ELEKTROFOREZA. Wykonanie ćwiczenia 8. ELEKTROFOREZA BARWNIKÓW W ŻELU AGAROZOWYM

Podobne dokumenty
8 k ELEKTROFOREZA. Właściwości elektryczne koloidów

8 ELEKTROFOREZA. Sprawdzono w roku 2014 przez A.Klimek-Turek. Właściwości elektryczne koloidów

8 ELEKTROFOREZA. Sprawdzono w roku 2017 przez A.Klimek-Turek. Właściwości elektryczne koloidów

( L ) I. Zagadnienia. II. Zadania

bi ~ Zestaw dydal<tyczny umożliwiający przeprowadzenie izolacji genomowego DNA z bakterii EasyLation Genomie DNA INSTRUI<CJA DLA STUDENTÓW

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Miareczkowanie kulometryczne

Gel-Out. 50 izolacji, 250 izolacji. Nr kat , Zestaw do izolacji DNA z żelu agarozowego. wersja 0617

SubDNA. Zestaw do elektroforezy horyzontalnej w żelu agarozowym z chłodzeniem* Instrukcja Obsługi

13. TERMODYNAMIKA WYZNACZANIE ENTALPII REAKCJI ZOBOJĘTNIANIA MOCNEJ ZASADY MOCNYMI KWASAMI I ENTALPII PROCESU ROZPUSZCZANIA SOLI

LABORATORIUM INŻYNIERII MATERIAŁOWEJ

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

Instrukcja obsługi Pehametru FE20 Mettler Toledo

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

Roztwory buforowe modyfikacja wykonania ćwiczenia.

CHROMATOGRAFIA II 18. ANALIZA ILOŚCIOWA METODĄ KALIBRACJI

Bufory ph. Pojemność buforowa i zakres buforowania

Miareczkowanie potencjometryczne

CHROMATOGRAFIA ADSORPCYJNA I PODZIAŁOWA. 1. Rozdział barwników roślinnych metodą chromatografii adsorpcyjnej (techniką kolumnową)

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Zestaw dydaktyczny. genotypowanie szczepów 5taphy/ococcus aureus metodą PCR-RFLP

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

TWARDOŚĆ WODY. Ca(HCO 3 ) HCl = CaCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2. Mg(HCO 3 ) 2 + 2HCl = MgCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Ustalenie wartości ph i kalibracja elektrody ph - Podstawowe zasady pomiaru ph

RÓWNOWAGA CIECZ PARA W UKŁADZIE DWUSKŁADNIKOWYM

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

BADANIE PROSTEGO ZJAWISKA PIEZOELEKTRYCZNEGO POMIAR NAPRĘŻEŃ

Wytrzymałość układów uwarstwionych powietrze - dielektryk stały

Instrukcja obsługi Pehametru Schott Lab 850

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

NAGRZEWANIE ELEKTRODOWE

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

SCENARIUSZ LEKCJI BIOLOGII Z WYKORZYSTANIEM FILMU ELEKTROFOREZA

WYZNACZANIE ZAWARTOŚCI POTASU

INSTRUKCJA INSTALACJI

ZJAWISKO PIEZOELEKTRYCZNE.

PRZETWORNIK PRĄDOWY PP 2000-pH

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

TRANSPORT NIEELEKTROLITÓW PRZEZ BŁONY WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PRZEPUSZCZALNOŚCI

ELEKTROFORETYCZNY ROZDZIAŁ

TaqNova-RED. Polimeraza DNA RP20R, RP100R

Badanie rozkładu pola elektrycznego

AKADEMIA MORSKA KATEDRA NAWIGACJI TECHNICZEJ

Badanie właściwości łuku prądu stałego

Czajnik ze stali nierdzewnej z dzbankiem i ogrzewaczem

ĆWICZENIE 1 i 2 Modyfikacja geu wołowej beta-laktoglobuliny przy użyciu metody Overlap Extension PCR (wydłużania nakładających się odcinków)

Ćwiczenie 1: Wyznaczanie warunków odporności, korozji i pasywności metali

ĆWICZENIE 3 DGGE- ELEKTROFOREZA W ŻELU Z GRADIENTEM CZYNNIKA DENATURUJĄCEGO

Potencjometryczna metoda oznaczania chlorków w wodach i ściekach z zastosowaniem elektrody jonoselektywnej

