Chemia organiczna. Instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla Biotechnologii (I rok)



Podobne dokumenty
Chemia organiczna. Instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla Biotechnologii (I rok)

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 2

[1 a] Acetanilid LISTA PREPARATÓW. Odczynniki: anilina 15 g lodowaty kwas octowy 15 ml pył cynkowy 0.1 g węgiel aktywny 0.2 g

Chemia Organiczna Syntezy

Zaawansowane oczyszczanie

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 1

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

CHEMIA SRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW

Oranż β-naftolu; C 16 H 10 N 2 Na 2 O 4 S, M = 372,32 g/mol; proszek lub

Zaawansowane oczyszczanie

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH: SULFONOWANIE ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

Katedra Chemii Organicznej. Przemysłowe Syntezy Związków Organicznych Ćwiczenia Laboratoryjne 10 h (2 x5h) Dr hab.

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

PREPARATYKA NIEORGANICZNA. Przykład 1 Ile kilogramów siarczanu(vi) żelaza (II) można otrzymać z 336 kg metalicznego żelaza?

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Fluorowcowanie część teoretyczna 2. F1 2,4,6-tribromoanilina 4. F2 2,4,6-tribromofenol 6

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

BENZOESAN FENYLU. Odczynniki Fenol 1,2g 0,013mola Chlorek benzoilu 2,2ml 0,019mola Wodorotlenek sodu 10ml - 2-Propanol 8ml -

Synteza eteru allilowo-cykloheksylowego w reakcji alkilowania cykloheksanolu bromkiem allilu w warunkach PTC.

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

V. Węglowodory. Hydroksylowe pochodne węglowodorów alkohole i fenole

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

1 ekwiwalent 1,45 ekwiwalenta 0,6 ekwiwalenta

Ćwiczenie 5 Izolacja tłuszczów z surowców naturalnych

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Piotr Chojnacki 1. Cel: Celem ćwiczenia jest wykrycie jonu Cl -- za pomocą reakcji charakterystycznych.

Synteza Cu(CH 3 COO) 2 H 2 O oraz (NH 4 ) 2 Ni(SO 4 ) 2 6H 2 O

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Estryfikacja. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

ĆWICZENIE 5. KOPOLIMERYZACJA STYRENU Z BEZWODNIKIEM MALEINOWYM (polimeryzacja w roztworze)

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Reakcje związków karbonylowych. Maria Burgieł R R C O. C O + Nu E C

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

ZJAWISKA FIZYCZNE I CHEMICZNE

1 ekwiwalent 2 ekwiwalenty 2 krople

ĆWICZENIE III. Reakcje charakterystyczne na węglowodory (alifatyczne, aromatyczne), alkohole, aldehydy i ketony

Substytucja nukleofilowa

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

Ćwiczenie 3. Otrzymywanie i badanie właściwości chemicznych alkanów, alkenów, alkinów i arenów.

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

1 ekwiwalent 4 ekwiwalenty 5 ekwiwalentów

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI PRZEZ DESTYLACJĘ I EKSTRAKCJĘ

stożek tulejka płaskie stożkowe kuliste Nominalna długość powierzchni szlifowanej 14/ / /32 29.

Ćwiczenie 50: Określanie tożsamości jonów (Farmakopea VII-IX ( )).

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

REAKCJE UTLENIAJĄCO-REDUKCYJNE

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

STRUKTURA A WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE I FIZYCZNE PIERWIASTKÓW I ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

Po wykonaniu każdego ćwiczenia należy zanotować spostrzeżenia i wnioski dotyczące przebiegu reakcji.

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

Utlenianie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. U1 Kwas benzoesowy z benzaldehydu 5. U2 Kwas benzoesowy z chlorku benzylu 6

REAKCJE W CHEMII ORGANICZNEJ

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

ĆWICZENIE NR 1 Analiza ilościowa miareczkowanie zasady kwasem.

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

MIKROANALIZY WĘGLOWODORY. W1 Utlenianie węglowodorów nadmanganianem potasu w środowisku kwaśnym (w temp. pokojowej) RÓWNANIA REAKCJI: OBSERWACJE:

1,2,3,4,6-PENTA-O-ACETYLO- -D-GLUKOPIRANOZA

Ćwiczenie 1. Zależność szybkości reakcji chemicznych od stężenia reagujących substancji.

