Program ćwiczeń z Mikrobiologii i Diagnostyki Mikrobiologicznej dla studentów III roku Oddziału Analityki Medycznej, rok akademicki 2018/2019

Podobne dokumenty
Program ćwiczeń z mikrobiologii klinicznej dla studentów III roku Oddziału Analityki Medycznej, rok akademicki 2015/2016

PROGRAM ZAJĘĆ Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU FARMACEUTYCZNEGO W ROKU AKADEMICKIM 2015/2016 SEMESTR LETNI

PROGRAM ZAJĘĆ Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU FARMACEUTYCZNEGO W ROKU AKADEMICKIM 2018/2019 SEMESTR LETNI

- podłoża transportowo wzrostowe..

Przedmiot : Mikrobiologia

Ćwiczenie 1. Mikrobiologia ogólna - Pożywki bakteryjne. Techniki posiewów. Uzyskiwanie czystej hodowli.

CENNIK BADANIA Z ZAKRESU DIAGNOSTYKI MIKROBIOLOGICZNEJ

Protokoły do zajęć praktycznych z mikrobiologii ogólnej i żywności dla studentów kierunku: Dietetyka

OGÓLNY PLAN ĆWICZEŃ I SEMINARIÓW Z MIKROBIOLOGII OGÓLNEJ dla studentów STOMATOLOGII w roku akademickim semestr zimowy Seminarium 1.

Karta modułu/przedmiotu

OGÓLNY PLAN ĆWICZEŃ I SEMINARIÓW Z MIKROBIOLOGII OGÓLNEJ dla studentów STOMATOLOGII w roku akademickim semestr zimowy

Podstawy różnicowania bakterii i grzybów. Imię i nazwisko:

Ćwiczenie 1 Morfologia I fizjologia bakterii

Mikrobiologia - Bakteriologia

Ćw.nr1 i 2 Morfologia i fizjologia drobnoustrojów.

Program ćwiczeń z mikrobiologii dla studentów III roku Oddziału Analityki Medycznej, rok akademicki 2014/2015 SEMESTR LETNI

PROGRAM ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2014/2015 semestr zimowy

PROGRAM ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2015/2016 semestr zimowy

Karta modułu/przedmiotu

PROGRAM ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2016/2017

Mikrobiologia - Bakteriologia

Program ćwiczeń z mikrobiologii dla studentów III roku Oddziału Analityki Medycznej, rok akademicki 2018/2019 SEMESTR LETNI

HARMONOGRAM ZAJĘĆ dla studentów Uniwersyteckiego Centrum Medycyny Weterynaryjnej UJ-UR Mikrobiologia weterynaryjna II rok 2016/2017 semestr letni

SZCZEGÓŁOWY OPIS PRZEDMIOTU ZAMÓWIENIA

HARMONOGRAM ZAJĘĆ dla studentów Uniwersyteckiego Centrum Medycyny Weterynaryjnej UJ-UR Mikrobiologia weterynaryjna II rok 2017/2018 semestr letni

MIKROBIOLOGIA BIOTECHNOLOGIA MEDYCZNA

Typ badania laboratoryjnego, które dało dodatni wynik. na obecność laseczki wąglika: - badania

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 448

Leki przeciwbakteryjne i przeciwgrzybicze

Status oznaczenia / pomiaru Bakteriologiczne badanie krwi. Metoda badawcza

Karta modułu/przedmiotu

Harmonogram zajęć z Mikrobiologii z parazytologią i Immunologii dla studentów II roku kierunku lekarskiego WL 2018/2019 GRUPA 5

Sylabus. Opis przedmiotu kształcenia. Nazwa modułu/przedmiotu Mikrobiologia Grupa szczegółowych efektów kształcenia Kod grupy C

DIAGNOSTYKA BEZPOŚREDNIA. Joanna Kądzielska Katedra Mikrobiologii Lekarskiej Warszawski Uniwersytet Medyczny

Rok akademicki 2016/2017 MIKROBIOLOGIA. II rok medycyna. Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej

WYTYCZNE W-0018_001 WYTYCZNE WYDAWANIA RAPORTÓW Z BADAŃ MIKROBIOLOGICZNYCH. Data wprowadzenia:

Interpretacja wg EUCAST S-wrażliwy I-średniowrażliwy R - oporny

Rok akademicki 2017/2018 MIKROBIOLOGIA. II rok medycyna Wydziału Lekarskiego I. Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej

