PODSTAWOWE CZYNNOŚCI LABORATORYJNE



Podobne dokumenty
PODSTAWOWE CZYNNOŚCI LABORATORYJNE

stożek tulejka płaskie stożkowe kuliste Nominalna długość powierzchni szlifowanej 14/ / /32 29.

Chemia Organiczna Syntezy

REGULAMIN BHP PRACOWNI CHEMICZNEJ. POKAZ SZKŁA. TECHNIKA PRACY LABORATORYJNEJ. Wstęp. Regulamin pracowni studenckiej.

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

ROZDZIELANIE I OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI. EKSTRAKCJA.

PROCESY JEDNOSTKOWE W TECHNOLOGIACH ŚRODOWISKOWYCH DESTYLACJA

Katedra Chemii Organicznej. Przemysłowe Syntezy Związków Organicznych Ćwiczenia Laboratoryjne 10 h (2 x5h) Dr hab.

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

Ściąga eksperta. Mieszaniny. - filmy edukacyjne on-line Strona 1/8. Jak dzielimy substancje chemiczne?

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

DESTYLACJA JAKO METODA WYODRĘBNIANIA I OCZYSZCZANIA ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

CEL ĆWICZENIA Zapoznanie studentów z chemią 14 grupy pierwiastków układu okresowego

[1 a] Acetanilid LISTA PREPARATÓW. Odczynniki: anilina 15 g lodowaty kwas octowy 15 ml pył cynkowy 0.1 g węgiel aktywny 0.2 g

Synteza eteru allilowo-cykloheksylowego w reakcji alkilowania cykloheksanolu bromkiem allilu w warunkach PTC.

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

1 ekwiwalent 1,45 ekwiwalenta 0,6 ekwiwalenta

Zaawansowane oczyszczanie

Zaawansowane oczyszczanie

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Zajęcia 10 Kwasy i wodorotlenki

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH: SULFONOWANIE ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

Wykonanie destylacji:

UJ - Collegium Medicum, KChO, Pracownia chemii organicznej S. Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona

DOSTAWA SZKŁA I DROBNYCH PRODUKTÓW LABORATORYJNYCH

Zadanie 2. (0 1) W tabeli podano rodzaje mieszanin oraz wybrane sposoby ich rozdzielania. Rodzaj mieszaniny Metoda rozdzielania mieszaniny

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 2

KRYSTALIZACJA JAKO METODA OCZYSZCZANIA I ROZDZIELANIA SUBSTANCJI STAŁYCH

ĆWICZENIE 5. KOPOLIMERYZACJA STYRENU Z BEZWODNIKIEM MALEINOWYM (polimeryzacja w roztworze)

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI PRZEZ DESTYLACJĘ I EKSTRAKCJĘ

Fluorowcowanie. Symbol Nazwa otrzymywanego preparatu strona. Fluorowcowanie część teoretyczna 2. F1 2,4,6-tribromoanilina 4. F2 2,4,6-tribromofenol 6

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

G-VI. Węgiel i jego związki z wodorem. Pochodne węglowodorów

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

1 ekwiwalent 6 ekwiwalentów 0,62 ekwiwalentu

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

Obserwacje: Wnioski:

Spis treści. Wstęp... 9

Zadanie nr 1 - Szkło laboratoryjne: CHEMLAND

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ- Kwasy i wodorotlenki

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

Ćwiczenie 1. Ćwiczenie Temat: Podstawowe reakcje nieorganiczne. Obliczenia stechiometryczne.

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

Synteza Cu(CH 3 COO) 2 H 2 O oraz (NH 4 ) 2 Ni(SO 4 ) 2 6H 2 O

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

1 ekwiwalent 2 ekwiwalenty 2 krople

Litowce i berylowce- lekcja powtórzeniowa, doświadczalna.

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

V. Węglowodory. Hydroksylowe pochodne węglowodorów alkohole i fenole

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

ODWADNIANIE OSADU NA FILTRZE PRÓŻNIOWYM

Ćwiczenie 3. Otrzymywanie i badanie właściwości chemicznych alkanów, alkenów, alkinów i arenów.

