(62) Numer zgłoszenia, z którego nastąpiło wydzielenie:

Podobne dokumenty
PL B1. Sposób amplifikacji DNA w łańcuchowej reakcji polimerazy za pomocą starterów specyficznych dla genu receptora 2-adrenergicznego

PL B1. UNIWERSYTET PRZYRODNICZY W LUBLINIE, Lublin, PL BUP 26/11

Zestaw do wykrywania Babesia spp. i Theileria spp. w kleszczach, krwi i hodowlach komórkowych

PL B1. UNIWERSYTET PRZYRODNICZY W LUBLINIE, Lublin, PL BUP 04/14. SYLWIA OKOŃ, Dąbrowica, PL KRZYSZTOF KOWALCZYK, Motycz, PL

Powodzenie reakcji PCR wymaga właściwego doboru szeregu parametrów:

Zestaw do wykrywania Anaplasma phagocytophilum w kleszczach, krwi i hodowlach komórkowych

Zestaw do wykrywania Chlamydia trachomatis w moczu lub w kulturach komórkowych

TaqNovaHS. Polimeraza DNA RP902A, RP905A, RP910A, RP925A RP902, RP905, RP910, RP925

Ampli-LAMP Babesia canis

Prowadzący: dr Lidia Boss znacznik fluorescencyjny (np. SYBR Green II)

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

TaqNova-RED. Polimeraza DNA RP20R, RP100R

AmpliTest Babesia spp. (PCR)

Zastosowanie metody RAPD do różnicowania szczepów bakteryjnych

ĆWICZENIE 1 i 2 Modyfikacja geu wołowej beta-laktoglobuliny przy użyciu metody Overlap Extension PCR (wydłużania nakładających się odcinków)

Biologia medyczna, materiały dla studentów

PCR - ang. polymerase chain reaction

Genetyczne modyfikowanie organizmów Kierunek OCHRONA ŚRODOWISKA, II rok semestr letni 2015/16

Badanie próbek żywności na obecność Genetycznie Zmodyfikowanych Organizmów. Rozdział 9

Ćwiczenie 3 Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6 metodą PCR w czasie rzeczywistym (rtpcr) przy użyciu sond typu TaqMan

AmpliTest GMO screening-nos (Real Time PCR)

AmpliTest Salmonella spp. (Real Time PCR)

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 12/17

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Genetyka, materiały dla studentów Pielęgniarstwa

Metody badania ekspresji genów

Ćwiczenie 3. Amplifikacja genu ccr5 Homo sapiens wykrywanie delecji Δ32pz warunkującej oporność na wirusa HIV

AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR)

Ćwiczenie 2. Identyfikacja płci z wykorzystaniem genu amelogeniny (AMGXY)

Farmakogenetyka Biotechnologia Medyczna I o

Autor: dr Mirosława Staniaszek

PCR - ang. polymerase chain reaction

Układ stabilizacji natężenia prądu termoemisji elektronowej i napięcia przyspieszającego elektrony zwłaszcza dla wysokich energii elektronów

PCR - ang. polymerase chain reaction

Inżynieria Genetyczna ćw. 3

PCR łańcuchowa reakcja polimerazy

Załącznik nr 1A do siwz Część I - Zestaw testowy do szybkiej identyfikacji Escherichia coli

PL B1. R&D PROJECT SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Łódź, PL BUP 26/12

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 15/17

Klonowanie molekularne Kurs doskonalący. Zakład Geriatrii i Gerontologii CMKP

SCENARIUSZ LEKCJI BIOLOGII Z WYKORZYSTANIEM FILMU PCR sposób na DNA.

