Organizmy modelowe - drożdże. Saccharomyces cerevisiae i nie tylko



Podobne dokumenty
Organizmy modelowe - drożdże. Saccharomyces cerevisiae i nie tylko

Organizmy modelowe - drożdże. Saccharomyces cerevisiae i nie tylko

Organizmy modelowe - drożdże. Saccharomyces cerevisiae i nie tylko

Organizmy modelowe - drożdże. Saccharomyces cerevisiae i nie tylko

Genomika funkcjonalna. Wielkoskalowe analizy genetyczne

Genomika funkcjonalna. Wielkoskalowe analizy genetyczne

Genomika funkcjonalna. Wielkoskalowe analizy genetyczne

Biologia molekularna z genetyką

Inżynieria Genetyczna ćw. 3

Ekspresja genów heterogenicznych w drożdżach Pichia pastoris

Dr. habil. Anna Salek International Bio-Consulting 1 Germany

Możliwości współczesnej inżynierii genetycznej w obszarze biotechnologii

Mapowanie fizyczne genomów -konstrukcja map wyskalowanych w jednostkach fizycznych -najdokładniejszą mapą fizyczną genomu, o największej

Inżynieria Genetyczna ćw. 2

Drożdżowe systemy ekspresyjne

Drożdże piekarskie jako organizm modelowy w genetyce

Wektory DNA - klonowanie molekularne

Dr. habil. Anna Salek International Bio-Consulting 1 Germany

Wektory DNA - klonowanie molekularne

wykład dla studentów II roku biotechnologii Andrzej Wierzbicki

Tematyka zajęć z biologii

Możliwości współczesnej inżynierii genetycznej w obszarze biotechnologii

Plan wykładów z genetyki ogólnej

mikrosatelitarne, minisatelitarne i polimorfizm liczby kopii

Ewolucjonizm NEODARWINIZM. Dr Jacek Francikowski Uniwersyteckie Towarzystwo Naukowe Uniwersytet Śląski w Katowicach

Ćwiczenia 1 Wirtualne Klonowanie Prowadzący: mgr inż. Joanna Tymeck-Mulik i mgr Lidia Gaffke. Część teoretyczna:

Wektory DNA - klonowanie molekularne

ARABIDOPSIS THALIANA ORGANIZM MODELOWY W BIOLOGII MOLEKULARNEJ ROŚLIN DLACZEGO ARABIDOPSIS?

BUDOWA I FUNKCJA GENOMU LUDZKIEGO

KLONOWANIE DNA REKOMBINACJA DNA WEKTORY

Zagadnienia na egzamin magisterski na kierunku Biologia Rok akad. 2017/2018

Nowoczesne systemy ekspresji genów

dostateczny oraz: wyjaśnia, z czego wynika komplementarność zasad przedstawia graficznie regułę

Konstrukcja wektora plazmidowego DNA do klonowania genów i/lub wektora plazmidowego do sekrecji w bakteriach mlekowych

Metody analizy genomu

Konspekt do zajęć z przedmiotu Genetyka dla kierunku Położnictwo dr Anna Skorczyk-Werner Katedra i Zakład Genetyki Medycznej

Wektory DNA - klonowanie molekularne

WPROWADZENIE DO GENETYKI MOLEKULARNEJ

Wektory DNA - klonowanie molekularne

SYLABUS. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki

Zagadnienia na egzamin magisterski na kierunku Biologia Rok akad. 2018/2019

Organizmy modelowe - drożdże. Saccharomyces cerevisiae i nie tylko

MIKROBIOLOGIA GENETYKA_2012. Teoria

Pytania Egzamin magisterski

Wektory DNA - klonowanie molekularne

Konkurs szkolny Mistrz genetyki etap II

WPROWADZENIE DO GENETYKI MOLEKULARNEJ

Klonowanie molekularne Kurs doskonalący. Zakład Geriatrii i Gerontologii CMKP

WYMAGANIA EDUKACYJNE BIOLOGIA zakres podstawowy biologia na czasie

Biologia medyczna, materiały dla studentów

Wymagania edukacyjne Biologia na czasie zakres podstawowy przedmiot biologia nauczana dwujęzycznie poziom podstawowy klasa Ib i Ic

Biologia molekularna z genetyką

Inżynieria Genetyczna ćw. 1

Inżynieria genetyczna- 6 ECTS. Inżynieria genetyczna. Podstawowe pojęcia Część II Klonowanie ekspresyjne Od genu do białka

Teoria ewolucji. Podstawowe pojęcia. Wspólne pochodzenie.

