ĆWICZENIA PRZEPROWADZANE W FORMIE POKAZÓW:

Podobne dokumenty
3. ROZDZIELANIE SUBSTANCJI

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

a) Ćwiczenie praktycze: Sublimacja kofeiny z kawy (teofiliny z herbaty i teobrominy z kakao)

2. Ekstrakcja cieczy = C1 C2

Obserwacje: Wnioski:

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

CHROMATOGRAFIA ADSORPCYJNA I PODZIAŁOWA. 1. Rozdział barwników roślinnych metodą chromatografii adsorpcyjnej (techniką kolumnową)

Zajęcia 10 Kwasy i wodorotlenki

Chemia Organiczna Syntezy

DESTYLACJA JAKO METODA WYODRĘBNIANIA I OCZYSZCZANIA ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI PRZEZ DESTYLACJĘ I EKSTRAKCJĘ

PROCESY JEDNOSTKOWE W TECHNOLOGIACH ŚRODOWISKOWYCH DESTYLACJA

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

Wykonanie destylacji:

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

Rektyfikacja - destylacja wielokrotna. Wpisany przez Administrator czwartek, 05 lipca :01 -

Ściąga eksperta. Mieszaniny. - filmy edukacyjne on-line Strona 1/8. Jak dzielimy substancje chemiczne?

Ćwiczenie 3. Otrzymywanie i badanie właściwości chemicznych alkanów, alkenów, alkinów i arenów.

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

PODSTAWY CHEMII DLA BIOLOGÓW

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

Metody rozdziału substancji, czyli śladami Kopciuszka.

ELEKTROFOREZA. Wykonanie ćwiczenia 8. ELEKTROFOREZA BARWNIKÓW W ŻELU AGAROZOWYM

WYMAGANIA - DESTYLACJA

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

KRYSTALIZACJA JAKO METODA OCZYSZCZANIA I ROZDZIELANIA SUBSTANCJI STAŁYCH

Współczesne metody chromatograficzne: Chromatografia cienkowarstwowa

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ- Kwasy i wodorotlenki

ĆWICZENIE 3: CHROMATOGRAFIA PLANARNA

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

Współczesne metody chromatograficzne : Chromatografia cienkowarstwowa

Ćwiczenie 5 Izolacja tłuszczów z surowców naturalnych

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Strona 1 z 6. Wydział Chemii Uniwersytetu Jagiellońskiego Podstawy Chemii - Laboratorium Rozdzielanie Substancji - Wprowadzenie

Katedra Chemii Organicznej. Przemysłowe Syntezy Związków Organicznych Ćwiczenia Laboratoryjne 10 h (2 x5h) Dr hab.

ZJAWISKA FIZYCZNE I CHEMICZNE

STRUKTURA A WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE I FIZYCZNE PIERWIASTKÓW I ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

Bromowanie alkanów. Andrzej Danel

Izolacja barwników roślinnych.

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

NAUKA O CIEPLE ZESTAW DO ĆWICZEŃ UCZNIOWSKICH

WYZNACZANIE RÓWNOWAŻNIKA CHEMICZNEGO ORAZ MASY ATOMOWEJ MAGNEZU I CYNY

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

żelaza(iii). Obserwacje: Wnioski:

FERMENTACJA ALKOHOLOWA I DESTYLACJA PROSTA

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

VI. Chemia opakowań i odzieży

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego

Zapisz równanie zachodzącej reakcji. Wskaż pierwiastki, związki chemiczne, substraty i produkty reakcji.

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

1 ekwiwalent 1,45 ekwiwalenta 0,6 ekwiwalenta

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Ćwiczenie 1. Reakcje charakterystyczne miedzi(ii)

ROZDZIELANIE I OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI. DESTYLACJA.

