BIOCHEM-ART ; ul. Elfów 75, 80-180 Gdańsk tel./fax (0-58) 304-80-77



Podobne dokumenty
ALGALTOXKIT F Procedura testu

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Gel-Out. 50 izolacji, 250 izolacji. Nr kat , Zestaw do izolacji DNA z żelu agarozowego. wersja 0617

THAMNOTOXKIT F Procedura testu

OSTRACODTOXKIT F Procedura testu

Test Immunoenzymatyczny DRG Kortyzol dostarcza materiałów do oznaczania kortyzolu w surowicy i osoczu.

MATERIAŁY SZKOLENIOWE DLA ZAKŁADÓW HIGIENY WETERYNARYJNEJ W ZAKRESIE LABORATORYJNEJ DIAGNOSTYKI AFRYKAŃSKIEGO POMORU ŚWIŃ

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

K1. KONDUKTOMETRYCZNE MIARECZKOWANIE STRĄCENIOWE I KOMPLEKSOMETRYCZNE

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

fix RNA Roztwór do przechowywania i ochrony przed degradacją próbek przeznaczonych do izolacji RNA kat. nr. E0280 Sierpień 2018

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

PathogenFree DNA Isolation Kit Zestaw do izolacji DNA Instrukcja użytkownika

KOAGULOLOGIA. Przed każdym pobieraniem krwi należy umyć ręce i nałożyć rękawice.

Metoda analityczna oznaczania chlorku winylu uwalnianego z materiałów i wyrobów do żywności

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Genomic Mini AX Milk Spin

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

QMS Quality in Microbiology Scheme Wydanie 14 Data wydania: czerwiec 2018

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

E.coli Transformer Kit

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Genomic Mini AX Plant Spin

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

Porównanie precyzji i dokładności dwóch metod oznaczania stężenia HCl

Laboratorium Podstaw Biofizyki

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Total RNA Zol-Out. 25 izolacji, 100 izolacji

Elcometer 134A. Zestaw do wykrywania chlorków soli w ścierniwie. Instrukcja obsługi

Zestaw do oczyszczania DNA po reakcjach enzymatycznych

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

Novabeads Food DNA Kit

E.coli Transformer Zestaw do przygotowywania i transformacji komórek kompetentnych Escherichia coli

HEMATOLOGIA. Przed każdym pobieraniem krwi należy umyć ręce i nałożyć rękawice.

SPIRODELA DUCKWEED TOXKIT Procedura testu

OCENA CZYSTOŚCI WODY NA PODSTAWIE POMIARÓW PRZEWODNICTWA. OZNACZANIE STĘŻENIA WODOROTLENKU SODU METODĄ MIARECZKOWANIA KONDUKTOMETRYCZNEGO

Genomic Maxi AX Direct

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

OPIS PRZEDMIOTU ZAMÓWIENIA ARKUSZ KALKULACYJNY OKREŚLAJĄCY CENĘ OFERTY. Szt. 4

VACUETTE Automatyczne systemy oznaczania OB

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Genomic Midi AX Direct zestaw do izolacji genomowego DNA (procedura bez precypitacji) wersja 1215

Zestaw przeznaczony jest do całkowitej izolacji RNA z bakterii, drożdży, hodowli komórkowych, tkanek oraz krwi świeżej (nie mrożonej).

data ĆWICZENIE 7 DYSTRYBUCJA TKANKOWA AMIDOHYDROLAZ

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Genomic Maxi AX zestaw do izolacji genomowego DNA wersja 0616

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

Genomic Mini AX Bacteria+ Spin

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 ZASADY OCENIANIA

Zestaw do izolacji genomowego DNA z drożdży

Projekt współfinansowany przez Unię Europejską w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA. Arkusz zawiera informacje prawnie chronione do momentu rozpoczęcia egzaminu

Poznajemy warunki życia w stawie.

