Szkoła Letnia STC Łódź 2013 Oznaczanie zabarwienia cukru białego, cukrów surowych i specjalnych w roztworze wodnym i metodą MOPS przy ph 7,0

Podobne dokumenty
Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Oznaczanie polaryzacji w produktach cukrowniczych metodą w bliskiej podczerwieni (NIR)

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

Zastosowanie metody Lowry ego do oznaczenia białka w cukrze białym

3. Badanie kinetyki enzymów

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

oznaczania zawartości skrobi w cukrze surowym

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

Różnice jakościowe cukrów buraczanych i trzcinowych. dr inż. Maciej Wojtczak

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Laboratorium Podstaw Biofizyki

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Kryteria oceny jakości trzcinowego cukru surowego. dr inż. Maciej Wojtczak

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćw. 5 Absorpcjometria I

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

DOKUMENTACJA SYSTEMU ZARZĄDZANIA LABORATORIUM. Procedura szacowania niepewności

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Czynniki wpływające na zmiany jakościowe cukru białego w czasie składowania

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Teoria błędów. Wszystkie wartości wielkości fizycznych obarczone są pewnym błędem.

Ćwiczenie 74. Zagadnienia kontrolne. 2. Sposoby otrzymywania światła spolaryzowanego liniowo. Inne rodzaje polaryzacji fali świetlnej.

OBLICZENIA BIOCHEMICZNE

Wpływ parametrów jakościowych cukru białego na mętność jego roztworu

ALGALTOXKIT F Procedura testu

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Procedura szacowania niepewności

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

13. TERMODYNAMIKA WYZNACZANIE ENTALPII REAKCJI ZOBOJĘTNIANIA MOCNEJ ZASADY MOCNYMI KWASAMI I ENTALPII PROCESU ROZPUSZCZANIA SOLI

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

Sprawozdzanie z ćwiczenia nr 3 - Kinetyka enzymatyczna

Ćwiczenie 1. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp. Część teoretyczna.

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

Badanie właściwości optycznych roztworów.

ANALIZA INSTRUMENTALNA

E (2) nazywa się absorbancją.

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Jod. Numer CAS:

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

Ćwiczenie 30. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna w zakresie UV-VIS, prawa absorpcji, budowa i. Wstęp

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

KATEDRA INŻYNIERII CHEMICZNEJ I PROCESOWEJ INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH LABORATORIUM INŻYNIERII CHEMICZNEJ, PROCESOWEJ I BIOPROCESOWEJ

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

ZAWARTOŚĆ BIAŁKA JAKO WSKAŹNIK PODATNOŚCI CUKRU NA TWORZENIE KŁACZKÓW W ZAKWASZONYCH ROZTWORACH

GRAWITACYJNE ZAGĘSZCZANIE OSADÓW

BADANIE ZAWARTOŚCI ZWIĄZKÓW AZOTU. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO(V) METODĄ KOLORYMETRYCZNĄ.

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

Skręcenie wektora polaryzacji w ośrodku optycznie czynnym

METODYKA POMIARÓW WIDM ABSORPCJI (WA) NA CARY-300 (Varian) i V-550 (JASCO)

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

Polarymetryczne oznaczanie stężenia i skręcalności właściwej substancji optycznie czynnych

Pomiar zawartości krzemionki w pyle w środowisku miejsca pracy

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

OZNACZANIE INDEKSU FENOLOWEGO W WODZIE

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

data ĆWICZENIE 7 DYSTRYBUCJA TKANKOWA AMIDOHYDROLAZ

Ćwiczenie 3 Pomiar równowagi keto-enolowej metodą spektroskopii IR i NMR

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

OCENA CZYSTOŚCI WODY NA PODSTAWIE POMIARÓW PRZEWODNICTWA. OZNACZANIE STĘŻENIA WODOROTLENKU SODU METODĄ MIARECZKOWANIA KONDUKTOMETRYCZNEGO

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

RSM ROZTWÓR SALETRZANO-MOCZNIKOWY

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

Ćwiczenie 31. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Ćwiczenie 7. Wyznaczanie stałej szybkości oraz parametrów termodynamicznych reakcji hydrolizy aspiryny.