GENOM I JEGO STRUKTURA

Genetyka w nowej podstawie programowej

Wymagania edukacyjne z biologii w klasie pierwszej, zakres podstawowy. Podręcznik Biologia na czasie - Wyd. Nowa Era

Badanie funkcji genu

WYMAGANIA EDUKACYJNE Z BIOLOGII, ZAKRES PODSTAWOWY 2018/19

WYMAGANIA EDUKACYJNE BIOLOGIA NA CZASIE, ZAKRES PODSTAWOWY

Warszawa, dnia 3 sierpnia 2016 r. Poz. 1173

Wymagania edukacyjne Biologia na czasie zakres podstawowy

Wymagania na poszczególne stopnie szkolne dla przedmiotu biologia. Klasa I Liceum Ogólnokształcącego poziom podstawowy

Dr hab. Anna Bębenek Warszawa,

wykład dla studentów II roku biotechnologii Andrzej Wierzbicki

Wymagania edukacyjne z biologii- zakres podstawowy: kl 1 ZSZ, 1LO

Podstawowe strategie i techniki genetyki molekularnej

Badanie funkcji genu

Organizmy modelowe - drożdże. Saccharomyces cerevisiae i nie tylko

definiuje pojęcia: inżynieria genetyczna, replikacja DNA wyjaśnia regułę komplementarności

Praca klasowa waga 3. Sprawdzian waga 3. Kartkówka waga 2. Odpowiedź waga 1. Aktywność waga 1

WYMAGANIA EDUKACYJNE Z BIOLOGII (Klasa 1B, 1C, 1D, 1E, 1F ;rok szkolny 2018/2019) - ZAKRES PODSTAWOWY - NOWA ERA. dostateczny (P) podstawowy

Zagadnienia na egzamin licencjacki, kierunek: Biologia Medyczna I st. Rok akad. 2018/2019

Wymagania edukacyjne Biologia na czasie zakres podstawowy

Interakcje genetyczne II. Genetyczne podstawy biologii systemów

Instytut Genetyki i Mikrobiologii Uniwersytet Wrocławski

Wymagania edukacyjne z przedmiotu Biologia. Podręcznik Biologia na czasie wyd. Nowa Era, zakres podstawowy Rok szkolny 2013/2014

Wymagania edukacyjne Biologia na czasie, zakres podstawowy

Wybrane techniki badania białek -proteomika funkcjonalna

Bloki licencjackie i studia magisterskie na Kierunkach: Biotechnologia, specjalność Biotechnologia roślinna oraz Genetyka

Transformacja pośrednia składa się z trzech etapów:

Historia informacji genetycznej. Jak ewolucja tworzy nową informację (z ma ą dygresją).

Wymagania edukacyjne Biologia na czasie zakres podstawowy

Inżynieria genetyczna

Genomika funkcjonalna

Wymagania edukacyjne Biologia na czasie klasa 1 LO, poziom podstawowy

SYLABUS. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki

Wymagania edukacyjne klasa 1LO zakres podstawowy. Stopnie szkolne

Wymagania edukacyjne. Stopnie szkolne

Wymagania edukacyjne z biologii (zakres podstawowy) na poszczególne stopnie szkolne dla klas pierwszych w Zespole Szkół nr1 w Ełku.

2. Enzymy pozwalające na manipulację DNA a. Polimerazy DNA b. Nukleazy c. Ligazy

Wymagania edukacyjne z biologii kl 1d, 1e, 1bm, rok szkolny 2016/17. Poziomy oczekiwanych osiągnięć ucznia. Stopnie szkolne

Metody inżynierii genetycznej SYLABUS A. Informacje ogólne

Wymagania edukacyjne. Poziomy oczekiwanych osiągnięć ucznia. Stopnie szkolne

Wymagania edukacyjne Biologia na czasie zakres podstawowy

Wymagania programowe z biologii na poziomie podstawowym.