HARMONOGRAM ZAJĘĆ dla studentów Uniwersyteckiego Centrum Medycyny Weterynaryjnej UJ-UR Mikrobiologia weterynaryjna II rok 2013/2014 semestr letni

CENNIK - DIAGNOSTYKI MIKROBIOLOGICZNEJ

Rok akademicki 2017/2018 MIKROBIOLOGIA. II rok medycyna Wydziału Lekarskiego II. Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej

Ćwiczenie 1. Ekosystem jamy ustnej

Ćwiczenie 1. Ekosystem jamy ustnej

Barwienie złożone - metoda Grama

MIKROBIOLOGIA. Katedra i Zakład Mikrobiologii Lekarskiej Uniwersytet Medyczny im. Karola Marcinkowskiego w Poznaniu

WNOZ - DIETETYKA PODSTAWOWE METODY STOSOWANE W BAKTERIOLOGII METODY MIKROSKOPOWE MORFOLOGIA BAKTERII BAKTERIE GRAM-UJEMNE

1. Demonstracja preparatów bakteryjnych barwionych metodą negatywną ukazujących kształty komórek bakteryjnych.

Karta modułu/przedmiotu

Sylabus. Opis przedmiotu kształcenia MIKROBIOLOGIA i. efektów kształcenia MIKROBIOLOGICZNA. Ćwiczenia laboratoryjne (CL) Ćwiczenia w warunkach

Badania w kierunku wirusów oddechowych 6. Badania w kierunku wirusów RS

Ćwiczenie 1 Podstawy różnicowania bakterii. 1. Preparat przyżyciowy (mokry, tzw. świeży) w kropli wiszącej. Technika wykonania preparatu:

Sylabus Częśd A - Opis przedmiotu kształcenia. kierunkowy X podstawowy polski X angielski inny

SHL.org.pl SHL.org.pl

SYLABUS MIKROBIOLOGIA. 60, w tym: 20 - wykłady, 40 ćwiczenia OPIS KIERUNKOWYCH EFEKTÓW KSZTAŁCENIA

1. Wykonanie preparatów bezpośrednich i ich ocena: 1a. Wykonaj własny preparat bezpośredni ze śliny Zinterpretuj i podkreśl to co widzisz:

Ćwiczenie 1 Podstawy różnicowania bakterii. 1. Preparat przyżyciowy (mokry, tzw. świeży) w kropli wiszącej. Technika wykonania preparatu:

ZASADY BADAŃ BAKTERIOLOGICZNYCH

Dostawy

Mikrobiologia jamy ustnej treść ćwiczeń

X. Diagnostyka mikrobiologiczna bakterii chorobotwórczych z rodzaju: Corynebacterium, Mycobacterium, Borrelia, Treponema, Neisseria

S Y LA BUS MODUŁU. In f o r m acje o gólne. Mikrobiologia

Część A - Opis przedmiotu kształcenia. kierunkowy podstawowyx polski X angielski inny

KONSPEKTY DO ĆWICZEN Z MIKROBIOLOGII LEKARSKIEJ WYDZIAŁ LEKARSKO-DENTYSTYCZNY II ROK 2019/2020 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Sylabus. Opis przedmiotu kształcenia. Nazwa modułu/przedmiotu MIKROBIOLOGIA/Microbiology Grupa szczegółowych efektów kształcenia

ZAŁĄCZNIK DO PRZEGLĄDU ZLECEŃ

Mikrobiologia jamy ustnej preparaty mikroskopowe i pożywki

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W LABORATORIUM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE Nazwa oznaczenia/ Procedura Badawcza PB/EP/PS/03

ZAŁĄCZNIK Nr 1. Biologiczny czynnik chorobotwórczy podlegający zgłoszeniu

Sylabus Część A - Opis przedmiotu kształcenia Grupa szczegółowych efektów kształcenia Kod grupy A. Nazwa

SYLABUS. Część A - Opis przedmiotu kształcenia. II Wydział Lekarski z Oddziałem Anglojęzycznym Kierunek lekarski

I. Wykaz drobnoustrojów alarmowych w poszczególnych jednostkach organizacyjnych podmiotów leczniczych.

- na szkiełko nakrywkowe nałóż szkiełko podstawowe z wgłębieniem, tak aby kropla znalazła się we wgłębieniu

FORMULARZ ASORTYMENTOWO CENOWY załącznik nr 7

S Y LA BUS MODUŁU. In f o r m acje o gólne. Mikrobiologia

Nazwa i typ aparatu:.. Lp. Opis parametru Kryterium Parametr wymagany

11a. Pałeczki Gram-dodatnie tlenowe Część praktyczna: Wejściówka 11b. Bakterie beztlenowe Część praktyczna: Wejściówka

Załącznik nr 1 do rozporządzenia Ministra Zdrowia z dnia 25 marca 2014 r.

