PROGRAM ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2014/2015 semestr zimowy

Transkrypt

1 Wrocław, PROGRAM ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2014/2015 semestr zimowy Ćwiczenia ćwiczeń z mikrobiologii odbywają się w sali ćwiczeń Katedry i Zakładu Mikrobiologii Uniwersytetu Medycznego we Wrocławiu WYKŁAD: Wtorek sala wykładowa Czwartek sala wykładowa OGÓLNY PLAN ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII semestr zimowy Semestr zimowy tygodni x 3 godz. = 30 h 1 tydzień x 1 godz. = 1 h Razem: 31 h Ćwiczenie 1. (3 godz.) Morfologia bakterii. Metody barwienia. Metody hodowli bakterii Ćwiczenie 2. (3 godz.) Ziarniaki Gram-dodatnie: gronkowce i paciorkowce Ćwiczenie 3. (3 godz.) Gram-ujemne pałeczki fermentujące niefermentujące oraz bezwzględnie beztlenowe Ćwiczenie 4. (3 godz.) Corynebacterium, Bacillus, Clostridium, Actinomyces, Nocardia, Mycobacterium Ćwiczenie 5. (3 godz.) Bakterie spiralne Kolokwium I (1-4) Ćwiczenie 6. (3 godz.) Sterylizacja i dezynfekcja. Antybiotyki cz. I Ćwiczenie 7. (3 godz.) Antybiotyki cz. II. Mechanizmy oporności Ćwiczenie 8. (3 godz.) Choroby przenoszone drogą płciową. Ćwiczenie 9. (3 godz.) Flora fizjologiczna. Zakażenia górnych i dolnych dróg oddechowych Ćwiczenie 10. (3 godz.) Zakażenia układu moczowego Ćwiczenie 11 (1 godz.) Kolokwium II (5-10) 06.X 10.X X 17.X X 24.X X 31.X XI 07.XI XI 21.XI XI 28.XI XII 05.XII XII 12.XII XII 19.XII I 09.I

2 Poniedziałek (I) / 14a, 14b, 8a (II) / 8b, 7a, 7b, 10a Wtorek (I) / 3a, 3b, 4a (II) / 12a, 12b, 4b Środa (I) / 13a, 13b, 10b Czwartek (I) / 1a, 1b, 2a, 2b (II) / 5a, 5b, 9a, 9b Piątek (I) / 11a, 11b, 6a, 6b SZCZEGÓŁOWY PLAN ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII semestr zimowy ĆWICZENIE 1 (06.X 10.X. 2014) TEMAT: MORFOLOGIA BAKTERII. METODY BARWIENIA. METODY HODOWLI BAKTERII Organizacja i dyscyplina pracy w czasie ćwiczeń z mikrobiologii. Typy mikroskopów używanych na ćwiczeniach: świetlny, z ciemnym polem widzenia, fluorescencyjny. Morfologia bakterii. Metody barwienia preparatów mikroskopowych: barwienie proste, złożone, pozytywne, negatywne, negatywno-pozytywne. Warunki hodowli bakterii tlenowych i beztlenowych in vitro. Wpływ temperatury, ph, potencjału oksydacyjno-redukcyjnego, egzogennych związków pokarmowych (czynników wzrostowych). Podział podłoży mikrobiologicznych (proste, wzbogacone, wybiórczo-różnicujące, różnicujące). Opisywanie morfologii kolonii na wybranych podłożach. Sporządzanie i oglądanie w mikroskopie świetlnym preparatów z hodowli bakterii, barwienie metodą Grama. Demonstracja gotowych preparatów z bakterii w mikroskopie świetlnym, cpw. i fluorescencyjnym. Demonstracja podłoży bakteriologicznych oraz wzrostu bakterii w podłożu płynnym i na podłożach stałych. ĆWICZENIE 2 (13.X 17.X. 2014) TEMAT: ZIARNIAKI GRAM-DODATNIE: GRONKOWCE I PACIORKOWCE Charakterystyka i chorobotwórczość Staphylococcus aureus, S. epidermidis, S. saprophyticus. Charakterystyka i chorobotwórczość Streptococcus pyogenes, S. pneumoniae, S. z gr. orale, Enterococcus spp. Demonstracja hodowli na agarze z krwią, opis morfologii kolonii, rodzaje hemolizy. Demonstracja gotowych preparatów z omawianych bakterii w mikroskopie świetlnym. Testy identyfikacyjne dla gronkowców: wytwarzanie katalazy, CF (wykonanie), wrażliwość na nowobiocynę i furazolidon, test koagulazowy (demonstracja), ID32 Staph do odczytu. Testy identyfikacyjne dla paciorkowców: wrażliwość na bacytracynę i optochinę, szereg biochemiczny dla enterokoków, wykrywanie antygenów grupowych (demonstracja), Api20Strep do odczytu