WYBRANE RODZAJE REAKCJI PCR. RAPD PCR Nested PCR Multipleks PCR Allelo-specyficzny PCR Real Time PCR

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 23/12

Zestaw dydaktyczny. genotypowanie szczepów 5taphy/ococcus aureus metodą PCR-RFLP

Klub Młodego Wynalazcy - Laboratoria i wyposażenie. Pracownia genetyki

PL B1. POLIGRAFIA JANUSZ NOWAK SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Poznań, PL BUP 11/13. MIKOŁAJ NOWAK, Lusowo, PL

Ampli-LAMP Goose Parvovirus

PL B1. Uchwyt do mocowania próbek do dwuosiowego rozciągania na maszynach jednoosiowych. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 14/12

WZORU UŻYTKOWEGO PL Y1 F24J 2/52 ( ) Ścisłowicz Franciszek, Nowy Targ, PL BUP 22/09. Franciszek Ścisłowicz, Nowy Targ, PL

PCR bez izolacji testujemy Direct PCR Kits od ThermoFisher Scientific

Metody: PCR, MLPA, Sekwencjonowanie, PCR-RLFP, PCR-Multiplex, PCR-ASO

Transformacja pośrednia składa się z trzech etapów:

WYKRYWANIE OBECNOŚCI BAKTERII Z RODZAJU LISTERIA W ŻYWNOŚCI

Hybrydyzacja kwasów nukleinowych

PL B1. Przekształtnik rezonansowy DC-DC o przełączanych kondensatorach o podwyższonej sprawności

PL B1. GRZENIK ROMUALD, Rybnik, PL MOŁOŃ ZYGMUNT, Gliwice, PL BUP 17/14. ROMUALD GRZENIK, Rybnik, PL ZYGMUNT MOŁOŃ, Gliwice, PL

PL B1. Sposób epoksydacji (1Z,5E,9E)-1,5,9-cyklododekatrienu do 1,2-epoksy-(5Z,9E)-5,9-cyklododekadienu

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11)

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 18/11. JANUSZ URBAŃSKI, Lublin, PL WUP 10/14. rzecz. pat.

PL B1. Sposób badania przyczepności materiałów do podłoża i układ do badania przyczepności materiałów do podłoża

PL B1. Sposób wykrywania i różnicowania chorób należących do grupy hemoglobinopatii, zwłaszcza talasemii

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 08/15

PL B1. WIJAS PAWEŁ, Kielce, PL BUP 26/06. PAWEŁ WIJAS, Kielce, PL WUP 09/12. rzecz. pat. Wit Flis RZECZPOSPOLITA POLSKA

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 13/17

Platforma Genie II. innowacyjne narzędzie do identyfikacji materiału genetycznego patogenów techniką LAMP Loop-mediated Isothermal AMPlification

PL B1. POLITECHNIKA WROCŁAWSKA, Wrocław, PL BUP 06/14

Anna Litwiniec 1, Beata Choińska 1, Aleksander Łukanowski 2, Żaneta Świtalska 1, Maria Gośka 1

PL B1. Gąsienica dwurzędowa zwłaszcza do czołgu w wersji bezstopniowej, dwustopniowej i trzystopniowej BUP 16/05

PL B1. POLITECHNIKA WROCŁAWSKA, Wrocław, PL BUP 02/14. PIOTR OSIŃSKI, Wrocław, PL WUP 10/16. rzecz. pat.

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 12/15

Scenariusz lekcji z biologii w szkole ponadgimnazjalnej

Wprowadzenie do genetyki sądowej. Materiały biologiczne. Materiały biologiczne: prawidłowe zabezpieczanie śladów

PL B1. PRZEDSIĘBIORSTWO HAK SPÓŁKA Z OGRANICZONĄ ODPOWIEDZIALNOŚCIĄ, Wrocław, PL BUP 20/14. JACEK RADOMSKI, Wrocław, PL

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 19/15

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 15/15

GRADIENT TEMPERATUR TOUCH DOWN PCR. Standardowy PCR RAPD- PCR. RealTime- PCR. Nested- PCR. Digital- PCR.

