Chemia organiczna. Instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla Biotechnologii (I rok)

Podobne dokumenty
Chemia organiczna. Instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla Biotechnologii (I rok)

[1 a] Acetanilid LISTA PREPARATÓW. Odczynniki: anilina 15 g lodowaty kwas octowy 15 ml pył cynkowy 0.1 g węgiel aktywny 0.2 g

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 2

Chemia Organiczna Syntezy

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 1

Zaawansowane oczyszczanie

CHEMIA SRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW

Oranż β-naftolu; C 16 H 10 N 2 Na 2 O 4 S, M = 372,32 g/mol; proszek lub

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

Zaawansowane oczyszczanie

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH: SULFONOWANIE ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

Katedra Chemii Organicznej. Przemysłowe Syntezy Związków Organicznych Ćwiczenia Laboratoryjne 10 h (2 x5h) Dr hab.

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

BENZOESAN FENYLU. Odczynniki Fenol 1,2g 0,013mola Chlorek benzoilu 2,2ml 0,019mola Wodorotlenek sodu 10ml - 2-Propanol 8ml -

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

PREPARATYKA NIEORGANICZNA. Przykład 1 Ile kilogramów siarczanu(vi) żelaza (II) można otrzymać z 336 kg metalicznego żelaza?

Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Fluorowcowanie część teoretyczna 2. F1 2,4,6-tribromoanilina 4. F2 2,4,6-tribromofenol 6

ĆWICZENIE III. Reakcje charakterystyczne na węglowodory (alifatyczne, aromatyczne), alkohole, aldehydy i ketony

Synteza eteru allilowo-cykloheksylowego w reakcji alkilowania cykloheksanolu bromkiem allilu w warunkach PTC.

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

MIKROANALIZY WĘGLOWODORY. W1 Utlenianie węglowodorów nadmanganianem potasu w środowisku kwaśnym (w temp. pokojowej) RÓWNANIA REAKCJI: OBSERWACJE:

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

Reakcje związków karbonylowych. Maria Burgieł R R C O. C O + Nu E C

Piotr Chojnacki 1. Cel: Celem ćwiczenia jest wykrycie jonu Cl -- za pomocą reakcji charakterystycznych.

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

1 ekwiwalent 1,45 ekwiwalenta 0,6 ekwiwalenta

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Ćwiczenie 5 Izolacja tłuszczów z surowców naturalnych

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

ĆWICZENIE 5. KOPOLIMERYZACJA STYRENU Z BEZWODNIKIEM MALEINOWYM (polimeryzacja w roztworze)

V. Węglowodory. Hydroksylowe pochodne węglowodorów alkohole i fenole

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

ZJAWISKA FIZYCZNE I CHEMICZNE

Synteza Cu(CH 3 COO) 2 H 2 O oraz (NH 4 ) 2 Ni(SO 4 ) 2 6H 2 O

Substytucja nukleofilowa

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

Ćwiczenie 3. Otrzymywanie i badanie właściwości chemicznych alkanów, alkenów, alkinów i arenów.

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

1 ekwiwalent 4 ekwiwalenty 5 ekwiwalentów

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

ĆWICZENIE NR 1 Analiza ilościowa miareczkowanie zasady kwasem.

STRUKTURA A WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE I FIZYCZNE PIERWIASTKÓW I ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

1 ekwiwalent 2 ekwiwalenty 2 krople

REAKCJE W CHEMII ORGANICZNEJ

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Estryfikacja. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

REAKCJE PROBÓWKOWE 5. Aminy, aminokwasy, białka

fenol ninhydryna difenyloamina kwas octowy Określ ph amin: n-butyloamina dietyloamina difenyloamina anilina N,N-dimetyloanilina

WOJEWÓDZKI KONKURS PRZEDMIOTOWY Z CHEMII DLA UCZNIÓW GIMNAZJÓW - rok szkolny 2016/2017 eliminacje rejonowe

Po wykonaniu każdego ćwiczenia należy zanotować spostrzeżenia i wnioski dotyczące przebiegu reakcji.

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

Utlenianie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. U1 Kwas benzoesowy z benzaldehydu 5. U2 Kwas benzoesowy z chlorku benzylu 6

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Ćwiczenie 50: Określanie tożsamości jonów (Farmakopea VII-IX ( )).