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Ćwiczenia nr 2: Stężenia

Celem ćwiczenia jest pokazanie, że alkohole I rzędowe utleniają się do aldehydów, a te z kolei do kwasów karboksylowych

G-VI. Węgiel i jego związki z wodorem. Pochodne węglowodorów

Kolokwium z SUBSTYTUCJI NUKLEOFILOWEJI, ELIMINACJI, ADDYCJI Autorzy: A. Białońska, M. Kijewska

Zakład Chemii Organicznej: kopiowanie zabronione 1/5

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

CHEMIA LEKÓW ORGANICZNYCH INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

CHEMIA LEKÓW ORGANICZNYCH INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

1 ekwiwalent 0,85 ekwiwalentu 1,5 ekwiwalentu

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Acylacja. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Acylacja część teoretyczna 2

OTRZYMYWANIE KARBOKSYMETYLOCELULOZY

Chemiczne metody analizy ilościowej (laboratorium)

KWAS 1,2-DIBROMO-2-FENYLOPROPIONOWY

Ćwiczenie 1. Reakcje charakterystyczne kadmu(ii)

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

Transkrypt:

Chemia organiczna Instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla Biotechnologii (I rok) Zakład Chemii rganicznej Wydział Chemii Uniwersytet Wrocławski 2015

Lista wykonywanych ćwiczeń: [1a] Destylacja frakcyjna...3 A) bez deflegmatora...3 B) z deflegmatorem...3 [1b] Destylacja z parą wodną...4 [2] Substytucja elektrofilowa ćwiczenia probówkowe...5 [3a] trzymywanie barwników azowych...6 [3b] Rozróżnianie rzędowości amin...7 [4a] Kwas acetylosalicylowy (aspiryna)...8 [4b] p-acetaminofenol...10 [5a] Azotany(V) celulozy...11 [6a] Dibenzylidenoaceton...12 [6b] Reakcje związków karbonylowych ćwiczenia probówkowe...13 [7a] (±)-Menton...14 [7b] Reakcje redox ćwiczenia probówkowe...15 [8] Reakcja Cannizzaro dla aldehydu benzoesowego...16 2

1 1 1 [1a] Destylacja frakcyjna Do okrągłodennej kolby destylacyjnej o pojemności 200 ml wlać 100 ml otrzymanej mieszaniny toluenu i acetonu, wrzucić kamyczek wrzenny. Zmontować aparaturę do destylacji cieczy. dczynniki: mieszanina toluenu i acetonu 100 ml A) bez deflegmatora Destylat należy zbierać do cylindra miarowego. Co 2 ml otrzymanego destylatu notować temperaturę wrzenia. Pozostałość po destylacji (tzw. pogon) pozostawia się w kolbie destylacyjnej. B) z deflegmatorem Destylat z części A) zlać z powrotem do kolby destylacyjnej i powtórzyć doświadczenie jak w punkcie A) rozdzielając poszczególne frakcje - do momentu ustalenia się temperatury zbierać przedgon, a następnie frakcję pierwszego składnika. Po przedestylowaniu składnika bardziej lotnego temperatura będzie się wyraźnie zmieniać. Zbiera się wtedy frakcję pośrednią, a po ponownym ustaleniu temperatury wrzenia, frakcję drugiego składnika. Dla czystych składników określić współczynniki załamania światła. Sporządzić wykres zależności między ilością destylatu (oś X) i temperaturą wrzenia (oś Y) dla obydwu destylacji. Na podstawie wykresu określić (objętościowo) skład otrzymanej mieszaniny. Porównać sprawność aparatury do destylacji z deflegmatorem i bez. Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! 3 2 5 6 4 7 8 1 1 0 9 5 6 4 7 3 8 2 9 1 10 3