Odwadnianie osadu na filtrze próżniowym

Zadanie: 1 (1pkt) Zadanie: 2 (1 pkt)

PREPARATYKA NIEORGANICZNA. Przykład 1 Ile kilogramów siarczanu(vi) żelaza (II) można otrzymać z 336 kg metalicznego żelaza?

1 ekwiwalent 3 ekwiwalenty 2 ekwiwalenty

Wersja z dnia: Metoda piknometryczna jest metodą porównawczą. Wyznaczanie gęstości substancji ciekłych

PROGRAM ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII (SEMESTR LETNI) OCHRONA ŚRODOWISKA

Kroplomierz szklany z doszlifowaną pipetką, 50 ml Kroplomierz szklany z doszlifowaną pipetką, 100 ml Kroplomierz

SZKŁO LABORATORYJNE. SZKŁO LABORATORYJNE (wg składu chemicznego): Szkło sodowo - wapniowe (laboratoryjne zwykłe)

Arkusz kalkulacyjny część V

KWAS 1,2-DIBROMO-2-FENYLOPROPIONOWY

V. Czynności laboratoryjne związane z wymianą energii cieplnej. 1. Ogrzewanie

Utylizacja osadów ściekowych

STRUKTURA A WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE I FIZYCZNE PIERWIASTKÓW I ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Kwota jednostkowa. Cena. Podatek VAT. netto. brutto

Projekt współfinansowany przez Unię Europejską w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego

Prawo dyfuzji (prawo Ficka) G = k. F. t (c 1 c 2 )

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

Ćwiczenie 5 Izolacja tłuszczów z surowców naturalnych

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Badanie właściwości związków powierzchniowo czynnych

ODNAWIALNE ŹRÓDŁA ENERGII I GOSPODARKA ODPADAMI STUDIA STACJONARNE

2. Procenty i stężenia procentowe

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

ROZDZIELANIE I OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI. DEKANTACJA. SĄCZENIE. KRYSTALIZACJA. SUBLIMACJA.

Magazynowanie cieczy

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

1 ekwiwalent 1 ekwiwalent

ROZDZIELANIE I OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI. DESTYLACJA.


TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 1

Projekt współfinansowany przez Unię Europejską ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: WAŻENIE, SUSZENIE, STRĄCANIE OSADÓW, SĄCZENIE

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

Transkrypt:

PODSTAWOWE CZYNNOŚCI LABORATORYJNE MYCIE I SUSZENIE SZKLANYCH NACZYŃ LABORATORYJNYCH Wszystkie szklane naczynia używane w pracach laboratoryjnych powinny być przed użyciem starannie umyte, a ponadto do wielu syntez dokładnie wysuszone. Najlepiej jest myć brudne szkło zaraz po użyciu, dopóki pamięta się rodzaj zanieczyszczeń. Osady i zanieczyszczenia pozostawione przez dłuższy czas ulegają często zmianom chemicznym, co powoduje, że trudniej je usunąć. Żrące osady o charakterze zasadowym mogą spowodować uszkodzenie szkła. Jeżeli zanieczyszczeń stałych jest dużo, należy najpierw usunąć je mechanicznie za pomocą szczotki (jeżeli można ją wprowadzić do naczynia) i odpowiedniego detergentu. Nie należy używać proszków zawierających twarde składniki, które mogą rysować szkło. Naczynie myje się tak długo, aż brud z powierzchni szkła zostanie usunięty. Jeżeli jednorazowe mycie nie wystarczy, czynność tę należy powtórzyć. Następnie naczynie płucze się dokładnie wodą destylowaną. Jeśli mieszanina wody z detergentem nie daje zadowalających wyników, należy zastosować inne rozpuszczalniki. Znając rodzaj zanieczyszczeń, które należy usunąć, można zastosować odpowiedni rozpuszczalnik. Substancje o charakterze zasadowym odmywa się rozcieńczonymi lub stężonymi kwasami mineralnymi, substancje o charakterze kwasowym roztworem węglanu sodu lub wodorotlenku sodowego. Do rozpuszczania substancji obojętnych używa się alkoholu etylowego, acetonu, benzyny, chloroformu, eteru dietylowego itp. Zwęglone resztki po reakcji usuwa się poprzez utlenianie za pomocą mieszaniny chromowej. Naczynia po wstępnym umyciu pozostawia się na pewien czas w mieszaninie chromowej. Po wyjęciu z niej, naczynie przemywa się wodą wodociągową, następnie destylowaną i suszy. *Mieszanina chromowa: 5 g dichromianu potasu rozp. w 5 cm 3 wody i dodaje się powoli, stale mieszając, 100 cm 3 stęż. kwasu siarkowego. Najczęściej naczynia szklane suszymy w suszarkach elektrycznych (z wyjątkiem szkła miarowego). W przypadku konieczności szybkiego wysuszenia dodaje się do naczynia kolejno niewielką ilość alkoholu etylowego (2-3 razy), po czym eteru dietylowego, który usuwa alkohol, a następnie eter usuwa się przez odessanie z powietrzem lub wydmuchanie. Naczyń laboratoryjnych nie wyciera się wewnątrz, a do wycierania z zewnątrz służy ścierka lniana. 1