Wymagania edukacyjne. Poziomy oczekiwanych osiągnięć ucznia. Stopnie szkolne

Wymagania edukacyjne. Poziomy oczekiwanych osiągnięć ucznia. Stopnie szkolne

Wymagania edukacyjne. Poziomy oczekiwanych osiągnięć ucznia. Stopnie szkolne

Transkrypt:

Organizmy modelowe - drożdże Saccharomyces cerevisiae i nie tylko

Materiały z prezentacji http://wiki.biol.uw.edu.pl/

Co to są drożdże? Mikroorganizmy eukariotyczne zaliczane do grzybów Jednokomórkowe (lub z istotnym stadium jednokomórkowym w cyklu życiowym) Nie stanowią grupy taksonomicznej grupa nieformalna podział grzybów na wielkoowocnikowe, pleśnie i drożdże Organizmy typu drożdży występują wśród workowców i podstawczaków W większości dyskusji ogranicza się pojęcie drożdży do przedstawicieli workowców

Co to są drożdże Typowe skojarzenie u biologa molekularnego i gospodyni domowej:!!!!!!!! Saccharomyces cerevisiae

Drożdże modelowe Przedstawiciele workowców typ Saccharomycotina, klasa Saccharomycetes (drożdże pączkujące, drożdżaki) np. S. cerevisiae, Candida albicans

Drożdże modelowe Przedstawiciele workowców! ale też typ Taphrinomycotina Schizosaccharomyces pombe (drożdże rozszczepkowe)

Różne drożdże W laboratorium wyglądają podobnie S. cerevisiae C. albicans S. pombe

Drożdże to stara i różnorodna grupa Pomiędzy S. cerevisiae a S. pombe: 760 mln. lat W przybliżeniu tyle, co pomiędzy człowiekiem a muchą

Różnorodność drożdży

Candida Candida sp. to nie jest jednostka taksonomiczna Nazwa nadawana drożdżom, u których nie stwierdzono cyklu płciowego Niekiedy bardzo odległe (np. C. albicans i C. glabrata)

Genomika ewolucyjna drożdży Znane są sekwencje genomów kilkunastu gatunków drożdży Wydarzenia ewolucyjne utrata intronów duplikacja całego genomu S. cerevisiae jest gatunkiem wysoce wyspecjalizowanym i nietypowym

Duplikacja genomu - efekty Gatunki przed WGD - 8 chromosomów Po WGD - 16 chromosomów Większość zduplikowanych genów zaniknęła

S. cerevisiae jako organizm modelowy Łatwa hodowla i testy fenotypowe Fizjologia typowa dla mikroorganizmów Bezpieczne i nieszkodliwe dla środowiska Dobrze poznana genetyka klasyczna (analiza tetrad, mapy) Łatwe manipulacje genetyczne ( odwrotna genetyka, plazmidy) Stabilna faza haploidalna oraz diplodialna Znana od 1996 sekwencja genomu (12,5 Mb)

S. cerevisiae - zastosowania Codzienna biotechnologia piekarnictwo, fermentacja alkoholowa! Zaawansowana biotechnologia Systemy klonowania, w tym sztuczne chromosomy Systemy ekspresji białek! Badania podstawowe genetyka klasyczna i molekularna biologia komórki, biochemia genomika, biologia systemów

Saccharomyces cerevisiae

S. cerevisiae rozmnażanie przez mitozę Zarówno komórki haploidalne, jak i diplodalne rozmnażają się wegetatywnie Czas generacji (w bogatym podłożu): ~ 100 minut Podział asymetryczny pączkowanie Liczba podziałów komórki matki ograniczona (25-30) tzw. starzenie replikatywne

S. cerevisiae cykl życiowy

S. cerevisiae typy płciowe Dwa typy płciowe a i α determinowane przez allele locus MAT W dzikich szczepach możliwe przełączenie typu płciowego mechanizm: konwersja genu przez rekombinację umiejscowioną, zależna od endonukleazy HO

Przełączenie typu płciowego Zachodzi po mitozie, tylko w komórce matce Cosma MP, EMBO Rep. 2004; 5(10): 953 957