REAKCJE UTLENIAJĄCO-REDUKCYJNE

III-B. Chemia w kuchni

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

G-VI. Węgiel i jego związki z wodorem. Pochodne węglowodorów

1 ekwiwalent 2 ekwiwalenty 2 krople

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

ĆWICZENIE 7 Transpiracja

Ćwiczenie 1. Zależność szybkości reakcji chemicznych od stężenia reagujących substancji.

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

Laboratorium. Technologia i Analiza Aromatów Spożywczych

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Ćwiczenie 6 Zastosowanie destylacji z parą wodną oraz ekstrakcji ciecz-ciecz do izolacji eugenolu z goździków Wstęp

G-VII. Substancje o znaczeniu biologicznym

Scenariusz lekcji w technikum z działu Jednofunkcyjne pochodne węglowodorów ( 1 godz.) Temat: Estry pachnąca chemia.

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

STĘŻENIE JONÓW WODOROWYCH. DYSOCJACJA JONOWA. REAKTYWNOŚĆ METALI

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Strona 1 z 6. Wydział Chemii UJ, Chemia medyczna Podstawy Chemii - Laboratorium Rozdzielanie Substancji - Wprowadzenie

Politechnika Rzeszowska Katedra Technologii Tworzyw Sztucznych. Synteza kationomeru poliuretanowego

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Zadanie: 1 (1pkt) Zadanie: 2 (1 pkt)

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

CEL ĆWICZENIA Zapoznanie studentów z chemią 14 grupy pierwiastków układu okresowego

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Adsorpcyjne oczyszczanie gazów z zanieczyszczeń związkami organicznymi

Tytuł: Badanie temperatury topnienia mieszaniny chlorku sodu i wody. Możliwe zastosowanie doświadczenia: Badanie właściwości soli.

ĆWICZENIE V. Metody rozdzielania mieszanin związków organicznych

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

Ćwiczenie A-4 Metody rozdzielania i oczyszczania substancji chemicznych.

Ćwiczenie 4 Porównanie wydajności różnych technik ekstrakcji w układzie ciało stałeciecz. 1. Wstęp

Ćwiczenia laboratoryjne 2

Sprzęt laboratoryjny: Pływająca świeczka Szalka Petriego ( =12cm), zlewka 200cm 3

Kolor i stan skupienia: czerwone ciało stałe. Analiza NMR: Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Transkrypt:

ĆWICZENIA PRZEPROWADZANE W FORMIE POKAZÓW: Wydział Chemii Uniwersytetu Jagiellońskiego 1. Rozdzielanie w układzie ciało stałe/ciało stałe. Sublimacja. Sublimacja stałego jodu z jego mieszaniny z piaskiem. Odczynniki i przybory laboratoryjne: zanieczyszczony jod, zlewka, kolba okrągłodenna, elektryczna płyta grzewcza UWAGA! Ze względu na trujące działanie par jodu doświadczenie należy wykonać pod wyciągiem. Wykonanie ćwiczenia: W suchej czystej zlewce o pojemności ok. 100 cm 3 umieścić ~1 g zanieczyszczonego jodu. Zlewkę z preparatem przykryć kolbą okrągłodenną napełnioną w 3/4 zimną wodą. Zlewkę umieścić na gorącej płycie grzewczej aż do pojawienia się fioletowych par sublimującego jodu. Zmniejszyć temperaturę płyty grzewczej i przeprowadzić sublimację do końca. Po ochłodzeniu zlewki (brak fioletowych par) zebrać ostrożnie czysty jod z powierzchni kolby. Tak otrzymany preparat zawiera jeszcze lotne zanieczyszczenia (głównie zaokludowany Cl2). 2. Rozdzielanie w układzie ciecz/ciecz. Destylacja frakcjonowana. Destylacja wody z wodnego roztworu chlorku miedzi(ii) (CuCl2) Destylacja jest powszechnie stosowaną metodą rozdzielania mieszających się ze sobą cieczy. Przeprowadza się ją w specjalnie przygotowanym zestawie (kolba okrągłodenna, chłodnica, odbieralnik) przedstawionym na Rysunku 1. Ciecz, którą chcemy rozdzielić przez destylację umieszcza się w kolbie (A) zaopatrzonej w tubus boczny i termometr (D) osadzony w korku. Objętość cieczy nie powinna przekraczać połowy pojemności kolby. Zbiornik z alkoholem termometru powinien się znajdować nieco poniżej tubusa bocznego. Tak umieszczony termometr wskazuje temperaturę wrzenia składnika. Do kolby należy wrzucić kamyczki wrzenne (koraliki szklane lub kawałki niepolerowanej porcelany), których obecność zapobiega przegrzaniu cieczy. W czasie wrzenia, pary cieczy kierowane są do chłodnicy (B) przez tubus boczny kolby. W zależności od temperatury wrzenia destylowanej cieczy stosuje się chłodnice z chłodzącym płaszczem wodnym - chłodnice Liebiega (temp. wrzenia poniżej 120 C) lub bez płaszcza chłodzącego - odpowiednio długa rurka szklana (temp. wrzenia powyżej 150 C). W chłodnicy Liebiega strumień chłodzącej wody płynie w kierunku przeciwnym do kierunku ruchu par destylowanej substancji. W przypadku cieczy o niskich temperaturach wrzenia stosuje się chłodnice kulkowe, w których powierzchnia kontaktu par jest znacznie większa niż w poprzednio omówionych typach chłodnic. Pary destylatu ulegają skropleniu w chłodnicy a ciecz spływa do odbieralnika (C). Strona 1 z 7