APARATURA I TECHNIKA PRACY Gatunki szkła Do reakcji prowadzonych w laboratorium chemii organicznej używa się najczęściej naczyń i aparatury szklanej. Zaletą szkła jest jego przezroczystość, która umożliwia obserwowanie przebiegu reakcji. Szkło jest też wytrzymałe na ściskanie i rozciąganie. Wadą jest bardzo mała odporność na uderzenie. Własności fizyczne i chemiczne szkła zależą od jego gatunku i wahają się w dość szerokich granicach. Szkło jest materiałem o dużej odporności na działanie kwasów i związków organicznych, ale mniej odporne na działanie zasad, które mogą w wyższych temperaturach je rozpuszczać, a także na działanie fluorowodoru i fluoru. W handlu dostępne są różne gatunki szkła, różniące się składem chemicznym i własnościami fizycznymi. Do wyrobu szkła laboratoryjnego używa się najczęściej szkła jenajskiego charakteryzującego się dobrą odpornością na kwasy i alkalia, ale względnie dużym współczynnikiem rozszerzalności termicznej. Powoduje to częste pęknięcia naczyń gwałtownie ogrzanych lub ochłodzonych. Cienkie ściany naczyń zapobiegają częściowo temu zjawisku, ale z kolei powodują, że naczynia łatwo ulegają stłuczeniu. Ze szkła laboratoryjnego Jena, a także Duran i Pyrex, wyrabiane są podstawowe naczynia używane w laboratorium. ZLEWKI Są to naczynia (Ryc.1) różnej pojemności o płaskim dnie. Spełniają one rolę naczyń pomocniczych, głównie do pracy z roztworami wodnymi. Mogą one służyć też jako naczynia do przeprowadzania reakcji przebiegających w temperaturach nie przekraczających 100 o C, kiedy nie jest konieczne izolowanie układu od wpływów powietrza i wilgoci. Ryc. 1. Naczynia laboratoryjne: zlewka wysoka i niska. KOLBY PŁASKODENNE Naczynia te (z szlifem i bez szlifów ryc. 2) nadają się głównie do czynności, które nie wymagają długotrwałego ogrzewania, zwłaszcza do przygotowywania i przechowywania roztworów. 2