3 ĆWICZENIE 3 (20.X 24.X. 2014) TEMAT: GRAM-UJEMNE PAŁECZKI FERMENTUJĄCE, NIEFERMENTUJĄCE oraz BEZWZGLĘDNIE BEZTLENOWE Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek rodziny Enterobacteriaceae: Salmonella, Shigella, Escherichia coli, Proteus, Klebsiella. Charakterystyka i chorobotwórczość pałeczek niefermentujacych: Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumannii, Stenotrophomonas maltophilia. Charakterystyka i chorobotwórczość Gram-ujemnych bakterii bezwzględnie beztlenowych (Prevotella, Porphyromanas, Bacteroides, Fusobacterium). Demonstracja hodowli bakterii na podłożach wybiórczych: Mac Conkey a i SS (Enterobacteriaceae) oraz na agarze zwykłym i Mac Conkey a (Pseudomonas i Acinetobacter). Demonstracja gotowych preparatów bakteryjnych w mikroskopie świetlnym. Identyfikacja Gram-ujemnych pałeczek: odczyt testów ID32GN dla G(-) pałeczek. Test na wytwarzanie oksydazy i barwników dla G(-) pałeczek niefermentujących. Demonstracja i identyfikacja Gram-ujemnych pałeczek bezwzględnie beztlenowych: odczyt testów ID32A. ĆWICZENIE 4 (27.X 31.X. 2014) TEMAT: Corynebacterium, Bacillus, Actinomyces, Nocardia, Mycobacteriun Charakterystyka i chorobotwórczość laseczek: Bacillus anthracis, Clostridium tetani, Cl. difficile, Cl. botulinum, Cl. perfringens. Charakterystyka i chorobotwórczość maczugowców Corynebacterium diphtheriae. Szczepionka DPT (diphtheria, pertussis, tetanus). Podział taksonomiczny prątków Charakterystyka i chorobotwórczość Mycobacterium tuberculosis oraz mykobakterii MOTT. Postacie kliniczne gruźlicy, diagnostyka, szczepienia (BCG), próby tuberkulinowe Odporność śródzakaźna fenomen Kocha Charakterystyka i chorobotwórczość Actinomyces spp. i Nocardia spp. Demonstracja hodowli i gotowych preparatów: Bacillus, Clostridium Corynebacterium. Testy identyfikacyjne maczugowców (ApiCoryne). Oglądanie preparatów plwociny od chorego prątkującego barwionych metodą Ziehl-Neelsena (czynnik wiązkowy cord factor). Oznaczanie wrażliwości prątków na tuberkulostatyki. Demonstracja hodowli i gotowych preparatów Actinomyces spp. i Nocardia spp. ĆWICZENIE 5 (03.XI 07.XI. 2014) TEMAT: BAKTERIE SPIRALNE. KOLOKWIUM I (z ćwiczeń 1-4) Charakterystyka i chorobotwórczość Treponema pallidum, Leptospira, Borrelia recurrentis, B. burgdorferi, Campylobacter jejuni, Helicobacter pylori. Demonstracja hodowli Campylobacter i Helicobacter