Pracownia w Kaliszu Kalisz ul. Warszawska 63a tel: fax: zhw.kalisz@wiw.poznan.pl

MIKROBIOLOGIA DLA STUDENTÓW III ROKU WYDZIAŁU LEKARSKIEGO Z ODDZIAŁEM NAUCZANIA W JĘZYKU ANGIELSKIM - PROGRAM 2015/2016

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W LABORATORIUM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE Nazwa oznaczenia/ IV z dnia immunoenzymatyczną ELISA -

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W ODDZIALE LABORATORYJNYM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE Nazwa oznaczenia/

Arkusz1. Nazwa artykułu opakowanie ilość opak. 1 Agar Columbia + 5% krew barania 20 płytek* 205

SYLABUS. rok akademicki 2017/2018

L.p. Nazwa badania. Czas oczekiwania na wynik. Pobranie materiału do badania BADANIA MIKROBIOLOGICZNE - POSIEWY

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W LABORATORIUM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE Nazwa oznaczenia/

PROGRAM NAUCZANIA PRZEDMIOTU OBOWIĄZKOWEGO NA WYDZIALE LEKARSKIM I ROK AKADEMICKI 2017/2018 PRZEWODNIK DYDAKTYCZNY dla STUDENTÓW II ROKU STUDIÓW

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W LABORATORIUM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE Nazwa oznaczenia/ z dnia immunoenzymatyczną ELISA -

Zagadnienia egzaminacyjne z przedmiotu Diagnostyka mikrobiologiczna dla studentów III roku kierunku Analityka medyczna

SYLABUS. rok akademicki 2015/2016

Harmonogram zajęć z Mikrobiologii z parazytologią i Immunologii. dla studentów II roku kierunku lekarskiego Wydziału Lekarskiego 2016/2017

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne. Diagnostyka mikrobiologiczna. Nie dotyczy. 13 Wykłady: 30 h, ćwiczenia 120h;

Formularz cen jednostkowych

SYLABUS X , w tym: 20 - wykłady, 40 ćwiczenia OPIS KIERUNKOWYCH EFEKTÓW KSZTAŁCENIA

Załącznik do rozporządzenia Ministra Zdrowia z dnia 25 marca 2014 r. (poz. 459)

I. PROGRAM SZKOLENIA SPECJALIZACYJNEGO

I. PROGRAM SZKOLENIA SPECJALIZACYJNEGO

S YL AB US MODUŁ U. I nforma cje ogólne. Mikrobiologia i Biologia

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 924

Program specjalizacji

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1029 wydany przez POLSKIE CENTRUM AKREDYTACJI Warszawa ul. Szczotkarska 42

Transkrypt:

Program ćwiczeń z Mikrobiologii i Diagnostyki Mikrobiologicznej dla studentów III roku Oddziału Analityki Medycznej, rok akademicki 2018/2019 SEMESTR ZIMOWY Wykłady (14 godz.): Ćwiczenia (60 godz.): Wtorek 15.00 16.30 sala seminaryjna ul. Borowska 211a Ćwiczenia Katedra i Zakład Mikrobiologii Farmaceutycznej i Parazytologii. ul. Borowska 211a Wrocław Grupy AB: Wtorek 16.45.00 19.00 (3 godz.) Grupy AB: Środa 10.30 12.00 (2 godz.) Grupy CDE: Wtorek 12.30 14.45 (3 godz.) Grupy CDE: Środa 8.00 9.30 (2 godz.) MIKROBIOLOGIA OGÓLNA Ćwiczenie 1: wtorek 9.10.2018 r. Temat: Bezpieczeństwo pracy w laboratorium mikrobiologicznym Wstęp do diagnostyki mikrobiologicznej - Metody barwienia, typy mikroskopów. a) zapoznanie studentów z organizacją i dyscypliną pracy podczas ćwiczeń z mikrobiologii; b) zapoznanie studentów z programem ćwiczeń, zasadami sprawdzania efektów kształcenia i zaliczenia ćwiczeń c) przedstawienie etapów diagnostyki mikrobiologicznej d) omówienie typów mikroskopów: jasne i ciemne pole widzenia, mikroskop fluorescencyjny; e) omówienie morfologii drobnoustrojów; f) podział technik barwienia: proste, złożone, pozytywne, negatywne, pozytywno-negatywne. - nauka higienicznego mycia rąk - nauka obsługi mikroskopu świetlnego - wykonanie preparatów barwionych metodą Loefflera ( Bacillus spp.), metodą negatywną ( Micrococcus spp.) - oglądanie własnych preparatów w mikroskopie świetlnym - ocena morfologii komórek bakteryjnych i grzybów w gotowych preparatach Ćwiczenie 2: środa 10.10. 2018 r. Temat: Morfologia drobnoustrojów. Metody barwienia, typy mikroskopów cd. a) omówienie złożonych metod barwienia: metody Grama, Neissera, Moellera, Burri-Ginsa - wykonanie preparatów barwionych metodą Grama ( Staphylococcus, Streptococcus, pałeczki Gram(-), Burii- Ginsa ( Klebsiella pneumoniae, Streptococcus pneumoniae) - oglądanie własnych preparatów w mikroskopie świetlnym Ćwiczenie 3: wtorek 16.10. 2018 r. Temat: Hodowla i identyfikacja drobnoustrojów. a) omówienie surowców niezbędnych do przygotowania pożywek bakteriologicznych; b) omówienie typów podłoży (płynne, półpłynne, stałe) i typów wzrostu bakterii na poszczególnych podłożach; c) omówienie podłoży prostych, wzbogaconych, selektywnych i różnicujących ich zastosowanie w diagnostyce; d) demonstracja wybranych podłoży do oceny metabolizmu bakterii; e) omówienie i demonstracja komercyjnych systemów do identyfikacji bakterii; f) omówienie hodowli bakterii w warunkach tlenowych, beztlenowych, w atmosferze mikroaerofilnej wraz z demonstracją anareostatu, jaaru, eksykatora; - nauka posiewu redukcyjnego - ocena morfologii kolonii bakterii na różnych podłożach hodowlanych- opis morfologii 1

Ćwiczenie 4: środa 17.10. 2018r. Temat: Odczyny serologiczne i techniki molekularne w diagnostyce mikrobiologicznej. a) Omówienie pojęcia antygenu, przeciwciała i typów reakcji serologicznych (odpytanie studentów na ocenę); b) Przykłady odczynów serologicznych w diagnostyce mikrobiologicznej (wyjaśnić zasady i zastosowanie odczynów): aglutynacja szkiełkowa (serotypowanie), aglutynacja probówkowa (odczyn Widala), bierna hemaglutynacja (TPHA), precypitacja radialna, odczyny flokulacji (USR, VDRL), ELISA, immunofluorescencja pośrednia. c) techniki molekularne (PCR) 1) Wykonanie odczynu aglutynacji szkiełkowej 2) Demonstracja odczynu aglutynacji probówkowej 3) Demonstracja odczynu precypitacji pierścieniowej (odczyn Ascoliego) 4) Demonstracja odczynu immunoenzymatycznego ELISA 5) Demonstracja odczynu kłaczkującego USR, VDRL MIKROBIOLOGIA SZCZEGÓŁOWA na każde ćwiczenie studenci przychodzą przygotowani teoretycznie do zajęć Ćwiczenie 5: wtorek 23.10. 2018r. Temat: Bakterie Gram-dodatnie: Staphylococcus, Micrococcus a) ogólna charakterystyka rodziny Micrococcaceae i rodzaju Staphylococcus; a) ocena morfologii kolonii rodzaju Staphylococcus i Mirococcus b) różnicowanie Staphylococcus i Micrococcus ( morfologia kolonii, test wrażliwości na furazolidon) c) różnicowanie gatunków Staphylococcus - test na koagulazę - test clumping factor - test na nowobiocynę d) wykonanie preparatów barwionych metodą Grama z hodowli Staphylococcus i Micrococcus Ćwiczenie 6: środa 24.10. 2018 r. Temat: Bakterie Gram-dodatnie cd. - paciorkowce. Rodzaj: Streptococcus Enterococcus Peptostreptococcus a) charakterystyka paciorkowców; a) ocena morfologii kolonii paciorkowców b) różnicowanie gatunków Streptococcus c) różnicowanie gatunków Enterococcus d) wykonanie preparatów barwionych metodą Grama z hodowli paciorkowców Ćwiczenie 7: wtorek 6.11. 2018 r. KOLOKWIUM NR I z ćwiczeń 1-6 Temat: Gram-ujemne pałeczki fermentujące: rodzina Enterobacteriaceae. a) charakterystyka wybranych pałeczek z rodziny Enterobacteriaceae: Escherichia coli, Salmonella sp., Shigella sp., Klebsiella sp., Proteus sp., Yersinia sp. a) ocena morfologii kolonii pałeczek Gram-ujemnych b) różnicowanie różnych rodzajów w obrębie Enterobacteriaceae 2