Kolby stożkowe, tzw. Erlenmeyera o różnej pojemności, mają dużą powierzchnię ogrzewania, a małą parowania. Stosowane są do krystalizacji, gdyż można z nich łatwo wydobywać zarówno ciekłe, jak i stałe substancje bez większych strat. Kolby te służą także do przechowywania roztworów. Nie można ich używać w pracach wymagających zmniejszonego ciśnienia i wysokich temperatur. Ryc. 2. Kolby płaskodenne stożkowe: Erlenmeyera i ssawkowa oraz kolba kulista Kolby płaskodenne z tubusem bocznym tzw. kolby ssawkowe są zrobione ze szkła grubościennego i używane do sączenia pod zmniejszonym ciśnieniem oraz jako kolby zabezpieczające w zestawach próżniowych. KOLBY OKRĄGŁODENNE KULISTE Ryc. 3. Kolby okrągłodenne. Kolby tego rodzaju (ryc. 3) są bardziej odporne termicznie. Wykonane są najczęściej ze szlachetnych gatunków szkła. Służą do pracy w wysokich temperaturach, np. do destylacji, i wtedy mogą być zaopatrzone w nasadkę destylacyjną, deflegmator lub kolumnę rektyfikacyjną. Kolb kulistych z długą szyją używa się specjalnie do destylacji z parą wodną, a kolb kulistych z krótką szyjką jako odbieralników do destylacji pod zmniejszonym ciśnieniem. Bardziej skomplikowane czynności, w których ogrzewanie odbywa się z równoczesnym mechanicznym mieszaniem i wkraplaniem, wykonuje się zazwyczaj w kolbach z dwiema lub trzema szyjami. Ich pojemność waha się od 25 do 5000 cm 3. Dla cieczy niskowrzących stosuje się kolby z wysoko osadzoną rurką boczną, a dla wysokowrzących z nisko osadzoną. Do 3

destylacji cieczy łatwo przegrzewających się, pieniących, a także destylacji pod zmniejszonym ciśnieniem używa się tzw. kolby Claisena, tj. kolby okrągłodennej z dwiema szyjami i rurką boczną. Kolbę destylacyjną można również zestawić z odpowiedniej kolby oraz z używanych do tego celu nasadek (ryc. 4). Stosuje się nasadki destylacyjne proste oraz nasadki Claisena. Ryc. 4. Nasadki destylacyjne CHŁODNICE Chłodnice (ryc. 5) służą do skraplania par w pracach laboratoryjnych. Podczas ogrzewania w celu niedopuszczania do ulatniania się łatwo lotnych substancji stosuje się chłodnice zwrotne. Na chłodzącej powierzchni powstająca para skrapla się i spływa z powrotem do mieszaniny reagującej. Ryc. 5. Chłodnice: kulkowa, spiralna i Liebiga. Chłodnicę Liebiga stosuje się przede wszystkim jako chłodnicę destylacyjną (do temp. ok. 160 o C). Do temperatury ok. 120 o C stosuje się jako czynnik chłodzący strumień wodny, a do chłodzenia par o temp. 120-160 o C nieruchomy płaszcz wodny. Chłodnicę tę rzadko stosuje się jako chłodnicę zwrotną z powodu małej powierzchni chłodzącej i laminarnego przepływu par. Chłodnicę kulkową stosuje się tylko jako chłodnicę zwrotną. Dzięki rozszerzeniom (kulkom) przepływ par staje się burzliwy i w związku z tym chłodnica taka ma znacznie większą zdolność chłodzenia niż chłodnica Liebiga. 4

Chłodnic spiralnych nie powinno się używać jako chłodnic zwrotnych, gdyż skroplona para nie może spływać swobodnie w wąskiej wężownicy i bywa często wyrzucana do góry. ROZDZIELACZE I WKRAPLACZE Do rozdzielania cieczy nie mieszających się ze sobą używa się rozdzielaczy (ryc. 6). Wkraplacze służą do dozowania cieczy do mieszaniny reakcyjnej. Ryc. 6. Rozdzielacze: kulisty, gruszkowaty, cylindryczny i wkraplacz z wyrównanym ciśnieniem. LEJKI Poza zwykłymi lejkami używane są w preparatce organicznej lejki do substancji sypkich, lejki do sączenia pod zmniejszonym ciśnieniem oraz lejki do sączenia na gorąco (ryc. 7). Lejki do sączenia pod zmniejszonym ciśnieniem służą do oddzielania osadów od cieczy, zazwyczaj ługów pokrystalicznych. Do tego celu stosowane są najczęściej lejki Büchnera porcelanowe lub szklane albo też szklane lejki piankowe oznakowane symbolami G1, G2, G3, G4, oznaczającymi wielkość porów. Lejki piankowe używane są głównie do oddzielania cieczy o silnym odczynie zasadowym lub kwaśnym, niszczących bibułę filtracyjną. Wielkość lejka dobiera się do ilości osadu. Ryc. 7. Lejki: zwykły, do substancji sypkich i lejek Büchnera. 5