[1b] Destylacja z parą wodną Zmontować zestaw do destylacji z para wodną. 50 g aniliny umieścić w kolbie okrągłodennej, dodać ok. 50 ml wody oraz kilka granulek Na i destylować z parą wodną do momentu, gdy kilka kropel destylatu zebranych na szkiełku zegarkowym będzie klarowne. Destylat przenieść do rozdzielacza, wysycić solą kuchenną i oddzielić warstwę aniliny. Warstwę wodną ekstrahować 3-krotnie eterem dietylowym (3 razy po 30 ml). Połączone frakcje organiczne suszyć przy pomocy bezwodnego MgS0 4, a następnie odsączyć środek suszący. Pozostałość destylować zbierając frakcję wrzącą w temp 184-186 C. znaczyć wydajność procesu, zmierzyć współczynnik załamania światła. dczynniki: anilina 50 g eter dietylowy 90 ml NaCl MgS 4 2 5 6 4 7 3 8 2 9 1 1 10 5 6 4 7 3 8 2 9 1 10 Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! 4

[2] Substytucja elektrofilowa ćwiczenia probówkowe a) Do suchej probówki (bardzo ważne: sucha probówka!) wprowadzamy około 2 ml bezwodnego chloroformu lub czterochlorku węgla, a następnie rozpuszczamy w nim około 0.1 g lub 1 kroplę badanego węglowodoru np. n-heksanu, benzenu*, chlorobenzenu, naftalenu oraz antracenu. Do probówki dodajemy około 0,5-1 g sproszkowanego bezwodnego chlorku glinowego, tak aby część proszku zatrzymała się na ściankach probówki. Teraz zwilżamy go ostrożnie naszym roztworem. Zaobserwować zachodzące zmiany i spróbować je wyjaśnić. b) koło 1 ml każdego z węglowodorów (n-heksan, cykloheksen, benzen*, toluen) ostrożnie zmieszać w osobnych probówkach z 5-6-oma kroplami stężonego kwasu azotowego(v). bserwować zmiany zachodzące w probówkach. Wyjaśnić różnice w przebiegu reakcji. W razie braku oznak reakcji (w przypadku benzenu* i n-heksanu), do mieszaniny dodać kilka kropli stężonego kwasu siarkowego i wstrząsać. Wyjaśnić obserwowane zjawiska i napisać równania reakcji. Jaką rolę pełni tutaj kwas siarkowy? c) Do trzech probówek wlać po około 1 ml CC1 4, a następnie dodać: a) 2 ml cykloheksenu, b) kilka kryształków fenolu, c) 2 ml toluenu. dczynniki: brom N 3 stęż. CCl 4 CCl 3 AlCl 3 bezw. cykloheksen fenol toluen n-heksan benzen chlorobenzen naftalen antracen Do każdej z probówek dodać po kilka kropli Br 2. Zawartość probówek wstrząsać przez chwilę. Zaobserwować zmiany. Do produktów reakcji dodać nieco wody destylowanej, wstrząsnąć i sprawdzić odczyn. Wyjaśnić różnice i napisać reakcje chemiczne. Brom jest silnie żrący i trujący! Fenol ma własności parzące, działa szkodliwie na skórę. W razie poparzenia skórę należy zmywać wodą wapienną. * Próby z benzenem wykonuje w formie pokazu opiekun grupy. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 5

[3a] trzymywanie barwników azowych Roztwór soli diazoniowej koło 0.1 g każdej z badanych amin* rozpuścić osobno w 5 ml 10% Cl, ochłodzić wodą z lodem do 0 C, po czym dodawać kroplami roztwór 1 g NaN 2 w 5 ml 2 do dodatniej próby z papierkiem jodoskrobiowym (niebieskie zabarwienie papierka). Roztwór fenolu dczynniki: anilina kwas p-aminobezoesowy kwas sulfanilowy 10% Cl azotan(iii) sodu fenol 1-naftol 2-naftol 10% Na 0.1 g 0.1 g 0.1 g 5 ml 1 g 0.1 g 0.1 g 0.1 g 5 ml koło 0.1 g każdego z fenoli** rozpuścić osobno w 5 ml 10% Na. Sprzęganie na bibule (patrz rys. obok) Na krążek bibuły nanieść po jednej kropli alkalicznego roztworu każdego z fenoli. Krople nanosić na okręgu o promieniu około 2 cm. W środek okręgu nanieść roztwór soli diazoniowej i obserwować zjawiska na granicy roztworu soli diazoniowej oraz fenolu. Sprzęganie w probówce Do trzech probówek dodać po dwie krople alkalicznego roztworu danego fenolu. Do każdej z nich dodać po dwie krople roztworu soli diazoniowej. Zawartość probówek rozcieńczyć 5 ml wody. Roztwór z każdej probówki podzielić na dwie części i do jednej połowy dodać roztworu Cl do uzyskania odczynu kwaśnego, a do drugiej roztworu Na do uzyskania odczynu alkalicznego. bserwować i zanotować zmiany barwy. Ćwiczenie należy przeprowadzić z następującymi związkami: * aminy anilina, kwas p-aminobenzoesowy, kwas sulfanilowy. ** fenole 1-naftol, 2-naftol, fenol; kreślić barwy i rozpuszczalność powstających barwników w kwaśnym i zasadowym środowisku, napisać równania reakcji chemicznych, wyjaśnić własności indykatorowe tych związków. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 6