Ampli-LAMP Salmonella species

PL B1. Urządzenie do badania nieciągłości struktury detali ferromagnetycznych na małej przestrzeni badawczej. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL

PL B3. BORCZYK MONIKA, Bielsko-Biała, PL BUP 13/09. MONIKA BORCZYK, Bielsko-Biała, PL WUP 12/13 RZECZPOSPOLITA POLSKA

PL B1. UNIWERSYTET EKONOMICZNY W POZNANIU, Poznań, PL BUP 21/09. DARIA WIECZOREK, Poznań, PL RYSZARD ZIELIŃSKI, Poznań, PL

PL B1. INSTYTUT TECHNIKI I APARATURY MEDYCZNEJ ITAM, Zabrze, PL BUP 09/13

INSTYTUT TRANSPORTU SAMOCHODOWEGO,

AmpliTest Panel odkleszczowy (Real Time PCR)

PL B1. ŻBIKOWSKI JERZY, Zielona Góra, PL BUP 03/06. JERZY ŻBIKOWSKI, Zielona Góra, PL WUP 09/11 RZECZPOSPOLITA POLSKA

PL B1. PĘKACKI PAWEŁ, Skarżysko-Kamienna, PL BUP 02/06. PAWEŁ PĘKACKI, Skarżysko-Kamienna, PL

PL B1. Układ do przetwarzania interwału czasu na słowo cyfrowe metodą kompensacji wagowej

PL B1. WOJSKOWY INSTYTUT MEDYCYNY LOTNICZEJ, Warszawa, PL BUP 23/13

Projektowanie reakcji multiplex- PCR

PL B1. Sposób i układ kontroli napięć na szeregowo połączonych kondensatorach lub akumulatorach

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 01/14. TOMASZ KLEPKA, Lublin, PL JAROSŁAW LATALSKI, Lublin, PL

PCR. Aleksandra Sałagacka

PL B1. Sposób regulacji prądu silnika asynchronicznego w układzie bez czujnika prędkości obrotowej. POLITECHNIKA GDAŃSKA, Gdańsk, PL

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 01/12. VIKTOR LOZBIN, Lublin, PL PIOTR BYLICKI, Świdnik, PL

PL B1. AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA IM. STANISŁAWA STASZICA W KRAKOWIE, Kraków, PL BUP 26/16

PL B1. Kwasy α-hydroksymetylofosfonowe pochodne 2-azanorbornanu i sposób ich wytwarzania. POLITECHNIKA WROCŁAWSKA, Wrocław, PL

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11)

PROJEKT WSPÓŁFINANSOWANY PRZEZ UNIĘ EUROPEJSKĄ Z EUROPEJSKIEGO FUNDUSZU ROZWOJU REGIONALNEGO 1 z 7

(13) B1 F24F 13/20. VITROSERVICE CLIMA Sp. z o.o., Kosakowo, PL. Tadeusz Siek, Kosakowo, PL. Prościński Jan

PL B1. POLITECHNIKA LUBELSKA, Lublin, PL BUP 16/13. JAROSŁAW BARTNICKI, Lublin, PL JANUSZ TOMCZAK, Lublin, PL

Transkrypt:

PL 227091 B1 RZECZPOSPOLITA POLSKA Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) 227091 (21) Numer zgłoszenia: 419590 (22) Data zgłoszenia: 20.01.2014 (62) Numer zgłoszenia, z którego nastąpiło wydzielenie: 406879 (13) B1 (51) Int.Cl. C12Q 1/04 (2006.01) C12Q 1/68 (2006.01) C12R 1/01 (2006.01) C12N 15/11 (2006.01) (54) Zestaw starterów do identyfikacji bakterii Legionella micdadei oraz Legionella bozemanae (43) Zgłoszenie ogłoszono: 03.08.2015 BUP 16/15 (73) Uprawniony z patentu: UNIWERSYTET MARII CURIE-SKŁODOWSKIEJ, Lublin, PL (45) O udzieleniu patentu ogłoszono: 31.10.2017 WUP 10/17 (72) Twórca(y) wynalazku: MONIKA JANCZAREK, Lublin, PL MARTA PALUSIŃSKA-SZYSZ, Lublin, PL