Destylację można prowadzić pod ciśnieniem atmosferycznym lub pod zmniejszonym ciśnieniem. W przypadku konieczności rozdzielenia mieszaniny kilku cieczy różniących się temperaturami wrzenia i nie tworzących azeotropu stosuje się destylację frakcjonowaną. W tym celu w odbieralniku (C) zbiera się najpierw ciecz o najniższej temperaturze wrzenia, a proces oddestylowania tego składnika obserwuje się poprzez sprawdzanie temperatury (pozostaje stała) na termometrze (D). Gdy temperatura zacznie się podnosić, odbieralnik należy zmienić na nowy, w którym zostanie zgromadzony następny składnik wrzący w wyższej temperaturze. Taki sposób postępowania stosuje się aż do całkowitego rozdzielenia mieszaniny. W ramach pokazu na laboratorium prowadzi się pod ciśnieniem atmosferycznym destylację wodnego roztworu chlorku miedzi(ii). Do chłodzenia używa się chłodnicy Liebiega. Rysunek 1: Schemat do destylacji cieczy wykorzystywany w ramach pokazu podczas kursu podstawy chemii - laboratorium. Kolba zaopatrzona w tubus boczny (A), chłodnica Liebiega (B), odbieralnik (C) oraz termometr (D). 3. Rozdzielanie w układzie ciecz ciecz. Ekstrakcja. Ekstrakcja barwników roślinnych metodą ciągłą w aparacie Soxhleta. Odczynniki i przybory laboratoryjne: zielone części roślin (liście lub łodygi), etanol, aparat Soxhleta, płaszcz grzewczy Wykonanie ćwiczenia: Okrągłodenną kolbę o pojemności 10-25 cm 3 aparatu Soxhleta (Rysunek 2) napełnić etanolem do 2/3 objętości (do kolby należy wrzucić kamyczki wrzenne). Gilzę Strona 2 z 7