[3b] Rozróżnianie rzędowości amin 1. Reakcje amin alifatycznych z kwasem azotawym a) Do 3 kropli I-rzędowej aminy alifatycznej (np.: n-butyloaminy) umieszczonych w probówce, dodać 0.5 ml 10% roztworu kwasu solnego i 3 krople 10% roztworu azotanu(iii) sodu. bserwować postęp reakcji i napisać jej równanie. b) Do probówki z 0.5 ml wodnego roztworu II-rzędowej aminy alifatycznej (np. dietyloaminy) dodać 0.5 ml kwasu octowego i kilka kropli 10% roztworu azotanu(iii) sodu. Tworzy się żółta, oleista N-nitrozoamina. Napisz równanie reakcji. dczynniki: n-butyloamina dietyloamina difenyloamina N,N-dimetyloanilina 10% kwas solny Cl stęż azotan(iii) sodu azotan(v) sodu kwas octowy. 20% Na 2. Reakcje amin aromatycznych z kwasem azotawym a) Szczyptę difenyloaminy (kilka drobnych kryształków na czubek szpatułki) rozpuścić w probówce w 5 ml wolnego od azotanów stężonego kwasu siarkowego. Roztwór podzielić na dwie probówki. Małe kryształki azotanu(v) sodu oraz azotanu(iii) sodu rozpuścić w dwu probówkach w 10 ml wody destylowanej. Do roztworu z difenyloaminą dodawać kroplami roztwór azotanu(v), a do drugiej próbki azotanu(iii) sodu, starannie obserwując zachodzące zjawiska. Napisać równania reakcji. b) Do probówki z 0.5 ml III-rzędowej aminy (N,N-dimetyloaniliny) dodać 3 ml stężonego kwasu solnego i 2 ml wody. Roztwór ochłodzić w łaźni lodowej i dodać małymi porcjami, ciągle mieszając, 10% roztwór azotanu(iii) sodu do trwałego jego nadmiaru (papierek jodoskrobiowy powinien być niebieski). dstawić mieszaninę w lodzie do odstania, ostrożnie zdekantować ciecz znad osadu. sad przemyć małą porcją lodowatej wody i ponownie ją zdekantować. Do osadu dodać 20% roztwór zasady sodowej. Zanotować obserwacje, zapisać równania reakcji. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 7

[4a] Kwas acetylosalicylowy (aspiryna) C C C C C 3 C 3 2 S 4 + + 3 C C C C 3 kwas acetylosalicylowy (aspiryna); rozkład 129 133 C W małej kolbie stożkowej 200 250 ml dczynniki: z szeroką szyją umieszcza się 6 g bezwodnego kwas salicylowy 6 g kwasu salicylowego, 8.5 ml bezwodnika bezwodnik octowy 9.5 g (8.5 ml) octowego i dodaje 0.5 ml stężonego kwasu kwas siarkowy 0.5 ml etanol 15 ml siarkowego, mieszając przy tym starannie zawartość kolby ruchem wirowym. Następnie mieszaninę ogrzewa się na łaźni wodnej do około 50 60 C przez około 20 minut, mieszając ją jednocześnie za pomocą bagietki. Mieszaninę pozostawia się do ostygnięcia, wstrząsając ją co pewien czas, dodaje 150 ml wody, starannie miesza i sączy pod zmniejszonym ciśnieniem przez lejek Büchnera. czyszczanie i analiza: W trzech probówkach zawierających po 5 ml wody rozpuścić parę kryształków: 1. fenolu 2. kwasu salicylowego 3. produktu reakcji Do każdej probówki dodać 1% roztworu chlorku żelazowego. Fe(III) tworzy z fenolami kompleksy o barwie od czerwonej do fioletowej w zależności od użytego fenolu. bserwować i zanotować ewentualne zabarwienie roztworów. Surowy produkt przenieść do zlewki o pojemności 250 ml i dodać 50 ml nasyconego roztworu Na 2 C0 3. Mieszać aż do ustania reakcji z węglanem. Alkaliczny roztwór przesączyć przez lejek Büchnera. Powinno się w ten sposób usunąć większość polimeru, który może być produktem ubocznym reakcji. Przemyć zlewkę, w której prowadzona była reakcja oraz lejek 15 ml wody. Połączyć z głównym przesączem. W zlewce o pojemności 250 ml przygotować roztwór 9 ml stężonego kwasu solnego w 30 ml wody i ostrożnie wlać do niego otrzymany uprzednio przesącz. Powinna wytrącić się aspiryna. Jeśli osad nie wypada, należy sprawdzić, czy roztwór ma odczyn kwaśny. Jeśli nie, należy dodać roztworu kwasu solnego aż do uzyskania kwaśnego odczynu. Uzyskaną 8