2 PL 227 091 B1 Opis wynalazku Przedmiotem wynalazku jest zestaw 2 starterów opracowanych na podstawie sekwencji genów pcs Legionella, służących do identyfikacji bakterii Legionella micdadei i Legionella bozemanae oraz sposób zastosowania tych starterów w łańcuchowej reakcji polimerazy PCR. Bakterie należące do rodziny Legionellaceae to bardzo zróżnicowana grupa Gram-ujemnych bakterii, które w środowisku naturalnym egzystują wewnątrz niektórych gatunków pierwotniaków, a po przedostaniu się do sztucznych systemów dystrybucji wody, wywołują atypowe zapalenie płuc zwane chorobą Legionistów legionellozę oraz infekcję grypopodobną gorączkę Pontiac. Duże zagrożenie stanowi obecność bakterii Legionella w instalacjach wodnych występujących w ośrodkach takich jak: szpitale, sanatoria, stacje dializ, gabinety stomatologiczne, baseny oraz centra rekreacyjne. Siedliskiem tych bakterii mogą być również urządzenia wytwarzające rozproszone krople wody, np. systemy klimatyzacyjne, wieże chłodnicze, fontanny, komory zraszania. Jak podają Gomez-Valero i wsp., Infection, Genetics and Evolution 2009, Nr 9 czy też Lu i wsp., Appl. Microbiol. Biotechnol. 2011, Nr 92, dotychczas wykryto 56 gatunków i 79 serotypów bakterii należących do rodziny Legionellaceae, odpowiedzialnych za największą liczbę zachorowań, na tzw. chorobę Legionistów zwłaszcza w Europie i Stanach Zjednoczonych. Szacuje się, że liczba wykrywanych przypadków stanowi jedynie do 10% wszystkich zachorowań. Stan ten spowodowany jest trudnościami w ustalaniu przyczyn zapalenia płuc wywoływanych przez bakterie Legionella wskutek braku szybkich, wiarygodnych i tanich testów diagnostycznych. Spośród bakterii z rodziny Legionellaceae, bakteriami wywołującymi chorobę Legionistów są L. pneumophila, L. longbeachae, L. bozemanae, L. micdadei, L. dumoffii, L. gormanii, L. drancourtii i L. anisa. Znane są sposoby identyfikacji bakterii z rodziny Legionellaceae, jednakże dotyczą one głównie najbardziej patogennego gatunku L. pneumophila i dodatkowo, oparte są na czasochłonnych metodach hodowli bakterii na podłożach mikrobiologicznych, bądź też skomplikowanych metodach z wykorzystaniem bardzo kosztownej i złożonej aparatury. Jak opisano w publikacjach Anonymous, 1998, AS/NZS3896:1998, Standards Australia, North Sydney, NSW, Australia; Anonymous, 1998, ISO 11731, International Organisation for Standardisation, Geneva, Switzerland, wywoływaną przez Legionella infekcję, potwierdza się poprzez hodowle bakterii na podłożach mikrobiologicznych. Standardowe metody hodowli bakterii Legionella na sztucznych podłożach - AS/NZS3896 - ISO 11731, wymagają długiego czasu inkubacji od 7 do 14 dni. Metody te bywają też nieskuteczne w przypadku, gdy materiał biologiczny zawiera nie hodowalne szczepy bakterii. Z kolei, znana z publikacji Cherry WB. i wsp., J. Clin. Microbiol., Nr 8, 1978, detekcja Legionella przy użyciu przeciwciał poliklonalnych połączonych z fluoresceiną, pozwalała na identyfikację jedynie szczepów Philadelphia należących do gatunku L. pneumophila. Opisany przez Edelstein i Edelstein, J. Clin. Microbiol., Nr 27, 1989, sposób identyfikacji bakterii z wykorzystaniem odczynnika Meriflour-Legionella zawierającego przeciwciała poliklonalne skonjugowane z barwnikiem fluorescencyjnym, umożliwia identyfikację większej liczby gatunków Legionella, jednakże nie pozwala na rozróżnianie bakterii należących do poszczególnych gatunków, a ponadto, identyfikacja Legionella z użyciem przeciwciał poliklonalnych daje reakcje krzyżowe z innymi bakteriami, np. Pseudomonas, co może skutkować uzyskaniem fałszywie pozytywnych wyników. Inne sposoby identyfikacji Legionella za pomocą reakcji łańcuchowej polimerazy DNA (PCR) i starterów specyficznych do wybranych genów, znane z publikacji Yanez i wsp., Appl. Environ. Microbiol., Nr 7, 2005; Joly i wsp., Appl. Environ. Microbiol., Nr 4, 2006; Stolhaug i Bergh, Appl. Environ. Microbiol., Nr 9, 2006; Yaradou i wsp., Appl. Environ. Microbiol., Nr 5, 2007; Behets i wsp., J. Microbiol. Meth., Nr 68, 2007; Chang i wsp., Appl. Environ. Microbiol., Nr 1, 2009, czy też Merault i wsp., Appl. Environ. Microbiol., Nr 5, 2011, skoncentrowane są głównie na identyfikacji jednego gatunku L. pneumophila i ilościowym oznaczaniu tych bakterii w próbkach biologicznych za pomocą Real-Time PCR oraz starterów specyficznych do genów: dota, 16S rrna, mip i rmla-csra. Wymienione sposoby, wykorzystują skomplikowane procedury z zastosowaniem drogich odczynników i starterów wyznakowanych barwnikami fluorescencyjnymi oraz kosztowną aparaturę pomiarową, co istotnie ogranicza zastosowanie tych metod tylko w laboratoriach posiadających stosowny sprzęt analityczny.