REAKCJE UTLENIAJĄCO-REDUKCYJNE

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

Ćwiczenie 1. Zależność szybkości reakcji chemicznych od stężenia reagujących substancji.

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

stożek tulejka płaskie stożkowe kuliste Nominalna długość powierzchni szlifowanej 14/ / /32 29.

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Nitrowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Nitrowanie część teoretyczna 2. N1 p-nitroacetanilid 4. N2 p-bromonitrobenzen 5

CHEMIA LEKÓW ORGANICZNYCH INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH

Zapisz równanie zachodzącej reakcji. Wskaż pierwiastki, związki chemiczne, substraty i produkty reakcji.

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI PRZEZ DESTYLACJĘ I EKSTRAKCJĘ

CHEMIA LEKÓW ORGANICZNYCH INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH

Celem ćwiczenia jest pokazanie, że alkohole I rzędowe utleniają się do aldehydów, a te z kolei do kwasów karboksylowych

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Ćwiczenia laboratoryjne 2

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

Zakład Chemii Organicznej: kopiowanie zabronione 1/5

Ćwiczenie 1. Reakcje charakterystyczne kadmu(ii)

G-VI. Węgiel i jego związki z wodorem. Pochodne węglowodorów

Protokół: Reakcje charakterystyczne cukrowców

Utlenianie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Utlenianie część teoretyczna 2. U1 Kwas benzoesowy z benzaldehydu 4

1,2,3,4,6-PENTA-O-ACETYLO- -D-GLUKOPIRANOZA

MODUŁ. Chemia leko w

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Kondensacja. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Ćwiczenia nr 2: Stężenia

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Sulfonowanie część teoretyczna 2

Współczesne metody chromatograficzne: Chromatografia cienkowarstwowa

REAKCJE PROBÓWKOWE 3. Aldehydy, ketony, cukry*

Transkrypt:

hemia organiczna Instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla Biotechnologii (I rok) Zakład hemii rganicznej Wydział hemii Uniwersytet Wrocławski 2011

Lista wykonywanych ćwiczeń: [1a] Destylacja frakcyjna...3 A) bez deflegmatora...3 B) z deflegmatorem...3 [1b] Destylacja z parą wodną...4 [2] Substytucja elektrofilowa ćwiczenia probówkowe...5 [3a] trzymywanie barwników azowych...6 [3b] Rozróżnianie rzędowości amin...7 [4a] Kwas acetylosalicylowy (aspiryna)...8 [4b] p-acetaminofenol...10 [5a] Azotany(V) celulozy...11 [6a] Dibenzylidenoaceton...12 [6b] Reakcje związków karbonylowych ćwiczenia probówkowe...13 [7a] (±)-Menton...14 [7b] Reakcje redox ćwiczenia probówkowe...15 [8] Reakcja annizzaro dla aldehydu benzoesowego...16 2

1 1 1 [1a] Destylacja frakcyjna Do okrągłodennej kolby destylacyjnej o pojemności 200 ml wlać 100 ml otrzymanej mieszaniny toluenu i acetonu, wrzucić kamyczek wrzenny. Zmontować aparaturę do destylacji cieczy. dczynniki: mieszanina toluenu i acetonu 100 ml A) bez deflegmatora Destylat należy zbierać do cylindra miarowego. o 2 ml otrzymanego destylatu notować temperaturę wrzenia. Pozostałość po destylacji (tzw. pogon) pozostawia się w kolbie destylacyjnej. B) z deflegmatorem Destylat z części A) zlać z powrotem do kolby destylacyjnej i powtórzyć doświadczenie jak w punkcie A) rozdzielając poszczególne frakcje - do momentu ustalenia się temperatury zbierać przedgon, a następnie frakcję pierwszego składnika. Po przedestylowaniu składnika bardziej lotnego temperatura będzie się wyraźnie zmieniać. Zbiera się wtedy frakcję pośrednią, a po ponownym ustaleniu temperatury wrzenia, frakcję drugiego składnika. Dla czystych składników określić współczynniki załamania światła. Sporządzić wykres zależności między ilością destylatu (oś X) i temperaturą wrzenia (oś Y) dla obydwu destylacji. Na podstawie wykresu określić (objętościowo) skład otrzymanej mieszaniny. Porównać sprawność aparatury do destylacji z deflegmatorem i bez. Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! 3 2 5 6 4 7 8 1 1 0 9 5 6 4 7 3 8 2 9 1 10 3