mieszaninę schłodzić na łaźni wodno-lodowej i przesączyć przez lejek Büchnera. trzymany produkt, po przemyciu zimną wodą, porządnie odcisnąć. Pozostawić do wysuszenia na uprzednio zważonym szkiełku zegarkowym. Po wysuszeniu produkt zważyć, obliczyć wydajność reakcji, zmierzyć temperaturę topnienia. Przeprowadzić próbę z FeC1 3 na obecność nieprzereagowanego kwasu salicylowego. Aby otrzymany przez wytrącenie produkt otrzymać w formie krystalicznej, należy przeprowadzić krystalizację aspiryny z etanolu. W małej zlewce (25 ml) rozpuścić otrzymany produkt w minimalnej ilości etanolu (ok. 20 ml) ogrzewając na łaźni wodnej. i wylewa roztwór do około 70 ml gorącej wody. Jeśli osad wydzieli się natychmiast, mieszaninę ogrzewa się ponownie do uzyskania przezroczystego roztworu, który pozostawia się do powolnego ochłodzenia. sad wytrąca się w postaci pięknie wykształconych igieł, które należy przesączyć na lejku Büchnera, wysuszyć, zważyć. bliczyć wydajność krystalizacji i zmierzyć temperaturę topnienia Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 9

[4b] p-acetaminofenol N 2 N C 3 3 C + + + 3 C C 3 Umieścić 6 g p-aminofenolu oraz 100 ml wody w zlewce dczynniki: o pojemności 250 ml. Dodać 4 ml stężonego kwasu p-aminofenol 6 g solnego i mieszać aż do rozpuszczenia aminy. Jeśli amina bezwodnik octowy 8.5 ml nie rozpuści się całkowicie, należy dodać kroplami nieco octan sodu 10.5 g więcej kwasu. Dodać do roztworu łyżeczkę węgla aktywnego i ogrzewać na wrzącej łaźni wodnej przez 5 minut w celu usunięcia barwnych zanieczyszczeń. Usunąć węgiel aktywny przez sączenie na gęstym sączku karbowanym. Przygotować roztwór 10.5 g octanu sodu w 32 ml wody. Jeśli nie wszystko się rozpuści, przesączyć przez sączek karbowany. Roztwór p- aminofenolu przenieść do zlewki o pojemności 250 ml i ogrzewać na wrzącej łaźni wodnej. Dodać roztwór buforu octanowego. Natychmiast dodać bezwodnik octowy i mieszając ogrzewać jeszcze przez około 20 minut. Schłodzić mieszaninę reakcyjną przez zanurzenie zlewki w łaźni wodno-lodowej. Mieszać aż do rozpoczęcia krystalizacji p-acetaminofenolu. Zlewkę pozostawić w łaźni przez około 1 godzinę. trzymane kryształy przesączyć na lejku Büchnera, przemyć zimną wodą i odcisnąć. Pozostawić do wysuszenia na uprzednio zważonym szkiełku zegarkowym. Przeprowadzić próbę na obecność wolnej grupy aminowej w produkcie. W tym celu w probówkach umieścić: w pierwszej p-aminofenol, a w drugiej produkt i dodać do nich roztworu ninhydryny, w razie potrzeby ogrzać (ninhydryna tworzy ze związkami posiadającymi wolną grupę aminową związki o różowo-fioletowej barwie). trzymany surowy produkt rozpuścić w minimalnej ilości wrzącej wody (w zlewce o pojemności 250 ml). Roztwór pozostawić do powolnego schłodzenia. Gdy pojawią się pierwsze kryształy, zlewkę zanurzyć w łaźni wodno-lodowej na około 15 minut. Uzyskane kryształy odsączyć na lejku Büchnera, wysuszyć, zważyć, obliczyć wydajność i sprawdzić ich temperaturę topnienia. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 10