Podczas krystalizacji zachodzi niejednokrotnie konieczność sączenia gorących roztworów nasyconych. Aby zapobiec krystalizacji substancji na lejku lub w nóżce odpływowej, używa się specjalnych płaszczy ogrzewanych gorącą wodą. INNY SPRZĘT SZKLANY W laboratorium używany jest także pomocniczy sprzęt szklany, umożliwiający montowanie aparatury. Są to nasadki, przedłużacze destylacyjne (ryc. 8) służące do odprowadzania destylatu z chłodnicy do odbieralnika, czy rurki-kolanka służące do łączenia aparatury w różnych płaszczyznach. Ryc. 8. Przedłużacze destylacyjne i rurki-kolanka Ważnymi elementami aparatury szklanej są. reduktory i ekspansory, a także rurki zabezpieczające przed dostępem wilgoci wypełnione np. bezwodnym chlorkiem wapnia. POŁĄCZENIA SZLIFOWE Szlify, czyli znormalizowane wymienne szklane połączenia szlifowe dają szereg możliwości przy montowaniu aparatury. Największe zastosowanie mają szlify stożkowe, rzadziej stosowane są szlify kuliste. Składają się one z tulei o oszlifowanej powierzchni wewnętrznej oraz ze stożka z powierzchnią oszlifowaną na zewnątrz. Powierzchnie te ściśle przylegają do siebie, dzięki czemu uzyskuje się szczelne połączenia bez stosowania korków. Szlify stożkowe mają różne rozmiary. Określa się je za pomocą dwóch liczb, które oznaczają największą średnicę oraz długość szlifu w mm. Najczęściej stosowane rozmiary szlifów to 45/40, 32/35, 29/32, 24/29, 19/26 i 14/23. Zastosowanie znormalizowanego stożka przy wytwarzaniu szlifów stożkowych (stożków i tulejek) gwarantuje ich wymienialność. Wzorcem jest stożek 1:10 wobec średnicy (długość stożka 10 cm, średnica 1 cm i ich wielokrotności). 6

Zalety szlifów: 1. unika się dobierania, dopasowywania oraz wiercenia otworów w korkach korkowych i gumowych, co daje znaczną oszczędność czasu; 2. unika się zanieczyszczeń powstających w wyniku kontaktu substancji chemicznych z korkami; 3. ułatwione jest operowanie ciekłymi lub stałymi substancjami korodującymi; 4. zapewniona jest szczelność aparatury, ważna szczególnie w pracy pod zmniejszonym ciśnieniem; 5. możliwe jest montowanie aparatury z niewielkiej ilości stosunkowo prostych elementów; 6. istnieje większe bezpieczeństwo podczas reakcji biegnących energicznie z powodu szerszego przelotu dla par. Zasady postępowania z połączeniami szlifowymi: 1. Ze względu na różnice w rozszerzalności wolno łączyć z sobą tylko takie szlify, których tulejka i stożek wykonane są z tego samego gatunku szkła. 2. Powierzchnie złączy szlifowych powinny być starannie oczyszczone. 3. Obydwie części szlifu łączy się ze sobą obracając je lekko wokół osi. 4. W przypadku pracy pod zmniejszonym ciśnieniem lub innego procesu trwającego przez dłuższy czas, powierzchnie szlifów pokrywa się cienką warstwą odpowiedniego smaru (np. wazeliną, lanoliną, smarem silikonowym). W tym celu nakłada się smar w postaci pierścienia na środkową część szlifu stożkowego i rozprowadza go równomiernie po całej powierzchni przez obrót stożka w tuli. Prawidłowo nasmarowane złącze szlifowe jest przezroczyste. Należy unikać nadmiaru smaru, aby nie zanieczyszczać mieszaniny reagującej, względnie destylatu. 5. Powierzchnie szlifowe nie powinny stykać się z mocnymi zasadami, substancjami polimeryzującymi i smolistymi. 6. Zestaw ze złączami szlifowymi jest sztywny. Z tego powodu należy go umocować w łapach luźno i na jednym statywie lub na zestawie połączonych z sobą statywów. W przeciwnym razie mogą łatwo wytworzyć się napięcia, które niejednokrotnie stają się przyczyną pękania części szklanych zestawu. 7. Po skończonej pracy należy niezwłocznie przystąpić do rozmontowania zestawu i rozłączenia wszystkich złączy szlifowych przez lekki nacisk i próbę obrotu. 7

