiczenia laboratoryjne semestr pierwszy 30 godzin. Kierunek: Genetyka i biologia eksperymentalna

Wanda Wołyńska Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego Oddział Cukrownictwa. IBPRS Oddział Cukrownictwa Łódź, czerwiec 2013r.

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Ćwiczenia nr 2: Stężenia

ĆWICZENIE 1 Określenie potrzeb wapnowania gleb w zależności od ich właściwości fizykochemicznych

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

ZADANIA Z KONKURSU POLITECHNIKI WARSZAWSKIEJ (RÓWNOWAGI W ROZTWORZE) Opracował: Kuba Skrzeczkowski (Liceum Akademickie w ZS UMK w Toruniu)

Obliczanie stężeń roztworów

. Pierwszą czynnością badania jest pobranie próbki wody. W tym celu potrzebna będzie szklana butelka o poj. ok. 250 cm 3.

Imię i nazwisko studenta:...

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

1. PRZYGOTOWANIE PRÓB KORYGUJĄCYCH

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

2.4. ZADANIA STECHIOMETRIA. 1. Ile moli stanowi:

Szkoła Letnia STC Łódź 2013 Oznaczanie zabarwienia cukru białego, cukrów surowych i specjalnych w roztworze wodnym i metodą MOPS przy ph 7,0

Analiza jakościowa wybranych aminokwasów

OZNACZANIE WYMIENNEJ KWASOWOŚCI W GLEBACH LEKKICH METODĄ BUFOROWĄ

INŻYNIERIA PROCESÓW CHEMICZNYCH

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

ANALIZA MOCZU FIZJOLOGICZNEGO I PATOLOGICZNEGO I. WYKRYWANIE NAJWAŻNIEJSZYCH SKŁADNIKÓW NIEORGANICZNYCH I ORGANICZNYCH MOCZU PRAWIDŁOWEGO.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 6. Manganometryczne oznaczenia Mn 2+ i H 2 O 2

PODSTAWY STECHIOMETRII

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

Instrukcja do ćwiczenia WŁAŚCIWOŚCI WYBRANYCH ANIONÓW.

Protokół: Reakcje charakterystyczne cukrowców

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

SEMINARIUM Z ZADAŃ ALKACYMETRIA

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

UWAGA NA WRZĄCY OLEJ!!!!

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Reakcje utleniania i redukcji Reakcje metali z wodorotlenkiem sodu (6 mol/dm 3 )

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

SPRAWOZDANIE 2. Data:... Kierunek studiów i nr grupy...

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

Farmacja rok I Zajęcia fakultatywne: Identyfikacja i określanie zwartości zanieczyszczeń nieorganicznych w preparatach farmaceutycznych

BADANIE WŁAŚCIWOŚCI FIZYKOCHEMICZNYCH AMINOKWASÓW

Transkrypt:

R. SCHILLAK OZNACZANIE AZOTU MINERALNEGO W GLEBIE (Z Instytutu M elioracji i U żytków Zielonych Bydgoszcz) Azot mineralny w glebie występuje głównie w formie amonowej i azotanowej, a w pewnych wypadkach częściowo także w formie azotynowej. Pochodzi on bądź to z nawożenia, bądź też powstaje w procesach mikrobiologicznych, amonifikacji i nitryfikacji. Siedzenie ilościowych przemian mineralnego azotu w glebie dostarcza informacji 0 żyzności gleby i jej aktywności biologicznej. Opracowana metoda ma umożliwić łatwe i szybkie ilościowe oznaczenie azotu amonowego i azotanowego, a w miarę potrzeby i azotynowego w glebie. Polega ona na bezpośrednim kolorymetrycznym oznaczeniu tych trzech form azotu w jednym wyciągu glebowym. SPORZĄDZANIE W YCIĄGU GLEBOWEGO Do kolbki miarowej o pojemności 100 ml wsypuje się 10 g gleby powietrznie suchej lub świeżej (w oddzielnej próbce oznacza się zawartość wody). Następnie dodaje się 2 0 ml 5% roztworu K 2 SO 4, miesza 1 jeszcze 50 60 ml wody destylowanej. Kolbkę korkuje się i silnie wytrząsa, po czym zostawia na 2 godz., wytrząsając od czasu do czasu nie rzadziej jak co pół godziny. W końcu, po uzupełnieniu pojemności do kreski wodą, jeszcze raz się wytrząsa i pozostawia na jakiś czas do opadnięcia grubszego osadu. Zawartość kolby sączy się przez suchy fałdowany sączek odrzucając pierwsze 5 10 ml przesączu. Przesącz powinien być zupełnie klarowny i bezbarwny. OZNACZANIE AZOTU AMONOWEGO Do kolorymetrycznego oznaczania amoniaku bardzo powszechnie stosuje się odczynnik Nesslera. Reakcja barwna jest bardzo czuła, lecz kapryśna i niestała z powodu koloidowego charakteru połączenia barwnego.