PL 227 091 B1 3 Ponadto, jak wykazali Fittipaldi i wsp., Water SA, Nr 4, 2010, identyfikacja bakterii Legionella w technice Real-Time PCR z użyciem odczynnika SYBR Green, stwarza duże ryzyko pojawienia się fałszywie pozytywnych wyników, gdyż odczynnik ten wiąże się niespecyficznie do wszystkich dwuniciowych cząsteczek DNA, niezależnie od ich sekwencji nukleotydowej. Według Giglio i wsp., Appl. Envirion. Microbiol., Nr 12, 2005, podobne ryzyko stwarza użycie barwnika SYTO9 interkalującego do dwuniciowego DNA w metodzie identyfikacji Legionella z wykorzystaniem starterów LegF i LegR specyficznych do regionu 23S-5S rrna. Przedstawione metody identyfikacji Legionella z użyciem barwników fluorescencyjnych wymagają przeprowadzenia dodatkowych, kosztownych i czasochłonnych analiz obejmujących amplifikację i sekwencjonowanie otrzymanych produktów PCR, na co wskazują niżej wymienione publikacje: Kao i wsp., Environ. Sci. Pollut. Res. Int., Nr 9, 2013, a także Cloud i wsp., J. Clin. Microbiol. Nr 5, 2000; Stolhaug i Bergh, Appl. Environ. Microbiol., Nr 9, 2006; Svarrer i Uldum, Clin. Microbiol. Infect., Nr 18, 2011; Haroon i wsp., J. Infect. Chemother., Nr 18, 2012. Dodatkowe analizy uzyskanych produktów PCR, PCR-RFLP oraz hybrydyzacja dla identyfikacji Legionella opisują też Ko i wsp., J. Microbiol. Meth. 2003, Nr 54, 2003; Zhan i wsp., J. Clin. Microbiol., Nr 2, 2010, Joly i wsp., Appl. Environ. Microbiol., Nr 4, 2006; Su i wsp. J. Clin. Microbiol., Nr 5, 2009, a także opisy patentowe US 5491225 i 5614338. Inne metody do identyfikacji Legionella, znane z publikacji Lu i wsp., Appl. Microbiol. Biotechnol., Nr 92, 2011, wykorzystujące starter LS-LAMP dla genu 16S rrna do identyfikacji Legionella, są skomplikowane i nie nadają się do powszechnego zastosowania w laboratoriach diagnostycznych. Używane w sposobach identyfikacji Legionella, ujawnione w opisach patentowych US 5491225 i 5614338, startery specyficzne dla genu 5S rrna i dla mip, a także pięć par starterów specyficznych do sekwencji 16S rrna i gyrb, opracowanych przez Zhou i wsp., Appl. Microbiol. Biotechnol., Nr 91, 2011, są mało selektywne, umożliwiają rozróżnienie tylko niektórych bakterii należących do gatunków Legionella, a