Zatarcia szlifów. Mimo przestrzegania powyższych zaleceń dochodzi nierzadko do zatarcia się szlifu. Szlifu takiego nie można rozłączyć przez próbę obrotu. Istnieją różne sposoby otwierania takich złączy szlifowych: 1. Uchwycić szlif w taki sposób, jakby usiłowało się go złamać, to znaczy kciuki obydwu rąk opiera się na stożku szlifu, a pozostałymi palcami pociąga za drugą część szlifu. 2. Lekko, delikatnie uderzyć o kant drewnianego stołu lub opukać szlif drewnianym młotkiem. 3. Ustawić szlif pionowo i powierzchnię górnej jego części zalewa się gliceryną lub odpowiednim do tego celu olejem. Gliceryna stopniowo wnika w głąb szlifu, co powinno umożliwić jego otwarcie. 4. Ogrzać tulejkę gorącym powietrzem lub w świecącym płomieniu palnika w taki sposób, aby stożek pozostał zimny i ostrożnie pociągnąć obie części. OGRZEWANIE Duży wpływ na kierunek i szybkość reakcji organicznych ma ogrzewanie. Podniesienie temperatury o 10 powoduje w przybliżeniu 2-3 krotny wzrost szybkości reakcji. Ogrzewanie jest również potrzebne przy wyodrębnianiu i oczyszczaniu substancji organicznych (destylacja, sublimacja, rozpuszczanie, stapianie, suszenie); czynnościach pomocniczych (suszenie szkła laboratoryjnego, sporządzanie roztworów) oraz przy oznaczaniu stałych fizycznych (temperatura topnienia i wrzenia). Wyróżniamy ogrzewanie bezpośrednie i łaźnie ogrzewające. Ogrzewanie bezpośrednie można podzielić na: a. płomień palnika gazowego, b. kuchenki elektryczne, c. płaszcze grzejne, w połączeniu z transformatorem z regulacją napięcia, są najdogodniejszymi urządzeniami do ogrzewania naczyń reakcyjnych w stałej określonej temperaturze. Łaźnie ogrzewające dzielimy na: a. łaźnie powietrzne, w których medium ogrzewającym jest gorące powietrze, b. łaźnie wodne, najczęściej stosowane w laboratorium; ogrzewa się za ich pomocą substancje do temperatury wrzenia wody, tj. do około 100 C, c. łaźnie parowe, różnią się od łaźni wodnych tym, że ogrzewanego naczynia nie zanurza się w wodzie, a umieszcza nad powierzchnią wrzącej wody, 8