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Techniki immunoenzymatycznego oznaczania poziomu hormonów (EIA)

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Na tej pracowni wyjątkowo odpowiedzi na zadania należy udzielić na osobnym arkuszu odpowiedzi.

bi ~ Zestaw dydal<tyczny umożliwiający przeprowadzenie izolacji genomowego DNA z bakterii EasyLation Genomie DNA INSTRUI<CJA DLA STUDENTÓW

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Techniki molekularne ćw. 1 1 z 6

Genomic Midi AX. 20 izolacji

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

Woltamperometryczne oznaczanie kadmu na elektrodzie błonkowej (MFE rtęciowa elektroda błonkowa) Uruchom program PSLite 1.8

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

DRG International, Inc., USA Fax: (973)

AmpliTest Salmonella spp. (Real Time PCR)

data ĆWICZENIE 12 BIOCHEMIA MOCZU Doświadczenie 1

Badanie uwalniania paracetamolu z tabletki. Mgr farm. Piotr Podsadni

Test kuwetowy LCK 554

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Genomic Micro AX Blood Gravity 96-well

Miareczkowanie potencjometryczne

47 Olimpiada Biologiczna

Zestaw do izolacji DNA z krwi świeżej i mrożonej

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

Bufory ph. Pojemność buforowa i zakres buforowania

AmpliTest GMO screening-nos (Real Time PCR)

Delvotest Inkubator. Instrukcja obsługi. Wersja 1.0

Transkrypt:

Delvo-X-Press ßL-II Delvo-X-Press ßL-II jest jakościowym niekompetencyjnym testem immunoenzymatycznym przeznaczonym do badania pozostałości antybiotyków ß-laktamowych w surowym i pasteryzowanym mleku krowim. Producent: DSM FOOD Specialties B.V. Dairy Ingredients Group PO Box 1 2600 MA Delft Holandia Strona 1 z 6

Delvo-X-Press ßL-II Delvo-X-Press ßL-II jest szybkim testem wytwarzanym przez producenta powszechnie znanego Delvotestu. W czasie krótszym niż 7 minut wykrywa on szerokie spektrum pozostałości antybiotyków b-laktamowych. Aparatura niezbędna do wykonania testu również jest dostępna w DSM FOOD Specialties Poland. Delvo-X-Press ßL-II jest jakościowym testem immunoenzymatycznym zaprojektowanym dla potrzeb przemysłu mleczarskiego w celu badania pozostałości antybiotyków ß-laktamowych w mleku zbiorczym na poziomie czułości podanym w Tabeli 1. Zasada działania testu Ściśle określona ilość TRACERA (roztwór receptora białka) jest mieszana z ustaloną objętością próbki mleka w probówce specjalnie pokrytej ß-laktamem. TRACER może reagować zarówno ze związkami b-laktamowymi obecnymi w mleku, jak i w probówce. Zależnie od obecności związków ß-laktamowych w próbce mleka więcej bądź mniej TRACERA reaguje z ß-laktamem pokrywającym probówkę. Po usunięciu kompleksu TRACER/ß-laktam przez przemywanie probówki, dodawany jest wywoływacz barwy (COLOUR DEVELOPER) w celu oznaczenia TRACERA związanego wewnątrz probówki pokrytej ß-laktamem. Intensywność powstałej barwy w probówce jest odwrotnie proporcjonalna do stężenia antybiotyków ß-laktamowych w próbce. Takiej samej procedurze podlega standard. Przez porównanie intensywności barwy powstałej w probówce z próbką oraz probówce ze standardem za pomocą czytnika-spektrofotometru oznaczana jest obecność bądź nieobecność pozostałości związków ß-laktamowych w próbce mleka. Tabela 1 Minimalne wykrywalne stężenia antybiotyków ß-laktamowych : Antybiotyki poziom czułości ng/ml (ppb) penicylina G 2-4 ceftiofur 4-8 cefapiryna 4-8 ampicylina 4-8 amoksycylina 4-8 cloksacylina 30-60 Czułości testu dla innych antybiotyków -laktamowych dostępne na żądanie. Delvo-X-Press ßL został zaprojektowany jako test monitoringowy wykrywający pozostałości antybiotyków ß-laktamowych w mleku. Pozytywne wyniki testu winny być potwierdzone przez obowiązujące metody urzędowe. Strona 2 z 6