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

PRODUKTY CHEMICZNE Ćwiczenie nr 3 Oznaczanie zawartości oksygenatów w paliwach metodą FTIR

Środki klarujące stosowane w analityce cukrowniczej w Nordzucker Polska S.A.

Import cukru trzcinowego w kontekście reformy europejskiego rynku cukru. dr inż. Maciej Wojtczak

Ocena jakości cukru trzcinowego w kontekście reformy europejskiego rynku cukru. dr inż. Maciej Wojtczak

Badanie kinetyki inwersji sacharozy

Automatyczne sterowanie gotowaniem cukrzycy z zastosowaniem pomiaru masy kryształów metodą spektrometrii w bliskiej podczerwieni

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: WAŻENIE, SUSZENIE, STRĄCANIE OSADÓW, SĄCZENIE

d[a] = dt gdzie: [A] - stężenie aspiryny [OH - ] - stężenie jonów hydroksylowych - ] K[A][OH

Transkrypt:

Oznaczanie zabarwienia cukru białego, cukrów surowych i specjalnych w roztworze wodnym i metodą MOPS przy ph 7,0 1 Dr inż. Krystyna Lisik Inż. Maciej Sidziako

Wstęp Zabarwienie jest jednym z najważniejszych wskaźników oceny jakości cukrów. Graniczne wartości zabarwienia są zawarte w większości norm jakościowych obowiązujących producentów, a także są zawarte w wymaganiach odbiorców. 2 Zabarwienie produktów cukrowniczych jest spowodowane obecnością substancji barwnych, które są mieszaniną szeregu związków chemicznych o skomplikowanych budowach cząsteczek, niejednokrotnie nie w pełni zidentyfikowanych..

A a b c Szkoła Letnia STC Łódź 2013 Definicje i prawa absorpcji 3 Do pomiarów zabarwienia w cukrownictwie stosuje się metody spektrofotometryczne, które wykorzystują zjawisko pochłaniania światła przez atomy i cząsteczki. Roztwory cukrownicze spełniają prawo Lamberta i Beera, zgodnie z którym absorbancja A jest wprost proporcjonalna do grubości warstwy b substancji pochłaniającej światło, a w roztworze również do stężenia roztworu c. A a b c. - prawo Lamberta i Beera

Definicje i prawa absorpcji 4 Miarą zabarwienia jest współczynnik absorbancji a mierzony przy określonej długości fali, proporcjonalny do ilości substancji barwnych wyrażony wzorem:. A a - współczynnik absorbancji roztworu b c Stężenie c w (g/ml) wyznacza się z gęstości roztworu d i zawartości substancji suchej Bx według wzoru: a c Bx d 100 Ostatecznie współczynnik absorbancji a oblicza się ze wzoru: 100 A b Bx d

Definicje i prawa absorpcji 5 Wartość współczynnika absorbancji roztworu pomnożona przez 1000 jest to zabarwienie wyrażone w jednostkach ICUMSA.. 100 A Zab. 1000 IU b Bx d gdzie: A log I I 0 absorbancja mierzona przy określonej długości fali światła, b grubość warstwy roztworu, przez którą przeszło światło w cm, Bx zawartość suchej substancji w %, d gęstość roztworu odpowiadająca danemu Bx w g/cm 3.

Czynniki wpływające na pomiar zabarwienia produktów cukrowniczych 6 Cukrownictwo jest jedną z bardzo nielicznych dziedzin chemii, w którym chodzi o absolutny pomiar zabarwienia, czyli zdolność pochłaniania światła przez badany produkt, a nie o porównanie pochłaniania światła przez badaną próbkę i przez wzorce.. Wartość liczbowa wyniku pomiaru zabarwienia zależy od tego, w jaki sposób została zmierzona, za pomocą jakiej klasy przyrządu i w jaki sposób została wyrażona. Z tego względu konieczne jest ścisłe przestrzeganie metod oznaczana.