ponadto, wymagają potwierdzenia uzyskanych wyników za pomocą dodatkowych analiz molekularnych, znacząco wydłużających czas i podnoszących koszty diagnostyczne. Podobnie sposoby identyfikacji Legionella z użyciem reakcji Real-Time PCR opierające się na jednej parze starterów i odczynniku SYBR Green, niosą ryzyko uzyskania fałszywie pozytywnych wyników wskutek nieswoistego wiązania się tego barwnika do fragmentów dwuniciowego DNA niezależnie od ich sekwencji nukleotydowej. Znacząca większość znanych molekularnych metod diagnostyki Legionella dotyczy identyfikacji tylko jednego, najbardziej wirulentnego gatunku L. pneumophila. W oparciu o sekwencje nukleotydowe genów pcs i pmta L. pneumophila serotyp 3 zidentyfikowanych i opisanych w publikacjach Palusińska-Szysz i wsp., Materiały Zjazdowe Polskiego Towarzystwa Genetycznego, Lublin 2010; Janczarek i wsp., Materiały Zjazdowe Proceeding of XI Conference DIAGMOL 2010, Palusińska-Szysz i wsp., Microbiol Res., Nr 2, 2011, opracowane zostały startery do otrzymania sond do hybrydyzacji, 2 startery specyficzne do pcs: pcsf (5 -CTCTAGGATCCGTAATGAATCCAATAAA-3 ) i pcsr (5 -CATAAATTGGATCCAAACTCAATCTTTATTAT-3 ) oraz 2 startery specyficzne do pmta: pmta-f (5 -GTTTATAATATGAATTCTTCTTTT-3 ) i pmta-r (5 -TGTAATAATTTCCAATAGCCAAAA-3 ) bakterii L. pneumophila serotyp 3, a także startery pcs-df1 (5 -TACTGCMAGYGCWGCMTGTATTG-3 ) i pcs-dr3 (5 -GGATAATAAGTHCKRTARAARCTTA-3 ) oraz pmta-df2 (5 -GTTTATAATATTTATKCTTCTTTYTAYGA-3 ) i pmta-dr3 (5 -TGYAATAATTTCCAATAGCCAAA-3 ), służące do amplifikacji i sekwencjonowania genów pcs i pmta między innymi gatunku L. bozemanae. Wymienione startery służą wprawdzie do identyfikacji genu pcs w genomie bakterii z rodzaju Legionella, ale wykazują niską specyficzność w identyfikacji gatunku L. bozemanae. Celem wynalazku było opracowanie starterów oraz sposobu identyfikacji bakterii z gatunku L. bozemanae i L. micdadei, odpowiedzialnych za bardzo dużą liczbę zachorowań na legionellozę, służących do sporządzania szybkich, wiarygodnych i tanich testów diagnostycznych. Istotą wynalazku jest zestaw kolejno ponumerowanych 2 starterów do identyfikacji bakterii L. micdadei i L. bozemanae z rodziny Legionellaceae, przedstawionych w wykazie sekwencji.