4 Demonstracja bezpośredniego preparatu z bioptatu z H. pylori. Demonstracja preparatu srebrzonego z Treponema pallidum. Demonstracja Leptospira w mikroskopie z ciemnym polem widzenia. Demonstracja bezpośredniego rozmazu krwi z B. recurrentis. Oglądanie gotowych preparatów z Campylobacter i Helicobacter. ĆWICZENIE 6 (17.XI 21.XI. 2014) TEMAT: STERYLIZACJA i DEZYNFEKCJA. ANTYBIOTYKI część I STERYLIZACJA i DEZYNFEKCJA Omówienie metod sterylizacji i dezynfekcji oraz preparatów stosowanych w antyseptyce. Ocena skuteczności higienicznego mycia rąk (mycie + jednokrotna dezynfekcja) - jedna płytka agarowa dla studenta. ANTYBIOTYKI Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków (mechanizm i sposób działania, spektrum przeciwbakteryjne, mechanizm(y) oporności, farmakokinetyka): β-laktamy, aminoglikozydy, makrolidy i ketolidy, linkozamidy, glikopeptydy, tetracykliny, tigecyklina, polimyksyny, oksazolidynony, fluorochinolony, sulfonamidy. Metody oznaczania wrażliwości bakterii i grzybów na antybiotyki: - metoda krążkowo-dyfuzyjna (omówienie) - metoda seryjnych rozcieńczeń w podłożu bulionowym MH oznaczanie MIC i MBC (demonstracja) - oznaczanie MIC metodą E-testu (demonstracja) - metoda rozcieńczenia leku w pożywce Loewensteina-Jensena dla prątków gruźlicy (demonstracja ) Wykonanie antybiogramu metodą krążkowo-dyfuzyjną dla wybranych szczepów bakterii: Staphylococcus aureus MRSA z ropy Pseudomonas aeruginosa MBL(+) z ropy Klebsiella pneumoniae ESBL(+) z plwociny - zapalenie płuc ĆWICZENIE 7 (24.XI 28.XI. 2014) TEMAT: ANTYBIOTYKI część II. MECHANIZMY OPORNOŚCI Omówienie wybranych mechanizmów oporności bakterii na antybiotyki: MRS, MLS B, VISA, VRSA, HLAR, VRE, MBL, ESBL, KPC Odczyt i interpretacja antybiogramów z poprzedniego ćwiczenia. Odczyt antybiogramów przygotowanych metodą ATB dla różnych szczepów bakterii. Wykonanie testu z cefinazą wykrywanie beta-laktamaz u Moraxella. Demonstracja antybiogramu Enterococcus faecalis HLAR z krwi (zapalenie wsierdzia) Demonstracja antybiogramu Enterococcus faecalis VRE E test Demonstracja testu do wykrywania MBL B Demonstracja E-testu do wykrywania ESBL Demonstracja E-testu do wykrywania MBL Demonstracja testu do wykrywania KPC Nosicielstwo S. aureus antybiogram - 4 -

5 ĆWICZENIE 8 (01.XII 05.XII. 2014) TEMAT: CHOROBY PRZENOSZONE DROGĄ PŁCIOWĄ Część teoretyczna Omówienie zakażeń przenoszonych drogą płciową oraz czynników etiologicznych STD. Część praktyczna ćwiczenie demonstracyjne Diagnostyka kiły: - USR i TPHA do odczytu i interpretacji - FTA-ABS i ELISA do omówienia - preparat srebrzony z tkanki mózgowej Diagnostyka rzeżączki (GU): - hodowla gonokoków na podłożu Roiron - wykonanie testu na oksydazę - demonstracja preparatu z ropy rzeżączkowej - omówienie testu przesiewowego Gonoline Duo 2 Diagnostyka rzęsistkowicy: - demonstracja preparatu z Trichomonas vaginalis (Giemsa) Diagnostyka NGU: - hodowla Mycoplasma hominis - Mycoplasma IST-test do odczytu i interpretacji - Chlamydia trachomatis (zakażona linia komórkowa Mc Coy a - zdjęcie) Diagnostyka grzybicy dróg rodnych. Opracowanie materiałów diagnostycznych do następnego ćwiczenia: ZAKAŻENIA GÓRNYCH I DOLNYCH DRÓG ODDECHOWYCH 1. wymaz z gardła (podejrzenie anginy paciorkowcowej) 2. plwocina (zapalenie płuc, pacjent ambulatoryjny) 3. wydzielina z drzewa oskrzelowego + krew (pacjent hospitalizowany OIOM) ĆWICZENIE 9 (08.XII 12.XII. 2014) TEMAT: FLORA FIZJOLOGICZNA. ZAKAŻENIA GÓRNYCH I DOLNYCH DRÓG ODDECHOWYCH Omówienie roli flory endogennej człowieka. Omówienie postaci klinicznych oraz etiologii zakażeń górnych i dolnych dróg oddechowych. Schemat badania mikrobiologicznego. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania. Odczyt posiewów próbek z zakażeń dróg oddechowych: wymaz z gardła (angina paciorkowcowa) preparat mikroskopowy barwiony, metodą Grama (wykonanie), test wrażliwości na bacytracynę (demonstracja). Test do wykrywania Ag S. pyogenes plwocina (zapalenie płuc, pacjent pozaszpitalny) preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama (wykonanie), test z optochiną (demonstracja), antybiogram. wydzielina z drzewa oskrzekowego + krew (pacjent hospitalizowany OIOM) preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama (wykonanie), odczyt testu ID32GN, antybiogram. Demonstracja hodowli wybranych patogenów górnych dróg oddechowych: Staphylococcus aureus, Corynebacterium diphtheriae. Demonstracja bezpośredniego z wymazu z gardła chorego na anginę Plauta-Vincenta