1. Rodzaj substancji barwnych Zabarwienie roztworów cukrowniczych jest wypadkową wynikającą z obecności różnych substancji barwnych w roztworze. O zabarwieniu produktów cukrowniczych decydują głównie trzy rodzaje substancji barwnych, a mianowicie: produkty alkalicznego rozkładu inwertu, melanoidyny produkty reakcji Maillarda powstające z inwertu i aminokwasów, produkty karmelizacji sacharozy. 7 W zakresie światła widzialnego, tj. o długości fali od około 400 nm do 750 nm, wymienione wyżej substancje barwne mają zbliżony lecz nie jednakowy kształt widma, czyli podobną zmianę absorbancji w funkcji długości fali.

2. Długość fali użytego światła W zakresie światła widzialnego absorbancja maleje wraz ze wzrostem długości fali użytego światła. W zakresie światła krótkofalowego (fioletowego) przebieg widma jest bardzo stromy. W miarę zwiększania długości fali krzywe widmowe mają przebieg łagodniejszy. Obecnie pomiar zabarwienia we wszystkich produktach cukrowniczych wykonuje się przy długości fali 420 nm. 8 W przypadku cukru białego i jasnych roztworów przy długości fali 420 nm wskazania spektrofotometrów mają większe wartości liczbowe i względny błąd pomiaru jest mniejszy.

3. Wartość ph roztworu Substancje barwne w zależności od stopnia zdysocjowania mają różne zabarwienie. Zmiany ph powodują wzrost lub cofnięcie stopnia dysocjacji barwnika, a tym samym powodują zmiany zabarwienia. Im wyższe ph tym zabarwienie roztworu jest wyższe. 9 Pomiaru zabarwienia roztworów cukrowniczych powinno dokonywać się przy ph 7,0.

4. Stężenie roztworu Substancje barwne podczas rozcieńczania nie zawsze zachowują się zgodnie z prawem Beera. Wykres absorbancji w funkcji stężenia może odchylać się mniej lub bardziej od linii prostej. 10 Stężenie roztworów i długość kuwet powinno być tak dobrane, aby absorbancja mieściła się w granicach od 0,1 do 0,8. Poza tym roztwór powinien sączyć się możliwie szybko.

5. Obecność zawiesin w roztworze i w wodzie znajdującej się w kuwecie odniesienia Roztwór przeznaczony do pomiaru zabarwienia powinien być idealnie klarowny. Zawiesiny lub cząstki koloidowe obecne w roztworze nie tylko absorbują światło, ale także mogą je rozpraszać zniekształcając wynik pomiaru. 11 ICUMSA zaleca do roztworów cukru białego, cukrów surowych i specjalnych stosowanie sączków membranowych o średnicy porów 0,45 µm. Pozostałe roztwory sączy się przez gęstą bibułę. Woda znajdująca się w kuwecie odniesienia powinna być przesączona w taki sam sposób jak badany roztwór.

6. Powietrze na ścianach kuwet Pęcherzyki powietrza na ściankach kuwet bardzo zniekształcają wynik. Roztwór przed pomiarem powinien być odpowietrzony pod zmniejszonym ciśnieniem lub za pomocą ultradźwięków. 12

7. Poziom roztworu w kuwecie Kuwety powinny być napełnione do przepisowego poziomu, prawie do pełna, ponieważ przy zbyt niskim poziomie bieg promieni jest nieprawidłowy, a wskazania błędne. 13

Metody oznaczania zabarwienia 14 Obecnie w przepisach ICUMSA znajdują się trzy oficjalne metody do oznaczania zabarwienia roztworu cukrów. 1. Metoda GS2/3-10 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru białego oficjalna 2. Metoda GS1/3-7 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru surowego, cukru brązowego i ciemnych syropów przy ph 7,0 oficjalna 3. Metoda GS9/1/2/3-8 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru przy ph 7,0 metodą MOPS oficjalna referencyjna

Metoda GS2/3-10 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru białego - oficjalna 1. Zakres stosowania Metodę stosuje się do oznaczania zabarwienia roztworu cukru białego (GS2) i cukrów specjalnych (GS3), np. do cukru pudru do maksymalnej wartości 50 IU. 2. Zasada metody 15 Sporządza się 50 % roztwór cukru białego. Cukier rozpuszcza się w wodzie destylowanej, nie doprowadza się roztworu do ph 7,0. Roztwór sączy się przez sączek membranowy o średnicy porów 0,45 µm. Odpowietrza pod zmniejszonym ciśnieniem lub w łaźni ultradźwiękowej.