wypełnić drobno pokrojonymi liśćmi dowolnej rośliny zielonej (liście świeże lub wysuszone) i umieścić w aparacie Soxhleta. Ćwiczenie można również przeprowadzić bez użycia gilzy. Włączyć przepływ wody w chłodnicy pamiętając, że ma ona wpływać do chłodnicy od dołu. Za pomocą specjalnego elektrycznego płaszcza grzejnego włączyć ogrzewanie kolby. Uwaga! Kolby z etanolem nie wolno ogrzewać płomieniem palnika. Ogrzewany etanol zaczyna wrzeć a jego pary po skropleniu w chłodnicy trafiają do komory z materiałem roślinnym rozpoczyna się ekstrakcja chlorofilu. Gdy poziom alkoholu osiąga wysokość bocznej rurki zostaje on przeciągnięty przez syfon na powrót do kolby okrągłodennej. Jest to pierwszy cykl ekstrakcji ciągłej. Można ją wielokrotnie powtarzać, aż do całkowitego usunięcia chlorofilu z rośliny. Fakt ten objawi się odbarwieniem liści, natomiast etanol będzie miał barwę zieloną. Rysunek 2: Schemat aparatu Soxhleta. Strona 3 z 7

ĆWICZENIA DO SAMODZIELNEGO WYKONANIA: Wydział Chemii Uniwersytetu Jagiellońskiego 4. Chromatografia na pasku i krążku bibuły. Odczynniki i przybory laboratoryjne: Wodne roztwory soli zwierające jony Cu 2+, Ni 2+, Fe 3+, Zn 2+ i Al 3+ oraz roztwory stanowiące mieszaniny soli i zawierające odpowiednio jony Cu 2+, Ni 2+, Fe 3+ (roztwór oznaczony jako a) oraz Zn 2+ i Al 3+ (roztwór b), stężony amoniak, nasycone roztwory alkoholowe dimetyloglioksymu i alizaryny, NH4SCN, eluent (90 % aceton + 5% stężony HCl + 5%H2O), bibuła chromatograficzna Whatmana nr 1, komora chromatograficzna, krystalizator (o średnicy 8-12 cm), szalka Petriego, 2 płytki szklane, nożyczki, rozpylacz. 4.1 Rozdzielanie mieszaniny jonów na pasku bibuły Wykonanie ćwiczenia: Na pasku bibuły filtracyjnej o szerokości 2,5 cm i długości około 20 cm (rzeczywista długość jest określona wysokością komory chromatograficznej) nanieść w odległości ok. 5 cm od końca 1 kroplę roztworu zawierającego jony Cu 2+, Ni 2+, Fe 3+ (roztwór oznaczany w toku ćwiczenia jako roztwór a). Miejsce naniesienia kropli zaznaczyć delikatnie z boku ołówkiem poprzeczną kreską. Bibułę wysuszyć na powietrzu, a następnie zawiesić w komorze tak, aby u dołu znajdował się koniec paska z naniesionymi solami (Rysunek 3). Jeżeli istnieje taka konieczność w jednej komorze należy umieścić dwa paski bibuły, przy czym należy zapewnić ich separację w przestrzeni (np. za pomocą zapałki lub wykałaczki). Dolna krawędź paska bibuły powinna prawie dotykać dna komory. Boczną rurką wlewową, znajdującą się blisko dna komory, wlać eluent. Poziom jego powinien sięgać około 1,5 cm powyżej dna komory (jednocześnie poniżej kropli naniesionego analitu). Przy nalewaniu eluenta należy pamiętać o lekkim uchyleniu górnego korka komory, aby z niej wypuścić powietrze. Po nalaniu zamknąć obydwa wyloty komory doszlifowanymi korkami. Rozwijanie chromatogramu trwa około dwie godziny i jest zakończone wtedy, gdy czoło eluenta podniesie się na pasku bibuły na wysokość ok. 15-20 cm od miejsca naniesienia kropli. Należy wówczas wyjąć pasek z komory, zdjąć go z zaczepów na korku i wysuszyć na powietrzu a następnie wywołać chromatogram. W tym celu wysuszony pasek rozciąć wzdłuż na dwie części i jedną spryskać NH4SCN, a drugą nasycić parami amoniaku w następujący sposób: na dno krystalizatora (φ 8-12 cm) włożyć małą zlewkę (o pojemności maksymalnie 25 cm 3 ) lub niewielką szalkę Petriego z kilkoma kroplami stężonego amoniaku, a następnie umieścić w krystalizatorze bez kontaktu z amoniakiem zwinięty pasek bibuły. Całość należy nakryć dużym szkiełkiem. UWAGA! Czynności wykonać pod wyciągiem. Po kilku minutach nasycania wyjąć pasek z krystalizatora i Strona 4 z 7