6 Opracowanie materiałów diagnostycznych do następnego ćwiczenia: ZAKAŻENIA UKŁADU MOCZOWEGO Materiał 1 (mocz) Posiew ilościowy na: AK, MC i podłoże Sabourauda. Materiał 2 (mocz) Posiew ilościowy na: AK, MC i podłoże Sabourauda. Materiał 3 (mocz) - Posiew ilościowy na: AK, MC i podłoże Sabourauda. ĆWICZENIE 10 (15.XII 19.XII. 2014) TEMAT: ZAKAŻENIA UKŁADU MOCZOWEGO Omówienie czynników etiologicznych zakażeń układu moczowego. Schemat badania mikrobiologicznego moczu. Pobieranie i przesyłanie materiałów diagnostycznych do badania. Odczyt posiewów materiałów diagnostycznych: Identyfikacja do materiału 1- test ID32GN, interpretacja antybiogramu, Identyfikacja do materiału 2 - preparat barwiony metodą Grama, odczyt testu biochemicznego (krótki szereg dla paciorkowców grupy D, interpretacja antybiogramu, Identyfikacja do materiału 3 - test ID32GN, interpretacja antybiogramu, DEMONSTRACJE: demonstracja hodowli wybranych patogenów układu moczowego: E. coli, Klebsiella spp., Proteus spp., Staphylococcus epidermidis, S. saprophyticus, S. aureus, Enterococcus faecalis, Candida albicans. demonstracja testu Golda wynik dodatni i ujemny. demonstracja wyniku posiewu moczu zanieczyszczonego 4 szczepy: pałeczki lac(+) i lac(-), Enterococcus, Staphylococcus. demonstracja gotowych preparatów ww. patogenów w mikroskopie świetlnym. demonstracja gotowych zestawów do półilościowego posiewu moczu: Uriline, Uricult. ĆWICZENIE 11 (05.I 09.I. 2015)!!! Ćwiczenie 45-minutowe TEMAT: KOLOKWIUM II (z ćwiczeń 5-10) Wrocław, Kierownik Katedry i Zakładu Mikrobiologii Prof. dr hab. Grażyna Gościniak - 6 -

7 PROGRAM ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII DLA STUDENTÓW II ROKU WYDZIAŁU LEKARSKIEGO W ROKU AKADEMICKIM 2014/2015 semestr letni OGÓLNY PLAN ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII semestr letni Semestr letni Ćw. 2 godz. 7 tygodni x 2 godz. = 14 h Razem: 14 h Ćwiczenie 12. Podstawy diagnostyki chorób wirusowych. Ćwiczenie 13. Podstawy diagnostyki chorób grzybiczych. Ćwiczenie 14. Zakażenia przewodu pokarmowego. Ćwiczenie 15. Zakażenia skóry i tkanek miękkich. Kolokwium III (12-14) Ćwiczenie 16. Zakażenia ośrodkowego układu nerwowego Ćwiczenie 17. Zakażenia ogólnoustrojowe (sepsa) Kolokwium IV (15-17) 16.II 20.II II 27.II III 06.III III 13.III III 20.III III 27.III Ćwiczenie 18. Egzamin praktyczny 20.IV 24.IV SZCZEGÓŁOWY PLAN ĆWICZEŃ Z MIKROBIOLOGII semestr letni ĆWICZENIE 12 (16.II 20.II. 2015) TEMAT: PODSTAWY DIAGNOSTYKI ZAKAŻEŃ WIRUSOWYCH Część teoretyczna Pobieranie i przesyłanie materiałów do badań wirusologicznych. Metody hodowli wirusów. Odczyny serologiczne w diagnostyce chorób wirusowych. Część praktyczna Demonstracja zakażonych wirusami linii komórkowych ( efekt cytopatyczny). Demonstracja hodowli wirusów bakteryjnych (łysinki). Demonstracja odczynu Hirsta ( miareczkowanie wirusa) i Hirsta-Salka. Demonstracja odczynu ELISA. ĆWICZENIE 13 (23.II 27.II. 2015) TEMAT: PODSTAWY DIAGNOSTYKI CHORÓB GRZYBICZYCH. Omówienie najczęściej występujących przypadków grzybic miejscowych i układowych oraz czynników etiologicznych (Candida, Cryptococcus, Aspergillus)