[1b] Destylacja z parą wodną Zmontować zestaw do destylacji z para wodną. 50 g aniliny umieścić w kolbie okrągłodennej, dodać ok. 50 ml wody oraz kilka granulek NaH i destylować z parą wodną do momentu, gdy destylat będzie klarowny. Destylat przenieść do rozdzielacza, wysycić solą kuchenną i oddzielić warstwę aniliny. Warstwę wodną ekstrahować 3-krotnie eterem dietylowym (3 razy po 30 ml). Połączone frakcje organiczne suszyć przy pomocy bezwodnego MgS0 4, a następnie odsączyć środek suszący. Pozostałość destylować zbierając frakcję wrzącą w temp 184-186. znaczyć wydajność procesu, zmierzyć współczynnik załamania światła. dczynniki: anilina 50 g eter dietylowy 90 ml Nal MgS 4 H 2 5 6 4 7 3 8 2 9 1 1 10 5 6 4 7 3 8 2 9 1 10 Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! 4

[2] Substytucja elektrofilowa ćwiczenia probówkowe a) koło 1 ml każdego z węglowodorów (n-heksan, cykloheksen, benzen, toluen) ostrożnie zmieszać w osobnych probówkach z 5-6-oma kroplami stężonego kwasu azotowego(v). bserwować zmiany zachodzące w probówkach. Wyjaśnić różnice w przebiegu reakcji. W razie braku oznak reakcji (w przypadku benzenu i n-heksanu), do mieszaniny dodać kilka kropli stężonego kwasu siarkowego i wstrząsać. Wyjaśnić obserwowane zjawiska i napisać równania reakcji. Jaką rolę pełni tutaj kwas siarkowy? b) Do suchej probówki (bardzo ważne: sucha probówka!) wprowadzamy około 2 ml bezwodnego chloroformu lub czterochlorku węgla, a następnie rozpuszczamy w nim około 0.1 g lub 1 kroplę badanego węglowodoru np. n-heksanu, benzenu, chlorobenzenu, naftalenu oraz antracenu. Do otrzymanego roztworu dodajemy około 0,5-1 g sproszkowanego bezwodnego chlorku glinowego, tak aby część proszku zatrzymała się na ściankach probówki. Teraz zwilżamy go ostrożnie naszym roztworem. Zaobserwować zachodzące zmiany i spróbować je wyjaśnić. c) Do trzech probówek wlać po około 1 ml 1 4, a następnie dodać: a) 2 ml cykloheksenu, b) kilka kryształków fenolu, c) 2 ml toluenu. dczynniki: brom HN 3 stęż. l 4 Hl 3 All 3 bezw. cykloheksen fenol toluen n-heksan benzen chlorobenzen naftalen antracen Do każdej z probówek dodać po kilka kropli Br 2. Zawartość probówek wstrząsać przez chwilę Zaobserwować zmiany Do produktów reakcji dodać nieco wody destylowanej, wstrząsnąć i sprawdzić odczyn Wyjaśnić różnice i napisać reakcje chemiczne. Brom jest silnie żrący i trujący! Fenol ma własności parzące, działa szkodliwie na skórę. W razie poparzenia skórę należy zmywać wodą wapienną. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 5

[3a] trzymywanie barwników azowych Roztwór soli diazoniowej koło 0.1 g każdej z badanych amin rozpuścić osobno w 5 ml 10% Hl, ochłodzić wodą z lodem do 0, po czym dodawać kroplami roztwór 1 g NaN 2 w 5 ml H 2 do dodatniej próby z papierkiem jodoskrobiowym (niebieskie zabarwienie papierka). Roztwór fenolu dczynniki: anilina kwas p-aminobezoesowy kwas sulfanilowy 10% Hl azotan(iii) sodu fenol 1-naftol 2-naftol 10% NaH 0.1 g 0.1 g 0.1 g 5 ml 1 g 0.1 g 0.1 g 0.1 g 5 ml koło 0.1 g każdego z fenoli rozpuścić osobno w 5 ml 10% NaH. Sprzęganie na bibule Na krążek bibuły nanieść po jednej kropli alkalicznego roztworu każdego z fenoli. Krople nanosić na okręgu o promieniu około 2 cm. W środek okręgu nanieść roztwór soli diazoniowej i obserwować zjawiska na granicy roztworu soli diazoniowej oraz fenolu. Sprzęganie w probówce Do trzech probówek dodać po dwie krople alkalicznego roztworu danego fenolu. Do każdej z nich dodać po dwie krople roztworu soli diazoniowej. Zawartość probówek rozcieńczyć 5 ml wody. Roztwór z każdej probówki podzielić na dwie części i do jednej połowy dodać roztworu Hl do uzyskania odczynu kwaśnego, a do drugiej roztworu NaH do uzyskania odczynu alkalicznego. bserwować zmiany barwy. Ćwiczenie należy przeprowadzić z następującymi związkami: fenole 1-naftol, 2-naftol, fenol; aminy anilina, kwas p-aminobenzoesowy, kwas sulfanilowy. kreślić barwy i rozpuszczalność powstających barwników w kwaśnym i zasadowym środowisku, napisać równania reakcji chemicznych, wyjaśnić własności indykatorowe tych związków. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 6