Metoda GS2/3-10 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru białego - oficjalna 2. Zasada metody 16 Mierzy absorbancję przesączu w świetle o długości fali 420 nm, stosując kuwetę odniesienia napełnioną przesączoną i odpowietrzoną wodą destylowaną. Oblicza zabarwienie roztworu korzystając ze wzoru: Zab A Bx 100 d b 1000 A absorbancja mierzona przy długości fali światła 420 nm, b grubość warstwy roztworu, przez którą przeszło światło w cm, Bx zawartość suchej substancji w %, d gęstość roztworu odpowiadająca danemu Bx w g/cm 3. IU

17 Metoda GS1/3-7 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru surowego, cukru brązowego i ciemnych syropów przy ph 7,0 oficjalna 1. Zakres stosowania Metodę stosuje się do oznaczania zabarwienia roztworu cukru surowego (GS1), cukrów plantacyjnych, cukrów częściowo rafinowanych i cukrów brązowych oraz ciemnych syropów (GS3). 2. Zasada metody Cukier rozpuszcza się w wodzie destylowanej. Stężenie roztworów i długość kuwet dobiera się w taki sposób, aby absorbancja mieściła się w zakresie od 0,1 do 0,8. Doprowadza ph roztworu do 7,0 za pomocą 0,1 mol/l HCl lub 0,1 mol/l NaOH.

18 Metoda GS1/3-7 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru surowego, cukru brązowego i ciemnych syropów przy ph 7,0 oficjalna 2. Zasada metody Roztwór sączy się przez sączek membranowy o średnicy porów 0,45 µm. Odpowietrza pod zmniejszonym ciśnieniem lub w łaźni ultradźwiękowej. Mierzy absorbancję przesączu w świetle o długości fali 420 nm, stosując kuwetę odniesienia napełnioną przesączoną i odpowietrzoną wodą destylowaną.

Metoda GS1/3-7 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru surowego, cukru brązowego i ciemnych syropów przy ph 7,0 oficjalna 2. Zasada metody Oblicza zabarwienie roztworu korzystając ze wzoru: 19 Zab A Bx 100 d b 1000 IU 7,0 A absorbancja mierzona przy długości fali światła 420 nm, b grubość warstwy roztworu, przez którą przeszło światło w cm, Bx zawartość suchej substancji w %, d gęstość roztworu odpowiadająca danemu Bx w g/cm 3

20 Metoda GS9/1/2/3-8 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru przy ph 7,0 metodą MOPS oficjalna referencyjna 1. Zakres stosowania Metodę stosuje się do oznaczania zabarwienia wszystkich rodzajów cukrów głównie do cukru plantacyjnego (GS9), a także do cukrów surowych (GS1), cukru białego (GS2), i cukrów specjalnych (GS3): 2. Zasada metody Cukier rozpuszcza się w wodzie destylowanej w kolbie miarowej na 100 ml i dodaje 10 ml buforu MOPS o ph 7,0 (kwas 3-morfolinopropanosulfonowy) i uzupełnia kolbę wodą destylowaną. Naważkę cukru i długość kuwety dobiera się tak, aby absorbancja mieściła się w zakresie od 0,1 do 0,8.

Metoda GS9/1/2/3-8 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru przy ph 7,0 metodą MOPS oficjalna referencyjna 2. Zasada metody 21 Roztwór cukru sączy się przez sączek membranowy o średnicy porów 0,45 µm. Przygotowuje się roztwór odniesienia przez dodanie 10 ml buforu MOPS do kolby miarowej na 100 ml i uzupełnieniu wodą destylowaną do kreski. Oba roztwory odpowietrza się pod zmniejszonym ciśnieniem lub w łaźni ultradźwiękowej. Mierzy absorbancję roztworu cukru w świetle o długości fali 420 nm, stosując kuwetę odniesienia napełnioną roztworem odniesienia jako wzorca zerowej absorbancji.