1 8 6 R. Schillak Inną reakcją barwną na amoniak, mało jeszcze rozpowszechnioną, choć znaną od czasów Bertholeta, otrzymuje się za pomocą fenolu i podchlorynu. Powstające niebieskie zabarwienie jest bardzo trwałe, jednak starsze metody nie dawały ani zadowalającej czułości, ani reproduktywności. Opisana niżej metoda oparta na tej zasadzie jest modyfikacją m e tody ogłoszonej w 1958 r. w Anglii*). Daje wystarczająco ścisłe wyniki, jest czuła, choć nieco mniej od reakcji z odczynnikami Nesslera, jest selektywna; reagując tylko z amoniakiem pozwala właściwie odtwarzać wyniki, a zabarwienie wykazuje zgodność z prawem Lamberta-Beera (co nie zachodzi w wypadku użycia odczynnika Nesslera). Odczynniki: 1) Roztwór fenolu. 25 g czystego, bezbarwnego fenolu rozpuszcza się w 10 ml acetonu i przelewa do kolbki miarowej na 50 ml. Resztki fenolu spłukuje się do kolbki 1 0 ml alkoholu n-butylowego i kolbkę dopełnia się wodą do kreski. Po wymieszaniu kolbkę zamkniętą koreczkiem szklanym przechowuje się w chłodnym i ciem nym miejscu. 2) Roztwór NaOH. 10,8 g NaOH rozpuszcza się w wodzie i w kolbce miarowej na 50 ml; uzupełnia się wodą do kreski. Zamiast stałego NaOH lepiej użyć stężonego roztworu NaOH, w którym wyznacza się ilość NaOH z jego gęstości. 3) Roztwór fenolanu sodu. Przygotowuje się w kolbce na 50 ml przez zmieszanie 10 ml roztworu fenolu (1) z 10 m l roztworu NaOH (2 ) i rozcieńczenie wodą do kreski. 4) Roztwór podchlorynu sodu zawierający 1% czynnego chloru. Postępowanie: Do probówki pipetuje się 10 ml wyciągu glebowego, a w wypadku większej ilości azotu amonowego odpowiednio mniej, uzupełniając objętość do 10 ml wodą. Następnie wprowadza ' się 1 ml roztworu fenolanu (3) i po przemieszaniu 0,5 ml roztworu podchlorynu (4). Miesza się i zostawia na ~ 2 godz., po czym kolorymetruje się przy l = 625mu (filtr jasnoczerwony probówki kolorymetryczne o średnicy ~ 18 mm). Roztwór wzorcowy, sporządzony z (NH4 )2 S 0 4, powinien być tak rozcieńczony, by 1 ml zawierał 1 M*g N-amonowego. Do kalibrowania daje się do probówek roztworu wzorcowego 1 1 0 ml uzupełniając objętość odpowiednio wodą do 10 ml. Dalsze postępowanie jest takie same jak z wyciągiem glebowym. *) Crowther А. В i Large R. S«, Im proved conditions for the sodium p h en oxid e sodium hypochlorite m ethod for the determ ination of am m onia, A naly st, t. 81, 64 65 (1956).