c) testy serologiczne do typowania pałeczek jelitowych d) diagnostyka duru brzusznego e) wykonanie preparatów barwionych metodą Grama z hodowli pałeczek Gram-ujemnych Ćwiczenie 8: środa 7.11. 2018 r. Temat: Gram-ujemne pałeczki niefermentujące. a) charakterystyka pałeczek z rodzaju Pseudomonas spp., Acinetobacter spp., Stenotrophomonas spp., Burkholdreia cepacia (odpytanie studentów na ocenę); a) ocena morfologii kolonii pałeczek Gram-ujemnych b) różnicowanie różnych rodzajów w obrębie rodziny pałeczek niefermentujących c) wykonanie preparatów barwionych metodą Grama z hodowli pałeczek Gram-ujemnych Ćwiczenie 9: wtorek 13.11. 2018 r. Temat: Laseczki tlenowe i beztlenowe. Charakterystyka laseczek z rodzajów: Bacillus (B. cereus, B. anthracis) i Clostridium: (Cl. tetani, Cl. botulinum, Cl. perfringens, Cl. difficile) a) hodowla i identyfikacja laseczek tlenowych i beztlenowych - hodowla - testy na wykrywanie toksyn Cl.difficille Ćwiczenie 10: środa 14.11. 2018 r. KOLOKWIUM NR II z ćwiczeń 7-9 Temat: Bakterie beztlenowe nieprzetrwalnikujące. a) Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek z rodzaju Bacteroides, Porphyromonas, Prevotella, Fusobacterium hodowla i identyfikacja bakterii beztlenowych - metody hodowli - różnicowanie bakterii beztlenowych - ocena morfologii kolonii beztlenowców Ćwiczenie 11: wtorek 20.11. 2018 r. Temat: Gram-ujemne ziarniaki Rodzaj: Neisseria, Moraxella a) Charakterystyka i chorobotwórczość Hodowla i identyfikacja Neisseria, Moraxella - hodowla podłoża, warunki wzrostu - różnicowanie gatunków w obrębie rodzaju Neisseria 3

Ćwiczenie 12: środa 21.11. 2018 r. Temat: Gram ujemne małe pałeczki i promieniowce. charakterystyka i chorobotwórczość bakterii z rodzaju: Haemophilus, Brucela, Pasteurella, Francisella, Bordetella, Actinomyces i Nocardia. Część praktyczna : Hodowla i identyfikacja małych Gram-ujemnych pałeczek i promieniowców - morfologia kolonii - metody hodowli - różnicowanie H.influenzae i H.parainfluenzae - testy diagnostyczne - ocena w preparatach mikroskopowych Ćwiczenie 13: wtorek 27.11. 2018 r. Temat: Gruźlica Mycobacterium tuberculosis i prątki atypowe. Podział taksonomiczny i charakterystyka prątków. Część praktyczna : 1. Diagnostyka gruźlicy. 2. Barwienie plwociny metodą Ziehl-Neelsena. Oglądanie preparatów barwionych metodą Ziehl-Neelsena. 3. Obserwacja na podłożu Loewensteina-Jensena hodowli: M. smegmatis, M. tuberculosis. 4. Prątki atypowe identyfikacja, diagnostyka. Ćwiczenie 14: środa 28.11. 2018r. Temat: Pałeczki Gram-dodatnie. Rodzaj: Corynebacterium, Listeria, Propionibacterium a) charakterystyka i chorobotwórczość drobnoustrojów z rodzajów: Corynebacterium, Listeria i Propionibacterium; Identyfikacja - hodowla - omówienie testu Eleka do wykrywania toksyny błoniczej; Ćwiczenie 15: wtorek 4.12. 2018r. Temat: Kolokwium nr III z ćwiczeń:10-14. Temat: Bakterie spiralne. Rodzaje: Treponema, Leptospira, Borrelia a) charakterystyka krętków; metody hodowli i wykrywania tych drobnoustrojów w materiale biologicznym, diagnostyka zakażeń; a) diagnostyka kiły b) diagnostyka boreliozy interpretacja wyników badań w kierunku boreliozy Ćwiczenie 16: środa 5.12. 2018 r. Temat: Bakterie spiralne. Rodzaje: Helicobacter spp. Campylobacter spp. Vibrio spp. charakterystyka i chorobotwórczość Helicobacter spp., Campylobacter spp., Vibrio spp.; a) diagnostyka Helicobacter, Campylobacter, Vibrio b) demonstracja hodowli na podłożach stałych ocena morfologii kolonii c) oglądanie preparatów z bioptatów w kierunku Helicobacter spp. 4