22 Metoda GS9/1/2/3-8 (2011) Oznaczanie zabarwienia roztworu cukru przy ph 7,0 metodą MOPS oficjalna referencyjna 2. Zasada metody Oblicza zabarwienie roztworu korzystając ze wzoru: gdzie: Zab A 1000 b c IU 7,0 A absorbancja mierzona przy długości fali światła 420 nm, b grubość warstwy roztworu, przez którą przeszło światło w cm, c stężenie roztworu cukru w g/ml.

CEL PRACY Celem pracy było wykonanie badań porównawczych oznaczania zabarwienia różnych cukrów metodami oficjalnymi GS2/3-10 i GS1/3-7 z metodą MOPS przy ph 7,0 oficjalną referencyjną. 23

MATERIAŁ BADAWCZY Osiem prób różnych cukrów o zabarwieniu 35 IU 26000 IU. 24

Dwie próby cukru białego buraczanego o zabarwieniu do 60 IU 25

Trzy próby cukru surowego trzcinowego o zabarwieniu 950 IU 7000 IU 26

Trzy próby cukru specjalnego trzcinowego o zabarwieniu 2000 IU 26000 IU 1. Organica Demerara ok. 2000 IU 2. Cukier brązowy ok. 6000 IU 27

3. Acucar Mascavo ok. 26000 IU 28

MATERIAŁ BADAWCZY Próby cukru surowego i cukrów specjalnych zostały ujednorodnione poprzez roztarcie grudek i przesianie przez sito. 29

METODYKA BADAŃ W każdej próbie cukru oznaczono zabarwienie dwoma metodami w 12 powtórzeniach w warunkach powtarzalności, tzn.: w tym samym laboratorium, przez tego samego analityka, z użyciem tego samego wyposażenia, w krótkich odstępach czasu. 30

METODYKA BADAŃ W cukrze białym buraczanym Metodą oficjalną ICUMSA GS2/3-10 (2011) w roztworze wodnym bez korygowania ph Metodą referencyjną ICUMSA GS9/1/2/3-8 (2011) w buforze MOPS przy ph 7,0 W cukrach surowych i specjalnych trzcinowych 31 Metodą oficjalną ICUMSA GS1/3-7 (2011) w roztworze wodnym przy ph 7,0 Metodą referencyjną ICUMSA GS9/1/2/3-8 (2011) w buforze MOPS przy ph 7,0 W celu wyeliminowania błędów grubych zastosowano test Q-Dixsona.

Na podstawie otrzymanych wyników wyznaczono cechy charakterystyczne badanych metod obejmujące: Parametr Wzór Wartość średnią Rozstęp Odchylenie standardowe powtarzalności 32 Względne odchylenie standardowe powtarzalności Granicę powtarzalności

WYNIKI BADAŃ 33

Tabela 1. Wartości średnie oznaczania zabarwienia (n=12) Nr cukru Rodzaj cukru Metoda GS2/3-10 Metoda GS1/3-7 Roztwór wodny Metoda GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS; ph 7,0 34 1 Biały 2 buraczany 35 36 0,97 57 55 1,03 3 953 939 1,01 4 Surowy trzcinowy 4608 4526 1,02 5 7099 7148 0,99 6 Organica Demerara 2195 2092 1,05 7 Brązowy 5505 6033 0,91 8 Acucar Mascavo 26 119 24 110 1,08

Roztwór wodny/ Bufor MOPS Szkoła Letnia STC Łódź 2013 1,2 Cukier biały < 60 IU Cukry surowe 950 IU 7,0 7000 IU 7,0 Cukry specjalne 2000 IU 7,0 26000 IU 7,0 1,1 1,0 0,9 35 0,8 1 2 3 4 5 6 7 8 Próby cukru Rys.1. Stosuneki wartości średnich zabarwienia oznaczonego metodami oficjalnymi GS2/3-10 i GS1/3-7 do metody referencyjnej GS9/1/2/3-8 w badanych próbach cukru