[3b] Rozróżnianie rzędowości amin 1 Reakcje amin alifatycznych z kwasem azotawym a) Do 3 kropli I-rzędowej aminy alifatycznej (np.: n-butyloaminy) umieszczonych w probówce, dodać 0.5 ml 10% roztworu kwasu solnego i 3 krople 10% roztworu azotanu(iii) sodu. bserwować postęp reakcji i napisać jej równanie. b) Do probówki z 0.5 ml wodnego roztworu II-rzędowej aminy alifatycznej (np. dietyloaminy) dodać 0.5 ml kwasu octowego i kilka kropli 10% roztworu azotanu(iii) sodu. Tworzy się żółta, oleista N-nitrozoamina. Napisz równanie reakcji. dczynniki: n-butyloamina dietyloamina difenyloamina N,N-dimetyloanilina 10% kwas solny Hl stęż azotan(iii) sodu azotan(v) sodu kwas octowy. 20% NaH 2 Reakcje amin aromatycznych z kwasem azotawym a) Szczyptę difenyloaminy (na czubek szpatułki) rozpuścić w probówce w 5 ml wolnego od azotanów stężonego kwasu siarkowego. Roztwór podzielić na dwie probówki. Małe kryształki azotanu(v) sodu oraz azotanu(iii) sodu rozpuścić w dwu probówkach w 10 ml wody destylowanej. Do roztworu z difenyloaminą dodawać kroplami roztwór azotanu(v), a do drugiej próbki azotanu(iii) sodu, starannie obserwując zachodzące zjawiska. Napisać równania reakcji. b) Do probówki z 0.5 ml III-rzędowej aminy (N,N-dimetyloaniliny) dodać 3 ml stężonego kwasu solnego i 2 ml wody. Roztwór ochłodzić w łaźni lodowej i dodać małymi porcjami, ciągle mieszając, 10% roztwór azotanu(iii) sodu do trwałego jego nadmiaru (papierek jodoskrobiowy powinien być niebieski). dstawić mieszaninę w lodzie do odstania, ostrożnie zdekantować ciecz znad osadu. sad przemyć małą porcją lodowatej wody i ponownie ją zdekantować. Do osadu dodać 20% roztwór zasady sodowej. Zanotować obserwacje zapisać równania reakcji. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 7