4 PL 227 091 B1 Zestaw starterów do identyfikacji bakterii L. micdadei i L. bozemanae według wynalazku charakteryzuje się tym, że startery zawierają fragmenty genu pcs o określonej sekwencji i długości łańcucha nukleotydowego, posiadają różny stopień konserwatywności i podobne temperatury topnienia, dzięki czemu pozwalają na identyfikację wymienionych gatunków bakterii, w danym środowisku reakcji. Istotą wynalazku jest również sposób identyfikacji bakterii L. micdadei i L. bozemanae w łańcuchowej reakcji polimerazy, z użyciem pary starterów według wynalazku. Sposób identyfikacji bakterii Legionella micdadei i Legionella bozemanae, według wynalazku charakteryzuje się tym, że łańcuchowa reakcja polimerazy w obecności genomowego DNA wyizolowanego z próbki środowiskowej, przebiega z udziałem pary starterów stanowiących istotę wynalazku, użytych w tej samej mieszaninie reakcyjnej, o sekwencjach komplementarnych do określonych regionów genu pcs. Sposób identyfikacji Legionella micdadei i Legionella bozemanae, według wynalazku, został przedstawiony w poniższym przykładzie wykonania. P r z y k ł a d Z wyhodowanego materiału biologicznego zawierającego 8 gatunków bakterii Legionella znanymi metodami, wyizolowano 8 próbek niescharakteryzowanego DNA genomowego i każdą próbkę zawieszono w 50 l wody dejonizowanej. Tak przygotowane matryce użyto do przeprowadzenia reakcji PCR z udziałem 0,5 U polimerazy TaqI z kofaktorem MgCl 2 o stężeniu 1,5 mm, 2 l buforu i 0,2 mm mieszaniny deoksynukleotydów datp, dttp, dctp i dgtp (producent: FERMENTAS UAB, Litwa). Dla każdej z próbek DNA przeprowadzono reakcję PCR z użyciem układu starterów 1 i 2 (każdy starter o stężeniu 10 M użyto w ilości 2 l). Stosowano następujące parametry reakcji PCR: wstępna denaturacja 4 min w temp. 94 C i 30 cykli: denaturacja 1 min w temp. 94 C, przyłączanie starterów przez 40 s, w temp. 36 C, wydłużanie starterów w ciągu 60 s w temp. 72 C i końcowe wydłużanie starterów przez 4 min w temp. 72 C. Produkty PCR poddano rozdziałowi elektroforetycznemu w 1,3% żelu agarozowym, ze standardowym buforem boranowym do elektroforezy (1xTBE) w czasie 40 min. i przy napięciu prądu 7V/cm, z użyciem markera M wielkości fragmentów DNA MassRuler Low Range DNA Ladder (producent: FERMENTAS UAB, Litwa). Żele wybarwiono standardowymi technikami i oglądano pod lampą UV. Zdjęcie przedstawione na rysunku, jako fig. 1, obrazuje profile uzyskane z użyciem starterów 1 i 2, odpowiadające produktom PCR: o wielkości 890 pz specyficznej dla L. bozemanae (studz. 2) oraz o wielkości 440 pz, specyficznej dla L. micdadei (studz.5). Wykaz sekwencji Starter 1 Starter 2 ATGAAYYYAAKMAARYYKMMMTT TGRCAAAATTGATARGCRGARGTAA Zastrzeżenia patentowe 1. Zestaw starterów do identyfikacji i różnicowania bakterii Legionella micdadei oraz Legionella bozemanae, przedstawionych w wykazie sekwencji. 2. Zestaw starterów według zastrz. 1, znamienny tym, że startery zawierają fragmenty genu pcs bakterii Legionella micdadei oraz Legionella bozemanae z rodziny Legionellaceae o określonej sekwencji i długości łańcucha nukleotydowego oraz charakteryzują się różnym stopniem konserwatywności i podobnymi temperaturami topnienia. 3. Sposób identyfikacji i różnicowania bakterii Legionella micdadei oraz Legionella bozemanae przy pomocy łańcuchowej reakcji polimerazy genomowego DNA, wyizolowanego z materiału próbki środowiskowej, znamienny tym, że przebiega z udziałem starterów jak określono w zastrz.1 i 2. 4. Sposób według zastrz. 3, znamienny tym, że stosuje się układ dwóch starterów o sekwencjach komplementarnych do różnych regionów genu pcs.

PL 227 091 B1 5 Rysunek

6 PL 227 091 B1 Departament Wydawnictw UPRP Cena 2,46 zł (w tym 23% VAT)