DIPOLOWY MODEL SERCA

LABORATORIUM INŻYNIERII MATERIAŁOWEJ

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

ĆWICZENIE 3: CHROMATOGRAFIA PLANARNA

Badanie wyładowań ślizgowych

Współczesne metody chromatograficzne : Chromatografia cienkowarstwowa

Badanie wyładowań ślizgowych

Metody badania ekspresji genów

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

EFEKT FOTOWOLTAICZNY OGNIWO SŁONECZNE

Modyfikacja genu wołowej beta-laktoglobuliny przy użyciu metody Overlap Extension PCR (wydłużania nakładających się odcinków)

SEDYMENTACJA ODŚRODKOWA

Współczesne metody chromatograficzne: Chromatografia cienkowarstwowa

ĆWICZENIE 5. KOPOLIMERYZACJA STYRENU Z BEZWODNIKIEM MALEINOWYM (polimeryzacja w roztworze)

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Uwaga. Łącząc układ pomiarowy należy pamiętać o zachowaniu zgodności biegunów napięcia z generatora i zacisków na makiecie przetwornika.

LABORATORIUM INŻYNIERII MATERIAŁOWEJ

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie względnej przenikalności elektrycznej kilku związków organicznych

GRAWITACYJNE ZAGĘSZCZANIE OSADÓW

Ćwiczenie nr 31: Modelowanie pola elektrycznego

Ćwiczenie 4 Badanie ładowania i rozładowania kondensatora

Porównanie precyzji i dokładności dwóch metod oznaczania stężenia HCl

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie ciepła właściwego cieczy metodą kalorymetryczną

KOROZJA. Korozja kontaktowa z depolaryzacja tlenową 1

Miernik chloru Extech CL200

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

Katedra Energetyki. Laboratorium Podstaw Elektrotechniki i Elektroniki

BADANIE EFEKTU HALLA. Instrukcja wykonawcza

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

ELEKTRODA PH. Opis D031. Ryc. 1. Elektroda ph

LABORATORIUM Z PODSTAW BIOFIZYKI ĆWICZENIE NR 4 1. CEL ĆWICZENIA

OTRZYMYWANIE EMULSJI I BADANIE ICH WŁAŚCIWOŚCI

WYZNACZANIE CHARAKTERYSTYK ELEKTRYCZNYCH ŹRÓDEŁ ŚWIATŁA

SPRZĘT I APARATURA LABORATORYJNA. Aparaty do elektroforezy poziomej serii ASA: SYSTEMY DO ELEKTROFOREZY

BADANIE PROSTEGO I ODWROTNEGO ZJAWISKA PIEZOELEKTRYCZNEGO I JEGO ZASTOSOWANIA

Instrukcja do ćwiczenia laboratoryjnego nr 9

Wyznaczanie parametrów równania Tafela w katodowym wydzielaniu metali na elektrodzie platynowej

Sprawa Nr: RAP/ 72 /2010 PARAMATRY TECHNICZNE PRZEDMIOTU ZAMÓWIENIA. Nazwa i adres Wykonawcy:...

1 Ćwiczenia wprowadzające

Ćwiczenie 24 Temat: Układy bramek logicznych pomiar napięcia i prądu. Cel ćwiczenia

Ćwiczenie nr 2. Pomiar energii promieniowania gamma metodą absorpcji

Ćwiczenie 16. Temat: Wzmacniacz w układzie Darlingtona. Cel ćwiczenia

Opis Przedmiotu Zamówienia-minimalne wymagania techniczne. Ilość szt. 1 Producent/Model

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

INSTRUKCJA OBSŁUGI APARATU DO POMIARU TEMPERATURY TOPNIENIA STUART SMP 30

KATEDRA INŻYNIERII CHEMICZNEJ I PROCESOWEJ INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH LABORATORIUM INŻYNIERII CHEMICZNEJ, PROCESOWEJ I BIOPROCESOWEJ

Transkrypt:

Wykonanie ćwiczenia 8. ELEKTROFOREZA BARWNIKÓW W ŻELU AGAROZOWYM Zadania: 1. Wykonać elektroforezę poziomą wybranych barwników w żelu agarozowym przy trzech różnych wartościach ph roztworów buforowych. 2. Dokonać analizy otrzymanych wyników z uwzględnieniem właściwości strukturalnych badanych barwników i ph roztworów buforowych zastosowanych do elektroforezy. 3. Wskazać, które składniki znajdowały się w próbce stanowiącej mieszaninę barwników. Wykonanie ćwiczenia: Budowa zestawu do elektroforezy Doświadczenia wykonuje się w komorze do elektroforezy poziomej, której schematyczny wygląd w przekroju wzdłużnym jest przedstawiony na rys. 6. Na rysunku uwidoczniony jest również zasilacz prądu stałego. Pokrywa komory Żel agarozowy + Zasilacz Obudowa komory Elektroda Roztwór buforowy Elektroda Rys. 6. Schematyczny wygląd przekroju wzdłużnego komory do elektroforezy poziomej. Wygląd przestrzenny komory jest przedstawiony na rysunku 7. Na rysunku nie zostały uwidocznione elektrody, pokrywa komory i roztwory buforowe. Natomiast uwidocznione są warstwy żelu agarozowego w trzech segmentach komory. 1 segment Warstwa żelu 2 segment Wgłębienia elektrodowe 1 segmentu Wgłębienia elektrodowe 2 segmentu 3 segment Wgłębienia elektrodowe 3 segmentu Rys. 7. Widok przestrzenny komory do elektroforezy poziomej (bez pokrywy i elektrod). 1