[4a] Kwas acetylosalicylowy (aspiryna) H H H H 3 H H 3 2 S 4 + + H 3 H 3 kwas acetylosalicylowy (aspiryna); rozkład 129 133 H W małej kolbie stożkowej 200 250 ml dczynniki: z szeroką szyją umieszcza się 6 g bezwodnego kwas salicylowy 6 g kwasu salicylowego, 8.5 ml bezwodnika bezwodnik octowy 9.5 g (8.5 ml) octowego i dodaje 0.5 ml stężonego kwasu kwas siarkowy 0.5 ml siarkowego, mieszając przy tym starannie zawartość kolby ruchem wirowym. Następnie mieszaninę ogrzewa się na łaźni wodnej do około 50 60 w ciągu 20 minut, mieszając ją jednocześnie za pomocą termometru (ostrożnie, termometry są dość kruche). Mieszaninę pozostawia się do ostygnięcia, wstrząsając ją co pewien czas, dodaje 150 ml wody, starannie miesza i sączy pod zmniejszonym ciśnieniem przez lejek Büchnera. czyszczanie i analiza: W trzech probówkach zawierających po 5 ml wody rozpuścić parę kryształków 1. fenolu 2. kwasu salicylowego 3. produktu reakcji Do każdej probówki dodać 1% roztworu chlorku żelazowego. Fe(III) tworzy z fenolami kompleksy o barwie od czerwonej do fioletowej w zależności od użytego fenolu. bserwować ewentualne zabarwienie roztworów. Surowy produkt przenieść do zlewki o pojemności 250 ml i dodać 50 ml nasyconego roztworu Na 2 0 3. Mieszać aż do ustania reakcji z węglanem. Alkaliczny roztwór przesączyć przez lejek Büchnera. Powinno się w ten sposób usunąć większość polimeru, który może być produktem ubocznym reakcji. Przemyć zlewkę, w której prowadzona była reakcja oraz lejek 15 ml wody. Połączyć z głównym przesączem. W zlewce o pojemności 250 ml przygotować roztwór 9 ml stężonego kwasu solnego w 30 ml wody i ostrożnie wlać do niego otrzymany uprzednio przesącz. Powinna wytrącić się aspiryna. Jeśli osad nie wypada, należy sprawdzić, czy roztwór ma odczyn kwaśny. Jeśli nie, należy dodać roztworu kwasu solnego aż do uzyskania kwaśnego odczynu. Uzyskaną 8

mieszaninę schłodzić na łaźni wodno-lodowej i przesączyć przez lejek Büchnera. trzymany produkt, po przemyciu zimną wodą, porządnie odcisnąć. Pozostawić do wysuszenia na uprzednio zważonym szkiełku zegarkowym. Po wysuszeniu produkt zważyć, obliczyć wydajność reakcji, zmierzyć temperaturę topnienia. Przeprowadzić próbę z Fe1 3 na obecność nieprzereagowanego kwasu salicylowego. Aby otrzymany przez wytrącenie produkt otrzymać w formie krystalicznej, należy przeprowadzić krystalizację aspiryny z octanu etylu. W zlewce (25 ml) rozpuścić otrzymany produkt w minimalnej ilości octanu etylu (ok. 5-7 ml) ogrzewając na łaźni wodnej. Po pozostawieniu roztworu do oziębienia, aspiryna powinna krystalizować. Krystalizację można też prowadzić z 10% r-ru kwasu octowego. W razie trudności należy roztwór schłodzić w łaźni lodowej i pocierać ścianki bagietką. trzymane kryształy przesączyć na lejku Büchnera, wysuszyć, zważyć. bliczyć wydajność krystalizacji i zmierzyć temperaturę topnienia Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 9

[4b] p-acetaminofenol NH 2 HN H 3 + H 3 H 3 + H 3 H H Umieścić 6 g p-aminofenolu oraz 100 ml wody w zlewce o pojemności 250 ml. Dodać 4 ml stężonego kwasu dczynniki: p-aminofenol 6 g solnego i mieszać aż do rozpuszczenia aminy. Jeśli amina bezwodnik octowy 8.5 ml nie rozpuści się całkowicie, należy dodać kroplami nieco octan sodu 10.5 g więcej kwasu. Dodać do roztworu łyżeczkę węgla aktywnego i ogrzewać na wrzącej łaźni wodnej przez 5 minut w celu usunięcia barwnych zanieczyszczeń. Usunąć węgiel aktywny przez sączenie na gęstym sączku karbowanym. Przygotować roztwór 10.5 g octanu sodu w 32 ml wody. Jeśli nie wszystko się rozpuści, przesączyć przez sączek karbowany. Roztwór p-aminofenolu przenieść do zlewki o pojemności 250 ml i ogrzewać na wrzącej łaźni wodnej. Dodać roztwór buforu octanowego. Natychmiast dodać bezwodnik octowy i mieszając ogrzewać jeszcze przez około 20 minut. Schłodzić mieszaninę reakcyjną przez zanurzenie zlewki w łaźni wodno-lodowej. Mieszać aż do rozpoczęcia krystalizacji p-acetaminofenolu. Zlewkę pozostawić w łaźni przez około 1 godzinę. trzymane kryształy przesączyć na lejku Büchnera, przemyć zimną wodą i odcisnąć. Pozostawić do wysuszenia na uprzednio zważonym szkiełku zegarkowym. H Po wysuszeniu produkt zważyć, obliczyć wydajność reakcji, zmierzyć temperaturę topnienia. Przeprowadzić próbę na obecność grupy aminowej w produkcie W tym celu w probówkach umieścić: w pierwszej p-aminofenol, a w drugiej produkt i dodać do nich roztworu ninhydryny, w razie potrzeby ogrzać (ninhydryna tworzy ze związkami posiadającymi wolną grupę aminową związki o różowo-fioletowej barwie). trzymany surowy produkt rozpuścić na gorąco w minimalnej ilości wody (w zlewce o pojemności 250 ml). Roztwór pozostawić do powolnego schłodzenia. Gdy pojawią się pierwsze kryształy, zlewkę zanurzyć w łaźni wodno-lodowej na około 15 minut. Uzyskane kryształy odsączyć na lejku Büchnera, wysuszyć, zważyć, obliczyć wydajność i sprawdzić ich temperaturę topnienia. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 10