Składniki zestawu - PROBÓWKI POKRYTE [T] : 2 x 50 szt. Probówki pokryte antybiotykiem b-laktamowym. - STANDARD zliofilizowany [S] : 1 butelka Antybiotyk b-laktamowy w zbuforowanym roztworze mleka, zliofilizowany. - ROZCIENCZALNIK STANDARDU [D] (DILUENT) : 1 butelka Rozpuszczalnik do zliofilizowanego STANDARDu. Roztwór wodny konserwowany timerosalem. - TRACER [1] : 1 butelka Gotowy do użycia roztwór receptora białka. Zbuforowany roztwór serum krwi koziej zakonserwowany timerosalem. - ROZTWÓR PRZEMYWAJĄCY (50 x stęż.) [W] (WASH SOLUTION): 1 butelka 50-krotnie zagęszczony środek do przemywania probówek. Roztwór należy rozcieńczyć dejonizowaną lub destylowaną wodą. Zbuforowany roztwór z dodatkiem glicerolu konserwowany chlorkiem benzalkonowym. - WYWOŁYWACZ BARWY [2] (COLOUR DEVELOPER) : 1 butelka Substrat enzymu. Wodny roztwór wywoływacza. - INSTRUKCJA : 1 szt. Składniki zestawu aparatury 1 x zestaw pomiarowy ISRP parametry techniczne urządzenia: inkubator: 64 o C wstrząsarka: 700 rpm czytnik-spektrofotometr: 660 nm drukarka: 24 znaki w wierszu wyświetlacz: instrukcja wykonania testu i odczyt wyników 1 x zasilacz 12 V 1 x pipeta 0,2 ml 1 x pipeta 1,0 ml 2 x statyw do PROBÓWEK [T] 1 x tryskawka 250 ml 1 x zlewka pomiarowa 5 ml Strona 3 z 6