8 Omówienie pobierania, przesyłania i zasad hodowli grzybów chorobotwórczych. Charakterystyka najważniejszych grup leków przeciwgrzybicznych: polieny (nystatyna, natamycyna, amfoteryczna B), imidazole, triazole, antymetabolity (5-fluorocytozyna), echinokandyny. Identyfikacja grzybów drożdżopodobnych: - obserwacja morfologii hodowli na podłożu Sabourauda i Chromagar Candida, - obserwacja blastospor i artrospor w preparatach barwionych metodą Grama, - odczyt testu filamentacji (wykonanie preparatów natywnych), - obserwacja charakterystycznych struktur (chlamydospor) w mikrohodowli, - odczyt testu ID 32 C. Grzyby pleśniowe i dermatofity: - obserwacja morfologii hodowli Aspergillus i Penicillium na podłożu Czapka, - obserwacja gotowych preparatów dermatofitów w laktofenolu (Trichophyton, Epidermophyton, Microsporum). Oznaczanie wrażliwości grzybów metodą Fungi-Test (demonstracja) Opracowanie materiałów diagnostycznych do następnego ćwiczenia: ZAKAŻENIA PRZEWODU POKARMOWEGO Posiew wymazów z odbytu od trzech pacjentów na podłoża wybiórcze: MC, SS i SF. Materiał 1, Materiał 2, Materiał 3 ĆWICZENIE 14 (02.III 06.III. 2015) TEMAT: ZAKAŻENIA PRZEWODU POKARMOWEGO Omówienie czynników etiologicznych zakażeń przewodu pokarmowego. Schemat badania mikrobiologicznego kału. Pobieranie i przesyłanie materiałów diagnostycznych do badania. Odczyt posiewów materiałów diagnostycznych: identyfikacja Salmonella: test ID32GN, demonstracja typowania serologicznego Salmonella metodą aglutynacji szkiełkowej. identyfikacja Shigella: test ID32GN, demonstracja typowania serologicznego Shigella metodą aglutynacji szkiełkowej. identyfikacja E. coli: test ID32GN, demonstracja typowania serologicznego EPEC metodą aglutynacji szkiełkowej. DEMONSTRACJE: demonstracja hodowli wybranych patogenów układu pokarmowego: Salmonella spp., Shigella spp., Escherichia coli, Yersinia enterocolitica, Campylobacter jejuni. demonstracja gotowych preparatów ww. patogenów w mikroskopie świetlnym. demonstracja testu do wykrywania rotawirusów i adenowirusów w kale: Rota-Adeno Kit. demonstracja odczynu Widala Opracowanie materiałów diagnostycznych do następnego ćwiczenia: ZAKAŻENIA SKÓRY i TKANEK MIĘKKICH. Materiał 1. Materiał 2. Materiał 3. Pacjent z ropniem podprzeponowym, 2 wymazy: preparat bezpośredni, posiew na podłoża: AK, MC, agar Schaedlera z krwią i płynne podłoże tioglikolanowe. Pacjent z czyrakiem mnogim, 2 wymazy: preparat bezpośredni, posiew na podłoża: AK, MC, agar Schaedlera z krwią i płynne podłoże tioglikolanowe. Pacjent z raną po oparzeniu, 1 wymaz: posiew na podłoża: AK, MC, bulion cukrowy