[5a] Azotany(V) celulozy N 2 N 3 + 2 S 4 N 2 R R R R N 2 Przygotować mieszaninę nitrującą: Do kolby stożkowej z 25 ml stężonego kwasu azotowego dczynniki: oziębionego i umieszczonego w łaźni lodowej dodać N 3 stęż. 25 ml 2 S 4 stęż. 40 ml małymi porcjami 40 ml stężonego kwasu siarkowego. wata celulozowa 2 g a) Diazotan celulozy: Połowę tej mieszaniny wlać do zlewki i ochłodzić poniżej 20 C, po czym do zlewki wprowadzamy 1 g waty celulozowej i mieszamy bagietką szklaną. Po upływie 3 minut (nie dłużej!) przenieść watę do wody. Starannie przemywać bieżącą wodą przez 10 minut, odcisnąć nadmiar wody i dokładnie wysuszyć na powietrzu. b) Triazotan celulozy: Do drugiej porcji mieszaniny nitrującej włożyć następną porcję (1 g) waty i prowadzić proces "nitrowania" przez 15 minut. Przenieść watę do wody i postępować jak poprzednio. Próba spalania: Wziąć mniej więcej jednakowe suche kawałki waty, diazotanu celulozy i triazotanu celulozy i pod wyciągiem porównać szybkość spalania przez wprowadzenie substancji w płomień palnika gazowego. Pracować w gumowych rękawicach i okularach! Ćwiczenie wykonywać wyłącznie pod wyciągiem! 11

[6a] Dibenzylidenoaceton 2 C + C 3 C C 3 Na dibenzylidenoaceton (1,5-difenylo-1,4-pentadien-2-on); tt. 112 C Do kolby okrągłodennej zaopatrzonej w termometr i umieszczonej w łaźni wodnej (dużej krystalnicy z wodą) na mieszadle magnetycznym, wlewa się roztwór 5 g Na w 50 ml wody i 40 ml metanolu. Enrgicznie mieszając zawartośc kolby dodaje się połowę uprzednio przygotowanego roztworu 5.3 g aldehydu benzoesowego w 2.4 ml acetonu. Temperatura mieszaniny reakcyjnej powinna wynosić 20-25 C (w razie potrzeby do łaźni wodnej wrzucić małą kostkę lodu). Po 15 minutach wlewa się drugą połowę tego roztworu i miesza jeszcze przez 30 minut w tej temperaturze. Jasnożółty, kłaczkowaty osad odsącza się na lejku sitowym i przemywa wodą aż do obojętnego odczynu przesączu (co jakiś czas sprawdzać papierkiem uniwersalnym wyciek z lejka) i suszy na powietrzu. dczynniki: aldehyd benzoesowy 5 ml (5.3 g) aceton 2.4 ml (1.5 g) metanol 40 ml Na 5 g metanol ok. 50 ml Surowy, suchy produkt oczyszcza się przez krystalizację na gorąco z minimalnej ilości metanolu. Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! 12