Szczegółowa instrukcja wykrywania pozostałości antybiotyków ß-laktamowych w mleku krowim za pomocą zestawu Delvo-X-Presss Przechowywanie i zalecenia : 1. Zestaw należy przechowywać w temperaturze 2-8 o C. Nie należy zamrażać. Nie używać zestawu po upływie czasu przydatności testu podanego na etykiecie. 2. Próbki mleka powinny być przechowywane w temp. 2-8 o C i analizowane w czasie 48 godzin od pozyskania (udoju). Próbki mleka mogą być także przechowywane w postaci mrożonej, lecz nie mogą być rozmrażane więcej niż dwa razy. 3. Po rekonstytucji, STANDARD (butelka "S") musi być zużyty w czasie 2 miesięcy pod warunkiem przechowywania w lodówce. 4. COLOUR DEVELOPER - wywoływacz barwy (butelka "2") powinien być przechowywany w ciemności i chroniony przed światłem. 5. Odczynniki i probówki nie mogą być zamieniane pomiędzy różnymi zestawami. 6. Odczynniki zawierają timerosal, chlorek benzalkonowy, fluorek sodowy i 4-aminoantypirydynę. Mogą one być szkodliwe, jeśli zostaną spożyte. W takim przypadku konieczna jest konsultacja lekarska. 7. Wykonanie testu winno odbywać się w temperaturze pokojowej (15-25 o C). 8. Należy zwrócić szczególną uwagę na zachowanie czystości czytnika aparatu i zabezpieczenie przed wlaniem cieczy do urządzenia. Zaleca się usunięcie kropel cieczy z "probówek pokrytych" za pomocą bibuły oraz nałożenie paska bibuły z otworami na rząd otworów czytnika. 9. W celu maksymalnego zwiększenia dokładności testu, pobieranie próbek, dodawanie odczynników i inkubacja winny być przeprowadzone w tej samej kolejności. Oznacza to, że probówki poddane inkubacji w pierwszej kolejności winny być również wyjęte z inkubatora w pierwszej kolejności, jako że czas inkubacji jest czynnikiem krytycznym testu. 10. W celu dodania wywoływacza barwy (COLOUR DEVELOPER) napełnić całkowicie pipetę wielokrotną (Combitip - 12,5 ml) odczynnikiem przed dodaniem do probówek pokrytych b-laktamem. Usunąć pierwszą porcję odczynnika do butelki z wywoływaczem. Dodać COLOUR DEVELOPER do wszystkich probówek pokrytych. Okres pomiędzy dodaniem wywoływacza do pierwszej i ostatniej probówki nie powinien przekraczać 10 sekund. Po dodaniu wywoływacza pozostały w pipecie odczynnik należy wlać z powrotem do butelki. 11. Ponieważ test jest bardzo czuły na antybiotyki, należy unikać jakiegokolwiek zanieczyszczenia takimi substancjami. Zaleca się umycie rąk i stołu laboratoryjnego, a następnie osuszenie za pomocą ręczników bibułowych przed rozpoczęciem wykonania testu. 12. Użytkownicy testu winni zwracać szczególną uwagę na możliwość krzyżowego zanieczyszczenia w czasie wstrząsania i mieszania. 13. Delvo-X-Press ßL-II został zaprojektowany jako test monitoringowy do wykrywania pozostałości antybiotyków b-laktamowych tylko w mleku krowim. Pozytywne wyniki testu powinny być potwierdzone przez obowiązujące metody urzędowe (mikrobiologiczne). 14. Gist-Brocades nie będzie ponosić odpowiedzialności za jakiekolwiek konsekwencje niewłaściwego użycia testu Delvo-X-Press ßL-II, za wyjątkiem wymiany testów uznanych w postępowaniu reklamacyjnym za wadliwe, jako że warunki i sposób użycia testu pozostają poza naszą kontrolą. Użytkownicy testu powinni być instruowani w zakresie wykonania testu przez przedstawiciela DSM FOOD Specialties. Strona 4 z 6

Przygotowanie Zestaw 1. 30 minut przed rozpoczęciem testu, wyjąć zestaw z lodówki. Wyjąć wszystkie potrzebne ampułki, odczynniki z pudełka i pozwolić im na podgrzanie do temperatury pokojowej (15-25 o C). Pozostałe materiały umieścić ponownie w lodówce. Zestaw pomiarowy ISRP-workstation 2. Włączyć zestaw i pozostawić włączony na około 15 minut celem osiągnięcia i ustalenia temperatury 64 o C (±2 o C). Objętość próbki i odczynników 3. Wszystkie odczynniki powinny być odmierzone z dokładnością co najmniej ±5%. Czas inkubacji 4. Wszystkie czasy inkubacji powinny być stosowane z dokładnością co najmniej ±10%. Zalecane jest użycie pipety wielokrotnej w celu zachowania właściwego czasu dodawania wywoływacza barwy. Roztwór przemywający 5. Przygotować ilość roztworu wystarczającą na jeden dzień przez rozcieńczenie 1 części koncentratu (butelka oznaczona "W") 49 częściami dejonizowanej lub destylowanej wody (na 10 probówek potrzeba około 250 ml). Napełnić tryskawkę rozcieńczonym roztworem. Standard 6. Usunąć aluminiowe zabezpieczenie z butelki zawierającej zliofilizowany STANDARD (butelka "S"). Ostrożnie podważyć korek w celu likwidacji próżni w butelce, następnie wyjąć korek i położyć go do góry nogami na stole. Unikać zanieczyszczenia korka przez kontakt z palcami, stołem, itp. Wlać całą zawartość rozpuszczalnika STANDARD (butelka "D") do butelki ze zliofilizowanym STANDARDEM (butelka "S"). Włożyć z powrotem korek do butelki. Przytrzymując korek delikatnie wymieszać zawartość przez odwracanie ( 20x ), unikając tworzenia piany. W celu osiągnięcia stanu równowagi STANDARD należy odstawić na 20 minut w temperaturze pokojowej; następnie delikatnie wymieszać 10 razy. Zaznaczyć na butelce datę przygotowania roztworu. Próbki mleka 7. Badać próbki mleka o temperaturze identycznej z temperaturą standardu. Wymieszać próbkę przez wstrząsanie, unikając pienienia. Odmierzając próbkę należy pobierać ją ze środka objętości próbki, stopniowo naciągając do pipety bez wprowadzania pęcherzy powietrza. Liczba próbek 8. Nie więcej niż 6 próbek może być badanych jednocześnie. Próbka STANDARD musi być badana jako pierwsza w każdej grupie 6 próbek mleka. Automatyczne przeprowadzanie testu 9. Wykonywać instrukcje wyświetlane na ekranie zestawu pomiarowego ISRP-workstation zgodnie z komendą "Automatic test". Strona 5 z 6