9 ĆWICZENIE 15 (09.III 13.III. 2015) TEMAT: ZAKAŻENIA SKÓRY i TKANEK MIĘKKICH. KOLOKWIUM III (12-14) Część teoretyczna Omówienie czynników etiologicznych zakażeń skóry i tkanek miękkich. Schemat badania mikrobiologicznego ropy. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania. Część praktyczna Odczyt posiewów próbek ze zmian ropnych, identyfikacja szczepów, interpretacja antybiogramów. - identyfikacja Bacteroides odczyt testu api 20A. - identyfikacja E. coli: ID32GN. - identyfikacja Staphylococcus: preparat z hodowli barwiony metodą Grama, wykonanie testu na katalazę, demonstracja testu na obecność koagulazy, odczyt testu ID32Staph. - identyfikacja Pseudomonas aeruginosa: test na oksydazę, odczyt testu ID32GN. - odczyt i interpretacja antybiogramów przygotowanych dla wyhodowanych szczepów. Demonstracja hodowli wybranych patogenów zakażeń skóry i tkanek miękkich: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Bacteroides fragilis. Demonstracja gotowych preparatów ww. patogenów w mikroskopie świetlnym. Opracowanie materiałów diagnostycznych do następnego ćwiczenia: ZAKAŻENIA ÓŚRODKOWEGO UKŁADU NERWOWEGO. Materiał 1. Pacjent z zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych: a) płyn mózgowo-rdzeniowy na podłożu transportowo-wzrostowym Meningomedium po 24 godz. inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża: TSA z krwią, MC, Casmana b) próbka płynu mózgowo-rdzeniowego w jałowej probówce: preparat bezpośredni barwiony metodą Grama (wykonanie), testy koaglutynacji lateksowej wykrywające antygeny bakteryjne (demonstracja), c) krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji: aseptyczny posiew na podłoża: TSA, MC, Casmana, Materiał 2. Pacjent z zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych: płyn mózgowo-rdzeniowy i krew jak wyżej ĆWICZENIE 16 (16.III 20.III. 2015) TEMAT: ZAKAŻENIA OŚRODKOWEGO UKŁADU NERWOWEGO Część teoretyczna Omówienie czynników etiologicznych zakażeń CUN. Schemat badania mikrobiologicznego płynu mózgowo-rdzeniowego. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania. Część praktyczna Odczyt posiewów próbek krwi i płynu mózgowo-rdzeniowego oraz interpretacja antybiogramów: identyfikacja Neisseria meningitidis: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama i test na oksydazę (wykonanie). Odczyt testu API NH identyfikacja Streptococcus pneumoniae: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama, identyfikacja: test wrażliwości na optochinę, odczyt testu API 20 Strep. odczyt przygotowanych antybiogramów dla: Streptococcus pneumoniae Demonstracja hodowli wybranych patogenów zakażeń centralnego układu nerwowego: Neisseria meningitidis, Streptococcus agalactiae, Escherichia coli, Haemophilus influenzae (różnicowanie Casman + BX, demonstracja testu API NH), Candida albicans Demonstracja gotowych preparatów z w/w drobnoustrojów w mikroskopie świetlnym

10 Opracowanie materiałów diagnostycznych do następnego ćwiczenia: ZAKAŻENIA OGÓLNOUSTROJOWE (SEPSA). Materiał 1. Pacjent z zapaleniem wsierdzia: krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji; aseptyczny posiew na podłoża AK i MC Materiał 2. Pacjent z sepsą: krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji, aseptyczny posiew na podłoża AK i MC. Materiał 3. Pacjent z zakażeniem odcewnikowym krwi: krew na podłożu transportowo-wzrostowym po 24 godz. inkubacji, aseptyczny posiew na podłoża AK i MC. ĆWICZENIE 17 (23.III 27.III. 2015) TEMAT: ZAKAŻENIA OGÓLNOUSTROJOWE (SEPSA) KOLOKWIUM IV (15-17) Część teoretyczna Omówienie czynników etiologicznych zakażeń ogólnoustrojowych. Schemat badania mikrobiologicznego krwi. Pobieranie i przesyłanie próbek do badania. Część praktyczna Odczyt posiewów próbek krwi oraz interpretacja antybiogramów. - identyfikacja Streptococcus salivarius: preparat mikroskopowy barwiony metodą Grama, identyfikacja: test wrażliwości na optochinę, API 20 Strep (demonstracja). - identyfikacja Klebsiella pneumoniae: odczyt testu ID32GN. - identyfikacja Staphylococcus epidermidis odczyt testu ID32Staph. - odczyt przygotowanych antybiogramów dla: Streptococcus salivarius, K. pneumoniae, S. epidermidis Demonstracja hodowli wybranych patogenów zakażeń ogólnoustrojowych: Streptococcus agalactiae, Streptococcus salivarius, Staphylococcus epidermidis, Escherichia coli, Enterobacter cloacae, Candida albicans Demonstracja gotowych preparatów z w/w drobnoustrojów w mikroskopie świetlnym. Demonstracja podłoży transportowo-namnażających do posiewu płynów ustrojowych. Demonstracja aparatu Bact Alert do hodowli próbek płynów ustrojowych. ĆWICZENIE 18 (20.IV 24.IV. 2015) TEMAT: EGZAMIN PRAKTYCZNY UWAGA: Materiały teoretyczne do ćwiczeń diagnostycznych znajdują się na stronie internetowej Katedry: Wrocław, Kierownik Katedry i Zakładu Mikrobiologii Prof. dr hab. Grażyna Gościniak