Tabela 2. Cukry białe buraczane ocena statystyczna oznaczania zabarwienia Metoda Parametr Jednostka GS2/3-10 Roztwór wodny GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS GS2/3-10 Roztwór wodny GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS Wartość średnia n=12 IU 34,9 36,5 57,1 55,3 Rozstęp IU 2,5 2,4 3,1 3,2 36 Odchylenie standardowe Względne odchylenie standardowe Granica powtarzalności IU 0,81 0,66 0,92 1,18 % 2,3 1,8 1,6 2,1 IU 2,3 1,9 2,6 3,3

Tabela 3. Cukry surowe trzcinowe ocena statystyczna oznaczania zabarwienia Metoda Parametr Jednostka GS1/3-7 Roztwór wodny GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS GS1/3-7 Roztwór wodny GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS GS1/3-7 Roztwór wodny GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS Wartość średnia n=12 IU 7,0 953 931 4608 4526 7099 7148 Rozstęp IU 7,0 88 105 782 740 1330 1440 Odchylenie standardowe IU 7,0 26 41 223 219 422 397 37 Względne odchylenie standardowe % 2,8 4,4 4,8 4,8 5,9 5,6 Granica powtarzalności IU 7,0 74 116 625 613 1181 1113

Tabela 4. Cukry specjalne trzcinowe ocena statystyczna oznaczania zabarwienia Metoda Parametr Jednostka GS1/3-7 Roztwór wodny GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS GS1/3-7 Roztwór wodny GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS GS1/3-7 Roztwór wodny GS9/1/2/3-8 Bufor MOPS Wartość średnia n=12 IU 7,0 2195 2092 5505 6033 26 119 24 110 Rozstęp IU 7,0 253 255 568 620 1179 960 Odchylenie standardowe IU 7,0 89 96 188 181 308 345 38 Względne odchylenie standardowe % 4,1 4,6 3,4 3,0 1,2 1,4 Granica powtarzalności IU 7,0 249 268 526 507 863 965

RSD r [%] Szkoła Letnia STC Łódź 2013 7 6 Cukier biały < 60 IU Metody oficjalne Cukry surowe 950 IU 7,0 7000 IU 7,0 Metoda referencyjna Cukry specjalne 2000 IU 7,0 26000 IU 7,0 5 4 3 2 1 39 0 1 2 3 4 5 6 7 8 Próby cukru Rys. 2. Porównanie względnego odchylenia standardowego oznaczenia zabarwienia metodami oficjalnymi GS2/3-10 i GS1/3-7 z metodą referencyjną GS9/1/2/3-8 w badanych próbach cukru

WNIOSKI 1. Wykonane badania potwierdziły, że metodę MOPS przy ph 7,0 można stosować do oznaczania zabarwienia wszystkich rodzajów cukrów, cukru białego, cukrów surowych oraz specjalnych o wysokim zabarwieniu. 40

WNIOSKI 41 2. Wykonane badania porównawcze oznaczania zabarwienia różnych cukrów metodami oficjalnymi GS2/3-10 i GS1/3-7 z metodą MOPS przy ph 7,0 oficjalną referencyjną wykazały, że metody są równoważne, szczególnie w przypadku oznaczania zabarwienia cukrów o niższych wartościach, a uzyskane wyniki nie różnią się istotnie z punktu widzenia oznaczania zabarwienia jako wskaźnika oceny jakości cukru.

WNIOSKI 3. Zgodnie z zaleceniami ICUMSA metoda GS9/1/2/3-8 oznaczania zabarwienia roztworu cukru w buforze MOPS przy ph 7,0 jest preferowana wobec metod oficjalnych GS1/3-7 i GS2/3-10 oraz powinna być stosowana w przypadku rozstrzygania sporów dotyczących wyników analiz. 42