[5a] Azotany(V) celulozy Przygotować mieszaninę nitrującą: Do kolby stożkowej z 25 ml stężonego kwasu azotowego dczynniki: oziębionego i umieszczonego w łaźni lodowej dodać HN 3 stęż. 25 ml H 2 S 4 stęż. 40 ml małymi porcjami 40 ml stężonego kwasu siarkowego. wata celulozowa 2 g a) Diazotan celulozy: Połowę tej mieszaniny wlać do zlewki i ochłodzić poniżej 20, po czym do zlewki wprowadzamy 1 g waty celulozowej i mieszamy bagietką szklaną. Po upływie 3 minut (nie dłużej!) przenieść watę do wody. Starannie przemywać wodą bieżącą przez 10 minut, odcisnąć nadmiar wody i wysuszyć na powietrzu. b) Triazotan celulozy: Do drugiej porcji mieszaniny nitrującej włożyć następną porcję (1 g) waty i prowadzić proces "nitrowania" przez 15 minut. Przenieść watę do wody i postępować jak poprzednio. Próba spalania: Wziąć mniej więcej jednakowe suche kawałki waty, diazotanu celulozy i triazotanu celulozy i pod wyciągiem porównać szybkość spalania przez wprowadzenie substancji w płomień palnika gazowego. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 11

[6a] Dibenzylidenoaceton 2 H + H 3 H 3 NaH dibenzylidenoaceton (1,5-difenylo-1,4-pentadien-2-on); tt. 112 Do kolby okrągłodennej zaopatrzonej w mieszadło i termometr wlewa się roztwór 5 g NaH w 50 ml wody i 40 ml metanolu. Kolbę umieszcza się na łaźni wodnej (miska z zimną wodą) i energicznie mieszając dodaje się połowę uprzednio przygotowanego roztworu 5.3 g aldehydu benzoesowego w 2.4 ml acetonu. Temperatura mieszaniny reakcyjnej powinna wynosić 20-25 (w razie potrzeby chłodzić w misce z zimną wodą). Po 15 minutach wlewa się drugą połowę tego roztworu i miesza jeszcze przez 30 minut w tej temperaturze. Jasnożółty, kłaczkowaty osad odsącza się na lejku sitowym, przemywa wodą aż do obojętnego odczynu przesączu (co jakiś czas sprawdzać papierkiem uniwersalnym wyciek z lejka) i suszy na powietrzu. dczynniki: aldehyd benzoesowy 5 ml (5.3 g) aceton 2.4 ml (1.5 g) metanol 40 ml NaH 5 g octan etylu Surowy, suchy produkt krystalizuje się z octanu etylu stosując 2.5 ml rozpuszczalnika na 1 gram substancji. Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! 12