niezwłocznie spryskać za pomocą rozdzielacza alkoholowym roztworem dimetyloglioksymu. Wywołany chromatogram wysuszyć na powietrzu. Rysunek 3: Komora do chromatografii bibułowej prowadzonej na pasku bibuły (lewy panel) oraz schemat przygotowania zestawu do chromatografii krążkowej (prawy panel). 4.2. Rozdzielanie mieszaniny jonów na krążku bibuły Wykonanie ćwiczenia Z bibuły chromatograficznej wyciąć kwadrat o wielkości dopasowanej do wykorzystywanej w ćwiczeniu płytki szklanej (Rysunek 3a). W kwadracie należy wykonać dwa równoległe nacięcia (oddalone o ok. 3 mm) i prowadzące od środka jednego z boków kwadratu do jego środka. Pasek ten odgiąć ku dołowi i obciąć na długości ok. 3 cm. Na środek krążka nanieść 1 kroplę analizowanego roztworu b (mieszanina jonów Al 3+ i Zn 2+ ). Po wysuszeniu na powietrzu, krążek bibuły kładzie się na płytce szklanej z otworem tak, aby wycięty pasek bibuły przechodził przez otwór, a następnie nakrywa drugą płytką szklaną (bez otworu) Rysunek 3b. Całość kładzie się na małym krystalizatorze lub szalce Petriego napełnionej eluentem, zanurzając wystający pasek bibuły do tego roztworu. Rozwijanie chromatogramu trwa w zależności od średnicy krążka 20-35 minut i jest zakończone wtedy, gdy czoło eluenta zbliży się na odległość 1-1,5 cm do krawędzi Strona 5 z 7

bibuły. Po zakończeniu rozwijania krążek wyjąć, wysuszyć na powietrzu i wywołać chromatogram. Jako wywoływacza używa się alizaryny po wcześniejszym nasyceniu chromatografu parami amoniaku (nasycanie parami amoniaku przeprowadzić w sposób opisany wcześniej). Wykonanie reakcji charakterystycznych umożliwiających identyfikację jonów (wspólne dla obu rodzajów chromatografii bibułowej i użytych mieszanin jonów) Aby po wywołaniu chromatogramu możliwa była identyfikacja jonów należy wykonać reakcje poszczególnych jonów ze stosowanymi wywoływaczami. W tym celu przygotować cztery paski bibuły filtracyjnej (NIE chromatograficznej) o szerokości ok. 3 cm i długości 25-30 cm, które posłużą do wykonania tzw. ślepych prób. Na pasek 1 nanieść po 1 kropli soli Cu 2+, Ni 2+ i Fe 3+ w odstępach 1-2 cm i poniżej podpisać każdy roztwórr ołówkiem. Tak przygotowany pasek nasycić parami amoniaku (podpisać wywoływacz) i zapisać barwy. Na pasek 2 nanieść po 1 kropli soli Cu 2+, Ni 2+ i Fe 3+, w odstępach 1-2 cm, podpisać ołówkiem. Pasek nasycić parami amoniaku a następnie spryskać dimetyloglioksymem (podpisać wywoływacz) i zapisać barwy. Na pasek 3 nanieść po 1 kropli soli Cu 2+, Ni 2+ i Fe 3+ w odstępach 1-2 cm, podpisać ołówkiem, spryskać NH4SCN (podpisać wywoływacz) i zapisać barwy. Na pasek 4 nanieść po 1 kropli soli Zn 2+ i Al 3+ w odstępie 2 cm, nasycić parami amoniaku i spryskać alizaryną (podpisać wywoływacz) i zapisać barwy. Strona 6 z 7

Strona 7 z 7