Jak widać na rys. 6, zestaw do elektroforezy składa się z komory z przykrywą i zasilacza prądu stałego. W komorze, po obu jej stronach, są umieszczone elektrody. Aby przeprowadzić proces elektroforezy w komorze umieszcza się warstwę żelu agarozowego i nalewa roztwór buforowy do wgłębień z elektrodami, tak jak na rys. 6. Włączenie napięcia polaryzującego z zasilacza, w celu prowadzenia procesu elektroforezy, dokonuje się po uprzednim naniesieniu próbek rozdzielanych substancji na warstwę żelu agarozowego. Aparat do elektroforezy używany podczas doświadczeń w laboratorium chemii fizycznej został wyposażony w trzy-segmentową komorę, która pozwala na przeprowadzenie procesu elektroforezy w żelu agarozowym w trzech różnych roztworach buforowych, np. o różnych ph, jednocześnie. Na rys. 7, przedstawiającym widok przestrzenny komory, są widoczne te trzy segmenty z warstwami żelu w każdym z nich. Przygotowanie żelu agarozowego 1. Odważyć 1,11 g agarozy, wsypać do zlewki o pojemności 250 ml i dodać 110 cm 3 roztworu buforowego o ph = 3,6. Podobnie należy przygotować dwa roztwory buforowe agarozy w buforach o ph = 6,0 i ph = 10. 2. Każdy z otrzymanych trzech roztworów agarozy należy doprowadzić do zagotowania na płycie grzejnej i po lekkim ostudzeniu wlać kolejno do trzech segmentów komory. 3. Przed wlaniem roztworów agarozy do każdego segmentu komory należy po obu ich (segmentów) stronach przykleić taśmę samoprzylepną. Rys. 8 prezentuje sposób przyklejenia taśmy w segmentach komory. Należy zwrócić uwagę na to, by powierzchnie, do których będą przyklejane paski taśmy, były suche i czyste. Dzięki temu, po przyklejeniu taśmy samoprzylepnej, zostaną utworzone korytka w każdym z trzech segmentów komory. Z wprowadzonych roztworów agarozy do korytek, po ostygnięciu do temperatury pokojowej, utworzą się warstwy żelu agarozowego o grubości 5 6 mm. Taśma samoprzylepn a 1 segment 2 segment 3 segment Rys. 8. Prezentacja sposobu przyklejenia taśmy samoprzylepnej w celu utworzenia korytek na roztwory agarozy. 2

Agaroza w roztw. buforowym o ph = 3,6 Agaroza w roztw. buforowym o ph = 6,0 1 segment 2 segment 3 segment Grzebień Agaroza w roztw. buforowym o ph = 10 Rys. 9. Widok komory z trzema roztworami agarozy w korytkach utworzonych z pasków taśmy samoprzylepnej i ścianek komory oraz grzebieniem plastikowym służącym do wykonania wgłębień na próbki badanych barwników w warstwie żelu. 4. Przed nalaniem roztworów agarozy do korytek należy w nich umieścić grzebień plastikowy, w celu utworzenia sześciu wgłębień w środkowej części warstwy żelu, rys. 9. Do wgłębień tych zostaną wprowadzone próbki badanych barwników w kolejnym etapie wykonywania doświadczenia. Po ostygnięciu roztworów agarozy należy usunąć taśmy samoprzylepne. Wypełnienie komory roztworami buforowymi 5. Po usunięciu taśm samoprzylepnych nalać ostrożnie do wgłębień komory z elektrodami odpowiednie roztwory buforowe, tak by poziom roztworu minimalnie przykrywał (ok. 1 mm) warstwę żelu w każdym segmencie wystarcza 380 ml roztworu buforowego do dwóch wgłębień elektrodowych jednego segmentu. Należy pamiętać aby do wgłębień elektrodowych 1 segmentu nalać roztwór buforowy o ph = 3,6, zgodnym (takim samym) z ph roztworu stosowanego do przygotowania warstwy żelu w tym segmencie ( ph = 3,6). Analogicznie należy wypełnić roztworami buforowymi o odpowiednim ph (6,0 i 10,0) wgłębienia elektrodowe 2 segmentu i 3 segmentu. 6. Usunąć grzebień. Nanoszenie próbek barwników na żel agarozowy 7. Do utworzonych sześciu wgłębień w środkowej części każdej warstwy żelu agarozowego wprowadzić kolejno, za pomocą strzykawki, niewielkie ilości sześciu roztworów barwników. Przy czym do pięciu wgłębień nanieść roztwory pojedynczych barwników, a do szóstego wgłębienia roztwór mieszaniny barwników wskazany przez asystenta. Podczas nanoszenia należy zwrócić uwagę na to, by roztwór barwnika przykrył całą powierzchnię dna wgłębienia na wysokość około 1 mm. Nanoszone roztwory barwników to: 1. Zieleń malachitowa 2. Rodamina 6G 3. PAR, 4-(2-pirydyloazo)rezorcynol 4. Czerwień Kongo 5. Azorubina 3