[6b] Reakcje związków karbonylowych ćwiczenia probówkowe a) Próba jodoformowa: W probówce umieścić ok. 5 kropli acetonu i dodać 3 ml 5% roztworu NaH oraz 2-3 krople 20% roztworu jodu w jodku potasowym. ałość ogrzać we wrzącej łaźni wodnej. Powtórzyć eksperyment biorąc zamiast acetonu etylometyloketon oraz cykloheksanon. Porównać wyniki, zapisać równania reakcji. b) Połączenia bisulfitowe: Kilka kropli kropli aldehydu benzoesowego silnie wytrząsnąć w probówce z pięciokrotną ilością około 40% roztworu wodorosiarczanu(iv) sodowego. Zaobserwować wypadanie osadu. Powtórzyć eksperyment używając acetonu oraz cykloheksanonu. Porównać wyniki, zapisać równania reakcji. c) Powstawanie fenylohydrazonów: Kilka kropli kropli aldehydu benzoesowego silnie wytrząsnąć w probówce z kilkoma mililitrami wody, dodać kroplę fenylohydrazyny i ponownie wytrząsnąć. Dodać kroplami kwas octowy aż do wytrącenia osadu. Powtórzyć eksperyment używając cykloheksanonu. Porównać wyniki, zapisać równania reakcji. d) Bromowanie enolu: W zlewce o pojemności 400 ml zmieszać 50 ml wody z ok. 0.2 ml (duża kropla) acetylooctanu etylu i 0.2 ml 7% roztworu chlorku żelazowego. Do zabarwionej na fioletowo mieszaniny dodać mieszając wodę bromową do zaniku fioletowej barwy. Po pewnym czasie zabarwienie pojawia się ponownie, a dodatek kolejnej porcji wody bromowej powoduje znów jego zniknięcie. Zanotować obserwacje. Napisać równania reakcji. dczynniki: aceton etylometyloketon aldehyd benzoesowy cykloheksanon 5% NaH 20% I 2 /KI 40% wodorosiarczan(iv) sodu fenylohdrazyna kwas octowy acetylooctan etylu 0.2 ml 7% r-r Fel 3 0.2 ml 13

[7a] (±)-Menton 1 H 3 H 3 H H H H 3 H 3 H 3 H 3 (±)-menton; tw. 210 (98 100 przy 18 mmhg) Do kolby kulistej o pojemności 250 ml dczynniki: zaopatrzonej w mieszadło mechaniczne dodaje się (±)-mentol 10 g 65 ml wody oraz 6 ml kwasu siarkowego(vi) dwuchromian sodu 23.5 g stężony H i rozpuszcza się w niej 23.5 g Na 2 r 2 7. Mieszając 2 S 4 6 ml eter etylowy 50 ml do roztworu dodaje się powoli w 3 porcjach mentol. 5% roztwór NaH około 80 ml W trakcie dodawania wydziela się ciepło i roztwór powinien osiągnąć temperaturę około 55. Jeśli temperatura jest niższa, kolbę należy łagodnie ogrzewać. W pierwszym etapie tworzy się czarna gąbczasta masa, która mięknie w miarę wzrostu temperatury i na koniec tworzy się na powierzchni brązowy olej. Gdy temperatura spada utlenianie jest zakończone. Mieszaninę reakcyjną przenosi się do rozdzielacza i ekstrahuje 50 ml eteru, ekstrakt eterowy przemywa się czterokrotnie 20 ml porcjami 5% roztworu NaH (do jasnożółtego zabarwienia roztworu eterowego), a następnie jeden raz wodą. Po wysuszeniu bezwodnym siarczanem magnezu (około 1 godziny) i przesączeniu eter oddestylowuje się na łaźni wodnej, a pozostałość destyluje się pod normalnym ciśnieniem. Menton zbiera się jako frakcję wrzącą w granicach 205-210. Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! strożnie! Sole chromu(vi) są rakotwórcze! 1 A. I. Vogel, Preparatyka organiczna WNT, Warszawa 1964, str. 341. 14