Oznaczanie azotu mineralnego w glebie 187 Czułość oznaczenia leży poniżej 1 xg N-amonowego w 10 ml wyciągu* co odpowiada 0, 1 mg N w 100 g badanej gleby. Ponieważ gleba zajmuje około 5% objętości kolby, to dla większej ścisłości można otrzymany wynik pomnożyć przez 0,95; najczęściej jednak jest to zbyteczne. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO Zasada oznaczania oparta jest na nitrowaniu przez azotany kwasu fenolodwusulfonowego do odpowiedniego nitrofenolu, którego roztwory -alkaliczne (amoniakalne) są intensyw nie zabarwione na żółto. Odczynniki: 1 ) Kwas fenolodwusulfonowy. W kolbie z okrągłym dnem o pojemności 500 ml 25 g fenolu rozpuszcza się w 150 ml stęż, H 2 SO4 oraz w 75 m l 15% dym iącego H2 SO4. Kolbę zaopatrzoną w chłodnicę powietrzną ogrzewa się we wrzącej łaźni wodnej przez 2 godziny. 2 ) Woda amoniakalna. Postępowanie: W parowniczkach o pojemności 50 ml odparowuje się do sucha na wrzącej łaźni wodnej odpowiednią ilość wyciągu glebowego potraktowanego 0,5 ml 0,1-n NaOH; zwykle wystarcza 20 ml wyciągu, jednak przy bogatszych w azotany mniej, a przy ubogich można odparować więcej. Suchą pozostałość w parowniczce zwilża się dokładnie 2 ml kwasu fenolodwusulfonowego (1 ), po czym dodaje się 1 ml wody, m iesza, 3 5 minut ogrzewa na łaźni wodnej. Zawartość parowniczki rozcieńcza się wodą i przenosi ilościowo do kolbki miarowej na 50 ml. Alkalizuje się amoniakiem (lekki nadmiar) i dopełnia wodą do kreski. K olory metru je się przy X = 410 min. Gdy roztwór jest zbyt intensyw nie zabarwiony, można go odpowiednio rozcieńczyć wodą i potem kolorymetrować, uwzględniając przy obliczaniu wyników na 1 0 0 g gleby zastosowane rozcieńczenie. Roztwór wzorcowy przygotowuje się z roztworu KNO3 rozcieńczając go tak, że 1 ml zawiera 5 \ig N-azotanowego. Do parowniczek pipetuje się 2, 4, 6, 8 i 10 ml roztworu wzorcowego i po 0,5 ml 0,1-n NaOH i dalej postępuje tak jak z wyciągiem glebowym. Czułość oznaczenia przy odparowaniu 20 ml wyciągu wynosi ~ 0,25 mg N-azotanowego w 100 g badanej gleby. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO Azotyny powstają w procesie nitryfikacji tylko w glebach o ph > 7. W glebach słabo kwaśnych i kwaśnych oznaczanie azotynów jest bez