Wzory strukturalne badanych barwników są umieszczone na końcu niniejszego opracowania. Rys. 10 pokazuje przykładowe rozmieszczenie wgłębień w warstwie żelu. Można powiedzieć, że wgłębienia te stanowią linię startową dla badanych substancji. Roztwory pojedynczych barwników Roztwór mieszaniny barwników Rys. 10. Warstwa żelu agarozowego z jednego segmentu z sześcioma wgłębieniami na próbki pojedynczych barwników oraz ich mieszaniny. Zapoczątkowanie procesu elektroforezy i jego przebieg 8. Przykryć komorę pokrywą i podłączyć przewodami elektrycznymi komorę do zasilacza. Włączyć wtyczkę przewodu zasilającego do gniazda sieciowego. Włączyć napięcie polaryzujące o wartości 130 V i prowadzić proces elektroforezy w ciągu jednej godziny. W tym czasie obserwować zmiany zachodzące w komorze do elektroforezy i notować co 10 min wartości natężenia prądu. 9. Wyłączyć zasilacz po 1 godz. Wyjąć wtyczkę zasilacza z gniada sieciowego. Zdjąć pokrywę komory. Zmierzyć dystans migracji stref (plamek) poszczególnych barwników i dane te zamieścić w tabelach poniżej. 10. Po zakończeniu pomiarów przenieść za pomocą strzykawki o pojemności 100 ml roztwory buforowe z wgłębień elektrodowych do odpowiednich butelek. 11. Usunąć zużyty żel agarozowy z komory, a komorę umyć i wytrzeć do sucha ręcznikiem papierowym. 12. Uzyskane dane przedstawić w tabelach. 4

Tabela 1. Dystanse migracji (S) stref (plamek) barwników podczas elektroforezy w żelu aga rozowym z roztworami buforowymi o różnych wartościach ph, napięcie polaryzu jące. V, czas trwania elektroforezy. min. Substancja Dystans migracji (S) w mm ph = 3,6 Dystans migracji (S) w mm ph = 6,0 Dystans migracji (S) w mm ph = 10 Zieleń malachitowa Rodamina 6G PAR Czerwień Kongo Azorubina Mieszanina barwników Składnik 1 Składnik 2 Tabela 2. Wartości natężenia prądu i czasu prowadzenia procesu elektroforezy. Czas (t)/ min Natężenie prądu (I)/ ma 0 (start) 10 20 30 40 50 60 5

Wzory strukturalne barwników stosowanych jako substancje testowe w procesie elektroforezy: 6

8. ELEKTROFOREZA (schemat formularza do opracowania wyników ćwiczenia) Data wykonania ćwiczenia: Imię i nazwisko studenta: GS Imię i nazwisko asystenta: Zadania do wykonania: Tabela 1. Wykres 1. Zależność dystansu migracji poszczególnych stref barwników od ph roztworu buforowego: S = f (ph) Tabela 2. Wykres 2. Wykres natężenia prądu od czasu elektroforezy: I = f(t) Omówienie wyników i wnioski: - wyciągnąć wnioski dotyczące powiązania wartości dystansu migracji poszczególnych barwników z ich strukturą chemiczną i ph buforu. Odpowiedzieć na pytania: - które składniki znajdowały się w próbce stanowiącej mieszaninę barwników? - jakie efekty można zaobserwować podczas procesu elektroforezy? - jakie czynniki mogły wpłynąć na zmianę natężenia prądu podczas procesu elektroforezy? Podpis studenta: Podpis opiekuna: 7