Cosma MP, EMBO Rep. 2004; 5(10): 953 957 Dlaczego przełączenie zachodzi tylko w komórce-matce? Endonukleaza HO aktywna tylko w komórce-matce W pączku wyciszona przez białko Ash1 mrna ASH1 transportowany do pączka podczas podziału

Typy płciowe w praktyce Przełączanie typu płciowego w dzikich szczepach powoduje, że nie da się utrzymać linii haploidalnych! Szczepy laboratoryjne mają nieaktywną nukleazę HO i nie są zdolne do przełączania typu płciowego Można wprowadzić gen HO na plazmidzie i zaindukować zmianę typu płciowego

Inne modyfikacje w szczepach laboratoryjnych Dzikie szczepy (2n) tworzą w pewnych warunkach pseudostrzępki (pseudohyphae) nie dochodzi do rozdzielenia się komórki matki od pączka! Flokulacja tworzenie agregatów komórek! Większość szczepów laboratoryjnych nie flokuluje (mutanty flo) i nie tworzy pseudostrzępek, co ułatwia izolację pojedynczych klonów i transformację

Narzędzia genetyki drożdżowej Dzikie szczepy to prototrofy, zdolne do fermentacji lub oddychania tlenowego markery auksotrofie (leu, his, ura, trp, met, lys, ade) zwykle wiele różnych genów: np. ade1 i ade2 albo his1 i his3 współcześnie stosowane szczepy mutanty delecyjne (nie ma problemu rewersji)

Narzędzia genetyki drożdżowej oporności G418 (genetycyna), nurseotrycyna itp. geny nadające oporność nie pochodzą z drożdży (bakteryjne) oligomycyna, erytromycyna, chloramfenikol, paromamycyna oporność nadają mutacje w genomie mitochondrialnym

Narzędzia genetyki drożdżowej Podłoża selekcyjne kompletne (YP ekstrakt drożdżowy + pepton) + różne źródła węgla, fermentowalne (glukoza) i niefermentowalne (glicerol, mleczan, etanol) minimalne (sole nieorganiczne, źródło azotu, źródło węgla) syntetyczne kompletne (tzw. dropout) minimalne z szeregiem uzupełnień, pozbawiane konkretnego składnika np. SC leu (wszystko oprócz leucyny)! z antybiotykami (zwykle kompletne)

Narzędzia genetyki drożdżowej Krzyżowanie wystarczy hodować szczepy a i α razem! Selekcja diploidów za pomocą markerów (komplementacja) albo przez mikromanipulację!! Sporulacja diploidów (specjalne ubogie podłoże) Analiza tetrad (mikromanipulacja)

Analiza tetrad

Analiza tetrad Tetrad Spore MAT leu ura his 1 A a + + - 1 B alpha + - + 1 C a - - - 1 D alpha - + +! 2 A a - - - 2 B a + + + 2 C alpha + - + 2 D alpha - + -

Typy tetrad LEU2 his3 leu2 HIS3! PD NPD TT (parental ditype) (non-parental ditype) (tetratype)! LEU2 his3 LEU2 HIS3 LEU2 his3 LEU2 his3 LEU2 HIS3 leu2 HIS3 leu2 HIS3 leu2 his3 leu2 his3 leu2 HIS3 leu2 his3 LEU2 his3 Brak sprzężenia: PD = NPD, PD:NPD:TT = 1:1:4!! sprzężenie PD>NPD

Sztuka selekcji Dwie strategie izolowania mutantów drożdżowych (i nie tylko): skrining (screening) przeszukiwanie kolejno klonów, aż znajdzie się właściwy repliki, hodowle w płytkach 96 i 384, roboty! selekcja zaprojektowana tak, by bezpośrednio wyselekcjonować pożądane klony

Genom S. cerevisiae Pełna sekwencja znana od 1996 (pierwszy genom eukariotyczny)

Genom S. cerevisiae Około 12,5 Mb E. coli ~4,2 Mb; Drosophila ~160 Mb; człowiek ~3 000 Mb Około 6500 genów kodujących białka www.yeastgenome.org

Najlepiej poznany genom eukariotyczny Ciągle 730 (11%) genów o nieznanej funkcji W 2013 było 770

Genom S. cerevisiae Genom zwarty, oszczędnie upakowany Introny bardzo nieliczne (~200, 4% genów) i krótkie Sekwencje regulatorowe dosyć krótkie ~70% genomu to sekwencje kodujące białka niewiele elementów repetytywnych 52 kopie transpozonu TY, ~250 pojedynczych LTR

Baza danych genomu drożdżowego SGD (Saccharomyces Genome Database) www.yeastgenome.org Bardzo kompletna i starannie utrzymywana Personel SGD utrzymuje m. in. standaryzację nazw genów, referencyjną sekwencję genomu, annotację funkcji itp.