188 R. Schillak celowe. Do kolor ymerycznego oznaczania azotynów wyzyskano reakcję w środowisku słabo kwaśnym między azotynami, a m-fenylenodwuaminą. Powstające barwne połączenia są bardzo trwałe. Odczynniki: 1) 0,5% roztwór chlorowodorku metafenylenodwuaminy zakwaszony kilku kroplami kwasu octowego. 2) Roztwór buforowy. W kolbie miarowej na 500 ml rozpuszcza się w wodzie 25 g NaCl, 10 g octanu sodu i 7,5 ml kwasu octowego lod. a objętość uzupełnia się wodą do kreski. Postępowanie: Do probówek pipetuje się 10 ml wyciągu glebowego lub mniej, uzupełniając objętość wodą do 10 ml. Następnie dodaje się 1 ml roztworu buforowego (2) oraz 0,2 ml odczynnika (1) miesza, a zakorkowane probówki zostawia się do następnego dnia. Kolorymetruje się przy I = 460 mim. Celem przygotowania roztworu wzorcowego sporządza się roztwór wodny A gn 02. Czysty A gn 02 łatwo przygotować z AgNOy i N an 02. Do roztworu A g N 0 2 o znanej ilości azotynów daje się nadmiar roztworu NaCl. Roztwór nad osadem AgCl rozcieńcza się tak, by 1 ml zawierał 0,2 м-g N-azotynowego. Do probówek pipetuje się 2, 4, 6, 8 i 10 ml wzorca uzupełniając odpowiednio objętość wodą do 10 ml. Dalsze postępowanie jest takie jak z wyciągiem glebowym. Czułość oznaczenia leży poniżej 0,4 \*g N-azotynowego w 10 ml lub 0,04 mg w 100 g gleby. Opisane oznaczenia można łatwo przeprowadzić w bezbarwnych w y ciągach glebowych. Niekiedy jednak są one żółte, zwłaszcza z gleb organicznych. W takich wypadkach najmniejsze zakłócenia występują przy oznaczaniu amoniaku. Dąży się do opracowania metody odbarwienia takich wyciągów w sposób, który by nie powodował żadnych strat azotu m ineralnego. Р. Ш ИЛЛАК О П РЕДЕЛЕН И Е М ИНЕРАЛЬНОГО А ЗО Т А В ПОЧВЕ (Лаборатория удобрения Института Возделывания, Удобрения и Почвоведения Быдгощь) Резюме В почве содержится азот минеральный в форме аммиачной, азотной и азотистой. Все три формы азота определяют колориметрически в одной и той ж е почвенной вытяжке, которую получают взбалтыванием ю г почвы с 2 0 мл 5% K 2SO4 и 50 мл воды с последующим разбавлением до 100 мл.

Oznaczanie azotu mineralnego w glebie 189 Аммиачный азот определяют следующим образом: ю мл вытяжки окрашивают добавлением фенолата натрия и кислого хлорноватистого натрия в голубой цвет. А зот азотнокислый определяют так: 20 мл вытяжки (в более или менее специфических условиях) выпаривают до суха и остаток нитрируют раствором фенолдвусульфоновой кислоты в конц. H2SO4, затем разбавляют водой и алькализуют аммиаком. Появляется желтая окраска. Азотистый азот содержится только в почве с ph > 7. Ю мл вытяжки смешивают с буферным раствором. Смесь должна иметь ph = 4 5. Добавляют затем м-фенилдиамина в разбавленной уксусной кислоте. На следующий день раствор окрашивается в розово-желтый цвет. Чувствительность анализа: в 100 г почвы аммиачного азота азотнокислого азотистого ОД мг 0,25 0,04 R. SCHILLAK DETERMINATION OF MINERAL NITROGEN IN SOIL (Soil Fertilizing E stablishm ent of the Institute of Soil Culture, Fertilizing and Soil Science Bydgoszcz) Summary The mineral nitrogen exists in the soil as ammonia, nitrate and nitrite nitrogen and all the three forms are tested colorimetrically in the same soil extract. The extract is obtained by shaking 10 g of soil sample with 20 ml 5% K2SO4 and 50 ml of water, then diluting with water to 100 ml. For ammonia N determination, the blue colour is developing in an aliquot of extract diluted to 10 ml after addition of sodium phenoxide and sodium hypochlorite. For nitrate determination 20 ml of extract (in some cases less or more) is evaporated to a dry state and the residue is nitrified with phenoldisulphonic acid in conc. H2SO4. A yellow colour is developing after diluting with water and making alkaline with ammonia. The nitrate N can be produced in soil with ph > 7 only. In an aliquot of extract diluted to 10 ml a buff or solution is added to make ph 4 5 and then a solution of meta- phenylenediamine in diluted acetic acid. A pink-yellow colour will be developed on the next day. The sensitivity of these reactions is as follows: in relation to 100 g soil for ammonia N 0,1 mg, for nitrate N 0,25 mg, and for nitrite N 0,04 mg.