[6b] Reakcje związków karbonylowych ćwiczenia probówkowe a) Próba jodoformowa: W probówce umieścić ok. 5 kropli acetonu i dodać 3 ml 5% roztworu Na oraz 2-3 krople 20% roztworu jodu w jodku potasowym. Całość ogrzać we wrzącej łaźni wodnej. Powtórzyć eksperyment biorąc zamiast acetonu kolejno: etylometyloketon, cykloheksanon, propanol oraz propan-2-ol. Porównać wyniki, zapisać równania reakcji. b) Połączenia bisulfitowe: Kilka kropli aldehydu benzoesowego silnie wytrząsnąć w probówce z pięciokrotną ilością około 40% roztworu wodorosiarczanu(iv) sodowego. Zaobserwować wypadanie osadu. Powtórzyć eksperyment używając acetonu oraz cykloheksanonu. Porównać wyniki, zapisać równania reakcji. c) Powstawanie fenylohydrazonów: Kilka kropli aldehydu benzoesowego silnie wytrząsnąć w probówce z kilkoma mililitrami wody, dodać kroplę fenylohydrazyny i ponownie wytrząsnąć. Dodać kroplami kwas octowy aż do wytrącenia osadu. Powtórzyć eksperyment używając cykloheksanonu. Porównać wyniki, zapisać równania reakcji. d) Bromowanie enolu: W zlewce o pojemności 400 ml zmieszać 50 ml wody z ok. 0.2 ml (duża kropla) acetylooctanu etylu i 0.2 ml (kropla) 7% roztworu chlorku żelazowego. Do zabarwionej na fioletowo mieszaniny dodać mieszając wodę bromową aż do zaniku fioletowej barwy. Po pewnym czasie zabarwienie pojawia się ponownie, a dodatek kolejnej porcji wody bromowej powoduje znów jego zniknięcie. Zanotować obserwacje. Napisać równania reakcji. dczynniki: aceton etylometyloketon aldehyd benzoesowy cykloheksanon propanol propan-2-ol 5% Na 20% I 2 /KI 40% wodorosiarczan(iv) sodu fenylohdrazyna kwas octowy acetylooctan etylu 0.2 ml 7% r-r FeCl 3 0.2 ml 13

[7a] (±)-Menton 1 C 3 C 3 C C 3 C C 3 3 C C 3 (±)-menton; tw. 210 C (98 100 C przy 18 mmg) Do kolby kulistej o pojemności 250 ml ustawionej dczynniki: na mieszadle magnetycznym z płytą grzejną dodaje (±)-mentol 10 g się 65 ml wody oraz 6 ml kwasu siarkowego(vi) dwuchromian sodu 23.5 g i rozpuszcza się w niej 23.5 g Na 2 Cr 2 7. Mieszając stężony 2 S 4 6 ml eter etylowy 50 ml do roztworu dodaje się powoli, w 3 porcjach, 5% roztwór Na około 80 ml mentol. W trakcie dodawania wydziela się ciepło i roztwór powinien osiągnąć temperaturę około 55 C. Jeśli temperatura jest niższa, kolbę należy łagodnie ogrzewać. W pierwszym etapie tworzy się czarna gąbczasta masa, która mięknie w miarę wzrostu temperatury i na koniec tworzy się na powierzchni brązowy olej. Gdy temperatura spada utlenianie jest zakończone. Mieszaninę reakcyjną przenosi się do rozdzielacza i ekstrahuje 50 ml eteru, ekstrakt eterowy przemywa się czterokrotnie 20 ml porcjami 5% roztworu Na (do jasnożółtego zabarwienia roztworu eterowego), a następnie jeden raz wodą. Po wysuszeniu bezwodnym siarczanem magnezu (około 1 godziny) i przesączeniu, eter oddestylowuje się na łaźni wodnej lub wyparce obrotowej, a pozostałość destyluje się pod normalnym ciśnieniem. Menton zbiera się jako frakcję wrzącą w granicach 205-210 C. Zmierzyć współczynnik załamania światła produktu. Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! strożnie! Sole chromu(vi) są rakotwórcze! 1 A. I. Vogel, Preparatyka organiczna WNT, Warszawa 1964, str. 341. 14