Narzędzia genetyki molekularnej drożdży S. cerevisiae to jeden z najłatwiejszych w manipulowaniu organizmów Podstawowe właściwości bardzo wysoka wydajność rekombinacji homologicznej łatwość ukierunkowanej manipulacji genomem

Narzędzia genetyki molekularnej drożdży Podstawowe właściwości obecność autonomicznych plazmidów wszechstronny repertuar wektorów praktycznie brak intronów łatwa izolacja sekwencji kodujących bez etapu cdna wysoka wydajność transformacji (~10 4-10 5 /µg DNA) możliwość transformowania mitochondriów

Wektory drożdżowe Wektory bifunkcjonalne (E. coli i S. cerevisiae) Podstawowe grupy integracyjne centromerowe (niskokopijne) episomalne (wysokokopijne) sztuczne chromosomy drożdżowe (YAC)

Wektory episomalne Szkielet wektora bakteryjnego ori drożdżowego plazmidu 2μ (50-200 kopii/komórkę) markery Nadekspresja sklonowanego genu dzięki dużej liczbie kopii

Wektory centromerowe Szkielet wektora bakteryjnego sekwencja ARS (start replikacji chromosomu) i CEN (centromer) markery 1-3 kopie/komórkę ekspresja sklonowanego genu na poziomie bliskim natywnemu

Tasowanie plazmidów Sposób na szybką wymianę allelu w przypadku, gdy delecja jest letalna Wykorzystywany jest system kontrselekcji, najczęściej URA3/5-FOA kwas 5-fluoroorotowy zabójczy dla komórek URA3 +, nieszkodliwy dla komórek ura3 - można najpierw wprowadzić plazmid z markerem URA3 a potem, kiedy potrzeba, selekcjonować komórki, które go straciły

Tasowanie plazmidów w analizie genów niezbędnych do życia

Delecja genu przez rekombinację Tzw. dysrupcja genu

Dysrupcje metoda PCR Homologiczne flanki nie muszą być długie, można je dodać przez PCR Kaseta KanMX4, nie pochodzi z drożdży, nie rekombinuje sama z genomem

Klonowanie gap repair Wykorzystanie rekombinacji do klonowania bez ligazy

Kolekcje Dostępne kolekcje szczepów delecyjnych Diploidalne heterozygotyczne >6000 Homozygotyczne ~4000 reszta letalne u homozygot

Kolekcje Inne kolekcje fuzje ze znacznikami powinowactwa ORF pod regulowanym promotorem nadekspresja ORF ze znacznikiem powinowactwa i wiele innych

Delecja bez śladu Metoda pop in pop out

Mutageneza w genomie bez śladu Metoda delitto perfetto

Postępy analizy funkcjonalnej Od lat 90. projekt badania fenotypów delecji genowych Wiele innych projektów na skalę genomu Najbardziej zaawansowana analiza funkcjonalna na skalę genomową wśród eukariontów

Postępy analizy funkcjonalnej Mimo to (5 III 2014 www.yeastgenome.org): 1929 genów nieznana funkcja molekularna (np. wyłącznie dane genetyczne) 1130 geny nieznany proces biologiczny 730 genów niescharakteryzowane

Projekty na skalę genomową Delecje (analiza fenotypowa) Nadekspresja białek Zmiany ekspresji genów (mikromacierze, fuzje reporterowe) Lokalizacja białek w komórce (fuzje z GFP) Interakcje białek (system dwuhybrydowy) Interakcje genetyczne (np. syntetyczne letalne)

Problem analiz wysokoprzepustowych Geny pet (niezbędne do oddychania) Merz & Westermann, 2009

Analizy wysokoprzepustowe roboty laboratoryjne Singer Instruments, UK

Analizy wysokoprzepustowe roboty laboratoryjne