d. łaźnie cieczowe, w których medium ogrzewającym są ciecze lub łatwo topliwe ciała stałe o wysokiej temperaturze wrzenia i zapłonu, Użycie oleju mineralnego gwarantuje temperaturę do 250 C; parafiny lub cerezyny do 150-200 C; oleju parafinowego do 200 C; gliceryny do 200-220 C. Temperatura łaźni winna być około 10 C wyższa niż pożądana temperatura w naczyniu ogrzewanym. Kolbę zanurza się w łaźni, by jej dno znajdowało się co najmniej 1,5 cm ponad dnem łaźni. Należy uważać, by do silnie ogrzanej łaźni nie dostała się niżej wrząca ciecz, gdyż nawet kilka jej kropli może spowodować silne pienienie się zawartości łaźni. e. łaźnie piaskowe, dające temperaturę kilkuset stopni, f. łaźnie żarowe, wysyłające promienie podczerwone (tzw. promienniki podczerwieni). W zależności od odległości lampy można uzyskać temperaturę od 40 do 200 C. OZIĘBIANIE Najprostszym środkiem chłodzącym jest woda, której temperatura waha się w granicach 4-15 C w zależności od pory roku. 0 C uzyskuje się za pomocą lodu, 5 do 18 C stosując 1 część NaCl i 3 części drobno zmielonego lodu, 40 do 50 C używając 5 części uwodnionego CaCl 2 i 4 części drobno zmielonego lodu, do 72 C biorąc CO 2 (suchy lód) i alkohol etylowy, do 77 C poprzez suchy lód i eter, bądź też suchy lód i mieszaninę chloroformu i acetonu, do 180 C stosując ciekłe powietrze, do 190 C ciekły azot. Mieszaniny przygotowuje się i przechowuje w naczyniach Dewara, które są dużymi termosami. SUSZENIE Suszeniem nazywamy proces usuwania niewielkich ilości obcej cieczy lub jej par ze stałej, ciekłej lub gazowej substancji. Przy wyborze środka suszącego i sposobu suszenia decydujące znaczenie ma: a. stan skupienia substancji, b. ilość usuwanej wody lub rozpuszczalnika, c. właściwości chemiczne substancji oczyszczającej. Substancja oczyszczana nie może wchodzić w reakcję ze środkiem suszącym, np. stęż. H 2 SO 4 nie nadaje się do osuszania związków nienasyconych, alkoholi, substancji zasadowych; stałego KOH nie stosuje się zaś do osuszania aldehydów i substancji o charakterze kwasowym. 9

Suszenie gazów odbywa się przez przepuszczenie ich przez płuczki wypełnione środkami suszącymi. Tabela I. Osuszanie gazów GAZ H 2, O 2, N 2, CO, CO 2, SO 2, alkany HCl HBr NH 3, aminy Chlorki alkilowe, etery, ozon ŚRODEK SUSZĄCY CaCl 2, P 2 O 5, H 2 SO 4 CaCl 2, H 2 SO 4 CaBr 2 KOH, CaO, BaO CaCl 2 Suszenie cieczy odbywa się przez pozostawienie jej nad warstwą środka suszącego. Uniwersalnymi środkami suszącymi są: Na 2 SO 4, MgSO 4, CaSO 4. Tabela II. Osuszanie cieczy CIECZE Węglowodory nasycone Węglowodory nienasycone Chlorowcoalkile Alkohole Etery Ketony Estry Aminy ŚRODKI SUSZĄCE P 2 O 5, H 2 SO 4, Na CaCl 2 P 2 O 5, H 2 SO 4, CaCl 2, K 2 CO 3 CaO, BaO, CuSO 4 CaCl 2, CuSO 4, Na, Na 2 SO 4 MgSO 4, K 2 CO 3 (krótko) CaSO 4, Na 2 SO 4 KOH, NaOH, K 2 CO 3 Suszenie ciał stałych odbywa się przeważnie w eksykatorach zwykłych i próżniowych, w których znajdują się środki pochłaniające wilgoć i pary związków organicznych. Pary wody i niższych alkoholi pochłaniają: stęż. H 2 SO 4, bezwodny CaCl 2, KOH, NaOH, P 2 O 5 ; pary rozpuszczalników o charakterze kwasowym np. kwasu octowego absorbują KOH, NaOH; pary rozpuszczalników zasadowych np. pirydyny stęż. H 2 SO 4. W celu uwolnienia od resztek rozpuszczalnika obojętnego np. benzenu, chloroformu, umieszcza się w eksykatorze dodatkowo wióry stałej parafiny. Uwaga! Ze względu na bezpieczeństwo należy eksykatory próżniowe przed użyciem zabezpieczyć przed implozją. 10