Sposób wykonania Wykonywać instrukcje wyświetlane na ekranie zestawu pomiarowego ISRP-workstation zgaodnie z komendą "Automatic Test" lub przejść do pkt. 1. 1. Przygotować odpowiednią ilość probówek pokrytych (COATED TUBES [T]) i oznakować je. 2. Odmierzyć pipetą 0.2ml roztworu STANDARDu [S] do PROBÓWKI [T]. Oznaczyć PROBÓWKĘ jako "Standard". 3. Odmierzyć pipetą 0.2ml badanej próbki mleka do odpowiednich PROBÓWEK [T]. Użyć nowej końcówki pipety dla każdej próbki mleka. 4. Dodać 0.2ml roztworu TRACERa [1] do wszystkich PROBÓWEK [T]. 5. PROBÓWKI [T] inkubować przez 3 minuty w inkubatorze (rząd A, 64 o C). Zawartość probówek musi być dobrze mieszana przez wstrząsanie. Natychmiast po zakończeniu inkubacji usunąć PROBÓWKI [T] z inkubatora. 6. Zawartość PROBÓWEK [T] wylać do zlewu, a odwrócone do góry dnem PROBÓWKI umieścić na bibule. Używając tryskawki wycisnąć roztwór przemywający WASH SOLUTION (rozcieńczony 50x) do PROBÓWEK [T] aż do ich całkowitego napełnienia. Wylać zawartość do zlewu. Powtórzyć tę czynność jeszcze dwukrotnie. Ustawić odwrócone do góry dnem PROBÓWKI [T] na bibule w celu usunięcia pozostałości płynu. 7. Do każdej PROBÓWKI [T] dodać 1.0ml wywoływacza barwy (COLOUR DEVELOPER [2]). Okres pomiędzy dodaniem wywoływacza do pierwszej i ostatniej PROBÓWKI nie powinien przekraczyć 10 sekund. 8. PROBÓWKI [T] inkubować przez 3 minuty w temperaturze pokojowej (rząd B). Zawartość PROBÓWEK musi być mieszana przez wstrząsanie. 9. Po 3 minutach wstrząsarka urządzenia zatrzyma się automatycznie i zostanie podany wynik. Odczyt 00 lub większy (+01, +02) powinien być interpretowany jako pozytywny (+), potwierdzający obecność pozostałości antybiotyków -laktamowych w próbkach mleka na poziomie czułości testu. Odczyt -01 i niższy (-02, -03) powinien być interpretowany jako wynik negatywny (-). Strona 6 z 6