Ćwiczenie 17: wtorek 11.12. 2018 r. Temat: Dezynfekcja i sterylizacja. omówienie metod dezynfekcji i sterylizacji a) nauka mycia i dezynfekcji rąk kontrola poprzez odciski opuszków palców b) bakteriobójcze działanie promieniowania UV ( hodowla S.epidermidis) c) wpływ temperatury na przeżywalność drobnoustrojów ( E.coli, Bacillus spp.) ocena po 5min, 30min, 1h gotowania bulionowych hodowli d) metody sterylizacji e) kontrola badania jałowości powietrza metodą sedymentacji f) kontrola procesów sterylizacji Ćwiczenie 18: środa 12.12. 2018 r. Kolokwium nr IV z ćw. 15-17 Temat: Antyseptyka a) odczyt posiewów odcisków opuszków palców b) omówienie błędów związanych z dezynfekcją rąk i konsekwencji z tym związanych c) odczyt testów wykonanych na ćwiczeniu 17 Ćwiczenie 19: wtorek 18. 12. 2018 r. Kolokwium nr V sprawdzające wiedzę z zakresu antybiotyków ( podział, mechanizmy działania, charakterystyka grup) Temat: Metody oceny wrażliwości bakterii na antybiotyki a) wykonanie antybiogramów dla rodzaju Staphylococcus spp., Enterococcus spp., E.coli, Enterobacter spp., Pseudomonas spp. metodą dyfuzyjno-krążkową b) demonstracja metod oceny wartości MIC,MBC Ćwiczenie 20: środa 19.12. 2018 r. Temat: Antybiotyki cd. Mechanizmy lekooporności Gram-ujemnych pałeczek a) odczyt testów lekowrażliwości b) omówienie mechanizmów i metod oceny lekooporności Gram-ujemnych pałeczek (ESBL, MBL, KPC, NDM.) c) demonstracja wykrywania ESBL metoda dwóch krążków i E-testu d) demonstracja wykrywania MBL, KPC, NDM Ćwiczenie 21: wtorek 8.01. 2019 r. Temat: Mechanizmy lekooporności Gram-ujemnych pałeczek c.d. Część praktyczna a) Wykonanie testów oceniających mechanizmy lekooporności u pałeczek Gram-ujemnych b) Interpretacja antybiogramów dla szczepów ESBL, MBL, KPC, NDM- dodatnich 5

Ćwiczenie 22: środa 9.01. 2019 r.. Mechanizmy oporności Gram+ bakterii na antybiotyki a) odczyt testów wykonanych na poprzednim ćwiczeniu b) omówienie mechanizmów lekooporności Staphylococcus spp., Streptococcus spp., Enterococcus spp. Ćwiczenie 23: wtorek 15.01. 2019 r.. Mechanizmy lekooporności Gram-dodatnich bakterii a) metody wykrywania mechanizmów oporności MRSA, HLAR, VISA/GISA, VRE, GRE, PRSP, MLS B omówienie i demonstracja b) Wykrywanie mechanizmów lekooporności typu: MRSA, HLAR, VISA/GISA, VRE, GRE, PRSP, MLS B.) c) Interpretacja antybiogramów dla szczepów MRSA, HLAR, VISA/GISA, VRE, GRE, PRSP, MLS B. Ćwiczenie 24: środa 16.01. 2019 r. Mechanizmy lekooporności bakterii c.d. Część praktyczna a) odczyt testów wykonanych na poprzednim ćwiczeniu b) znaczenie wykrywania mechanizmów oporności u bakterii c) alert patogeny Kolokwium z całości materiału z semestru I dla studentów z niezaliczonym (-i) kolokwium (-ami) poprawkowym (i) (patrz regulamin wewnętrzny przedmiotu) 6