[7b] Reakcje redox ćwiczenia probówkowe 1. Utlenianiew nadmanganianem potasowym a) Do trzech probówek nalać po ok. 1 ml 1% wodnego roztworu KMn 4, a następnie dodać po 2 ml odpowiedniego węglowodoru: a) n-heksanu (lub n-heptanu), b) cykloheksenu lub heksenu, c) benzenu*. Zawartość probówek przez chwilę mocno wytrząsać i obserwować zachodzące zmiany. Wyjaśnić różnice w przebiegu reakcji. b) Do kilku kropli toluenu dodać kilka kropli stęż. kwasu siarkowego i ostrożnie, małymi porcjami 5% r-r KMn 4. grzewać ostrożnie na wrzącej łaźni wodnej. Reakcję powtórzyć używając odpowiednio: a) alkoholu etylowego, b) kwasu mrówkowego. Wyjaśnić obserwowane zjawiska, zapisać reakcje. 2. Próba Tollensa Do ok. 1 ml odczynnika Tollensa (amoniakalny r-r tlenku srebra) dodać kilka kropli formaldehydu i ostrożnie ogrzać (bez wstrząsania!). Powtórzyć reakcję używając odpowiednio: a) aldehydu octowego, b) acetonu, c) kwasu mrówkowego, d) glukozy, e) sachrozy. Porównać obserwacje, zapisać równania reakcji. 3. Próba Fehlinga Zmieszać równe ilości odczynników Fehling I i II. Do otrzymanego klarownego r-ru dodać kilka kropli formaldehydu i ogrzać. dczynniki: n-heksan (n-heptan) cykloheksen (heksen) benzen* toluen alkohol etylowy kwas mrówkowy aldehyd octowy kwas mrówkowy glukoza sachroza odczynnik Tollensa odczynniki Fehling I i II 5% r-r KMn 4 5% r-ru Na stęż. 2 S 4 20% r-r I 2 w KI Powtórzyć reakcję używając odpowiednio: a) aldehydu octowego, b) acetonu, c) kwasu mrówkowego, d) glukozy, e) sachrozy. Porównać obserwacje, zapisać równania reakcji. Pracować w okularach! Ćwiczenia wykonywać pod wyciągiem! 15

[8] Reakcja Cannizzaro dla aldehydu benzoesowego 2 C K C 2 + C - W małej zlewce rozpuścić 0.108 mola (6 g) dczynniki: stałego wodorotlenku potasu w 7.2 ml wody. aldehyd benzoesowy 8 ml (8.4 g) trzymany roztwór schłodzić do temperatury chlorek metylenu 40 ml kwas solny 16 ml 25 C. K 6 g W erlenmajerce o pojemności 100 ml umieścić 8 ml (8.4 g, 0.08 mola) benzaldehydu. Dodać roztworu K, zamknąć szczelnie i mocno mieszać aż do utworzenia emulsji (między korek a szlif kolby wstawić pasek papieru lub folii, starać się nie zanieczyścić szlifu alkalicznym roztworem). Mieszaninę pozostawić do następnych zajęć. Do tego czasu powinien zaniknąć zapach aldehydu benzoesowego. Do mieszaniny dodać ok. 20 ml wody i mieszać aż do rozpuszczenia powstałego osadu Zasadowy roztwór wyekstrahować chlorkiem metylenu (3 x 10 ml) zbierając zarówno warstwę organiczną (a), jak i warstwę wodną (b). a) Warstwę organiczną zebrać do kolbki o pojemności 50 ml i oddestylować nadmiar rozpuszczalnika na wrzącej łaźni wodnej. Gdy w kolbce pozostanie około 5 ml, roztwór schłodzić i przenieść do dużej probówki. Kolbkę przepłukać jednokrotnie małą objętością chlorku metylenu i roztwór dołączyć do r-ru w probówce. Używając pipety Pasteura przemyć roztwór dwukrotnie 20% tiosiarczanem sodu aby usunąć resztki nieprzereagowanego benzaldehydu, a następnie dwukrotnie wodą i wysuszyć nad siarczanem magnezu. Usunąć środek suszący przesączając mieszaninę do uprzednio zważonej małej kolbki i oddestylować na łaźni wodnej chlorek metylenu. Zważyć pozostały w kolbce alkohol benzoesowy i obliczyć wydajność reakcji. b) Zasadowy roztwór wodny (warstwa wodna po ekstrakcji) wlać silnie mieszając do zlewki z mieszaniną 16 ml stężonego kwasu solnego, 16 ml wody i około 16 g pokruszonego lodu. Upewnić się papierkiem wskaźnikowym, czy roztwór jest kwaśny. trzymany osad przesączyć przemywając małą porcją zimnej wody i przekrystalizować z wody. Kryształy po wysuszeniu zważyć i obliczyć wydajność reakcji. Zmierzyć temperaturę topnienia. Pracować w okularach! Ćwiczenie wykonywać pod wyciągiem! 16