[7b] Reakcje redox ćwiczenia probówkowe 1. Utlenianiew nadmanganianem potasowym a) Do trzech probówek nalać po ok. 1 ml 1% wodnego roztworu KMn 4, a następnie dodać po 2 ml odpowiedniego węglowodoru: a) n-heksanu (lub n-heptanu), b) cykloheksenu lub heksenu, 3) benzenu. Zawartość probówek przez chwilę mocno wytrząsać i obserwować zachodzące zmiany. Wyjaśnić różnice w przebiegu reakcji. b) Do kilku kropli toluenu dodać kilka kropli stęż. kwasu siarkowego i ostrożnie, małymi porcjami 5% r-r KMn 4. grzewać ostrożnie na wrzącej łaźni wodnej. Reakcję powtórzyć używając odpowiednio: a) alkoholu etylowego, b) kwasu mrówkowego. Wyjaśnić obserwowane zjawiska, zapisać reakcje. 2. Próba jodoformowa Do probówki wprowadzić 1 ml alkoholu etylowego oraz tyle samo 5% r-ru NaH i powoli, kroplami dodać jednocześnie ogrzewając na ciepłej łaźni wodnej 20% r-r jodu w jodku potasu, aż do uzyskania żółtego osadu jodoformu. Powtórzyć reakcję używając odpowiednio: a) 1- propanolu, b) 2-propanolu, c) acetonu. Porównać wyniki, zapisać równania reakcji. 3. Próba Tollensa Do ok. 1 ml odczynnika Tollensa (amoniakalny r-r tlenku srebra) dodać kilka kropli formaldehydu i ostrożnie ogrzać bez wstrząsania. Powtórzyć reakcję używając odpowiednio: a) aldehydu octowego, b) acetonu, c) kwasu mrówkowego, d) glukozy, e) sachrozy. Porównać obserwacje, zapisać równania reakcji. 4. Próba Fehlinga Zmieszać równe ilości odczynników Fehling I i II. Do otrzymanego klarownego r-ru dodać kilka kropli formaldehydu i ogrzać. dczynniki: n-heksan (n-heptan) cykloheksen (heksen) benzen toluen alkohol etylowy kwas mrówkowy 1-propanolu 2-propanol aceton aldehyd octowy kwas mrówkowy glukoza sachroza odczynnik Tollensa odczynniki Fehling I i II 5% r-r KMn 4 5% r-ru NaH stęż. H 2 S 4 20% r-r I 2 w KI Powtórzyć reakcję używając odpowiednio: a) aldehydu octowego, b) acetonu, c) kwasu mrówkowego, d) glukozy, e) sachrozy. Porównać obserwacje, zapisać równania reakcji. 15

[8] Reakcja annizzaro dla aldehydu benzoesowego 2 H KH H 2 H + - W małej zlewce rozpuścić 0.108 mola (6 g) dczynniki: stałego wodorotlenku potasu w 7.2 ml wody. aldehyd benzoesowy 8 ml (8.4 g) trzymany roztwór schłodzić do temperatury chlorek metylenu 40 ml kwas solny 16 ml 25. KH 6 g W erlenmajerce o pojemności 100 ml umieścić 8 ml (8.4 g, 0.08 mola) benzaldehydu. Dodać roztworu KH, zamknąć szczelnie i mocno mieszać aż do utworzenia emulsji (między korek a szlif kolby wstawić pasek papieru lub folii). Mieszaninę pozostawić do następnych zajęć. Do tego czasu powinien zaniknąć zapach aldehydu benzoesowego. Do mieszaniny dodać ok. 20 ml wody i mieszać aż do rozpuszczenia powstałego osadu Zasadowy roztwór wyekstrahować chlorkiem metylenu (3 x 10 ml) zbierając zarówno warstwę organiczną (a), jak i warstwę wodną (b). a) Warstwę organiczną zebrać do kolbki o pojemności 50 ml i oddestylować nadmiar rozpuszczalnika na wrzącej łaźni wodnej. Gdy w kolbce pozostanie około 5 ml, roztwór schłodzić i przenieść do dużej probówki. Kolbkę przepłukać jednokrotnie małą objętością chlorku metylenu i roztwór dołączyć do r-ru w probówce. Używając pipety Pasteura przemyć roztwór dwukrotnie 20% tiosiarczanem sodu aby usunąć resztki nieprzereagowanego benzaldehydu, a następnie dwukrotnie wodą i wysuszyć nad siarczanem magnezu. Usunąć środek suszący przesączając mieszaninę do uprzednio zważonej małej kolbki i oddestylować na łaźni wodnej chlorek metylenu. Zważyć pozostały w kolbce alkohol benzoesowy i obliczyć wydajność reakcji. b) Zasadowy roztwór wodny (warstwa wodna po ekstrakcji) wlać silnie mieszając do zlewki z mieszaniną 16 ml stężonego kwasu solnego, 16 ml wody i około 16 g pokruszonego lodu. Upewnić się papierkiem wskaźnikowym, czy roztwór jest kwaśny. trzymany osad przesączyć przemywając małą porcją zimnej wody i przekrystalizować z wody. Kryształy po wysuszeniu zważyć i obliczyć wydajność reakcji. Zmierzyć temperaturę topnienia. Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! 16