Można również suszyć substancje stałe poprzez rozłożenie ich na bibule w suchym, przewiewnym miejscu, jednak metoda ta nie jest polecana ze względu na długi okres suszenia jak też i to, iż większość związków organicznych jest higroskopijna, toksyczna i ma nieprzyjemny zapach. Podział środków suszących: a. Środki wiążące wodę adsorpcyjnie: żel krzemionkowy, tlenek glinu, sita molekularne. b. Środki wiążące wodę w postaci hydratów: CaCl 2, MgSO 4, NaSO 4, K 2 CO 3, KOH, NaOH. c. Środki wiążące wodę chemicznie: P 2 O 5, CaO, BaO, Na, H 2 SO 4. ZESTAWIANIE APARATURY LABORATORYJNEJ. Zestaw, w którym mamy wykonać reakcję chemiczną, powinien być złożony bardzo starannie. Prawidłowe zestawienie aparatu ułatwia w dużym stopniu pracę. Nieszczelne połączenia mogą być przyczyną straty substancji i rozpuszczalnika, jak również zapalenia się par cieczy lotnych, co z kolei może spowodować pożar i niebezpieczny wybuch. Aparat powinien posiadać także połączenie z atmosferą, aby uniknąć w nim wzrostu ciśnienia na skutek ogrzewania i wydzielania gazów. W przypadku, gdy reakcja wymaga ogrzewania mieszaniny do wrzenia, należy używać kolb kulistych i o takiej pojemności, aby ciecz zajmowała nie więcej niż 2/3 objętości. Uwaga! Przed przystąpieniem do wykonywania ćwiczenia każdorazowo należy bardzo dokładnie sprawdzić czy szkło nie jest uszkodzone. Naczynia, które mają pęknięcia ( gwiazdki ) i głębokie rysy należy wymienić. MIESZANIE Wiele procesów chemicznych wymaga mieszania. Jest ono niezbędne w reakcjach przebiegających w dwóch fazach (ciecz-ciecz, ciecz-ciało stałe) jak i gdy w toku reakcji pojawia się osad. Mieszanie ułatwia lepsze zetknięcie się reagentów powodując skrócenie czasu reakcji. Można stosować mieszanie ręczne, w przypadku reakcji przebiegających bardzo powoli stosuje się wytrząsanie mechaniczne. W powszechnym użyciu są również mieszadła magnetyczne. 11

WYTWARZANIE ZMNIEJSZONEGO CIŚNIENIA Jedną z bardzo częstych czynności stosowanych w preparatyce organicznej jest wytwarzanie zmniejszonego ciśnienia. Ciśnienie to jest wytwarzane za pomocą różnego rodzaju pomp. Mogą to być: a. pompy wodne, które pozwalają na uzyskanie ciśnienia nie mniejszego od prężności pary nad wodą służącą do uruchomienia pompy. Używamy je przy sączeniu lub destylacji pod zmniejszonym ciśnieniem; b. pompy rotacyjne olejowe; c. pompy dyfuzyjne. Uwaga! Pomiędzy pompą a aparaturą, w której rozrzedzamy powietrze należy zawsze zainstalować naczynie zabezpieczające flaszkę Wulffa z trzema szyjkami, z których jedna łączy się z pompą, druga z aparaturą, a trzecia z manometrem. OKREŚLANIE CIĘŻARU SUBSTANCJI Substancje odważa się na wagach tarowych mających zwykle nośność do 0.5 kg i dokładności do 25 mg (wagi techniczne) lub 0.3 kg i dokładność do 10 mg (wagi elektryczne), a także nośności 100 g i dokładności 1 mg (wagi analityczne). OKREŚLANIE OBJĘTOŚCI Ciecze odmierza się cylindrami miarowymi lub pipetami o odpowiedniej pojemności. OKREŚLANIE TEMPERATURY SUBSTANCJI Temperaturę mierzymy za pomocą termometrów laboratoryjnych o kształcie okrągłych prętów ze skalą do 360 o C i podziałką na 1 o. Do mierzenia temperatur powyżej 360 o C służą termometry, w których rtęć znajduje się pod ciśnieniem azotu. Pozwalają one na pomiar temperatur do 450 o C. Do pomiarów jeszcze wyższych temperatur służą termopary (Pt/RhPt). OKREŚLANIE STĘŻENIA ROZTWORÓW Pomiar stężenia używanych roztworów odbywa się zazwyczaj przez oznaczanie ciężaru właściwego. Do tego celu stosuje się zazwyczaj areometry, piknometr i wagę Mohra- Westphala, w temperaturach, na które przyrządy te są cechowane. Ze znalezionego ciężaru właściwego odczytujemy następnie stężenie substancji posługując się odpowiednimi tabelami. 12