ZASTOSOWANIE TESTU BAKTERYJNEGO MARA DO OCENY EKOTOKSYCZNOŚCI LEKÓW

Podobne dokumenty
Metody klasyfikacji toksyczności próbek środowiskowych

OCENA TOKSYCZNOŚCI PRODUKTÓW FOTODEGRADACJI CHLORPROMAZYNY PRZY UŻYCIU TESTÓW OSTRYCH NA BRACHIONUS CALYCIFLORUS (WROTKI)

PRAKTYCZNY KURS SZKOLENIOWY OCENY MUTAGENNOŚCI WODY WYKONANY TESTEM MIKROPŁYTKOWYM AMES MPF 98/100 AQUA

System MICROTOX światowy standard w ocenie toksyczności ścieków przemysłowych

BADANIA TOKSYCZNOŚCI ZANIECZYSZCZEŃ ORGANIZMÓW WODNYCH (PN -90/C-04610/01;03;05)

BIOCHEMICZNE ZAPOTRZEBOWANIE TLENU

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

OCENA EKOTOKSYCZNOŚCI WYBRANYCH SUBSTANCJI STOSOWANYCH JAKO FILTRY CHRONIĄCE PRZED PROMIENIOWANIEM UV

ZMIANY EKOTOKSYCZNOŚCI ROZTWORÓW ZAWIERAJĄCYCH SULFONAMIDY W TRAKCIE PROCESU ZAAWANSOWANEGO UTLENIANIA

Badanie genotoksyczności substancji aktywnych testem Amesa

ZMIANY TOKSYCZNOŚCI WODY ZAWIERAJĄCEJ WYBRANE FARMACEUTYKI W PROCESIE UTLENIANIA FOTOKATALITYCZNEGO

Testy aktywności przeciwdrobnoustrojowej na przykładzie metody dyfuzyjnej oraz wyznaczania wartości minimalnego stężenia hamującego wzrost.

SPRAWOZDANIE Z BADAŃ MIKROBIOLOGICZNYCH Nr 20006/11859/09

XIII. Staphylococcus, Micrococcus ćwiczenia praktyczne

VIII Krajowa Konferencja Bioindykacyjna

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ocena ryzyka ekologicznego dla miejsca badawczego w Jaworznie

ĆWICZENIA Z MECHANIZMÓW DZIAŁANIA WYBRANYCH GRUP LEKÓW

WPŁYW PROMIENIOWANIA UV NA GENOTOKSYCZNOŚĆ CHLORPROMAZYNY OCENIANĄ W TEŚCIE SOS CHROMOTEST I UMU TEST

Aneks I. Wnioski naukowe i podstawy do zmiany charakterystyki produktu leczniczego i ulotki informacyjnej

Nowe preparaty biobójcze o dużej skuteczności wobec bakterii z rodzaju Leuconostoc jako alternatywa dla coraz bardziej kontrowersyjnej formaliny.

1276: (ATCC

Magdalena Bielasik-Rosińska*

ZASTOSOWANIE METODY BIOINDYKACJI DO OCENY ODDZIAŁYWANIA ŚCIEKÓW PRZEMYSŁOWYCH NA ŚRODOWISKO WODNE

SPRAWOZDANIE Z BADAŃ MIKROBIOLOGICZNYCH Nr 20005/11858/09

Europejskie Regionalne Centrum Ekohydrologii PAN, ul. Tylna 3, Łódź 2

Dane mikromacierzowe. Mateusz Markowicz Marta Stańska

woda do 1000 ml ph=6,9-7,1. Po sterylizacji dodać nystatynę (końcowe stężenie ok. 50 μg/ml). Agar z wyciągiem glebowym i ekstraktem drożdżowym (YS)

*CFU (ang. Colony Forming Unit) - jednostka tworząca kolonię.

Temat ćwiczenia: Techniki stosowane w badaniach toksyczności in vitro

ZASTOSOWANIE BIOTESTÓW W OCENIE SKUTECZNOŚCI ZAAWANSOWANEGO UTLENIANIA SULFAMETOKSAZOLU

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Probiotyki, prebiotyki i synbiotyki w żywieniu zwierząt

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1) z dnia 9 listopada 2011 r.

Z BADAŃ ODDZIAŁYWANIA WYBRANYCH MIKROORGANIZMÓW NA KOMPOZYTY PP Z BIOCYDEM SEANTEX

Techniki immunoenzymatycznego oznaczania poziomu hormonów (EIA)

HARMONOGRAM ZAJĘĆ dla studentów Uniwersyteckiego Centrum Medycyny Weterynaryjnej UJ-UR Mikrobiologia weterynaryjna II rok 2013/2014 semestr letni

Identyfikacja mikroorganizmów systemem firmy Biolog

Zawartość węgla organicznego a toksyczność osadów dennych

XXV. Grzyby cz I. Ćwiczenie 1. Wykonanie i obserwacja preparatów mikroskopowych. a. Candida albicans preparat z hodowli barwiony metoda Grama

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1) z dnia 9 listopada 2011 r.

Antybiotykooporno szczepów bakteryjnych izolowanych od ryb ososiowatych z gospodarstw na terenie Polski

Lista produktów. Testy Ames-, UmuC-, YES/YAS i akcesoria

AmpliTest Babesia spp. (PCR)

BADANIA HYBRYDOWEGO PROCESU UTLENIAJĄCEGO (UV/TiO 2 ) W ASPEKCIE ELIMINACJI WYBRANYCH MIKROZANIECZYSZCZEŃ ORGANICZNYCH ORAZ ZMIAN TOKSYCZNOŚCI WODY

TECHNOLOGIE OCHRONY ŚRODOWISKA (studia I stopnia) Mogilniki oraz problemy związane z ich likwidacją prof. dr hab. inż.

Warszawa, dnia 3 sierpnia 2016 r. Poz. 1173

Niezawodna ochrona fermy Badanie pozostałości preparatu Virkon S u kurczaków

Właściwości biobójcze nanocząstek srebra

CZĘŚĆ 1 TEST KASETKOWY DO WYKRYWANIA KALPROTEKTYNY I LAKTOFERYNY W KALE. 53/PNP/SW/2018 Załącznik nr 1 do SIWZ formularz asortymentowo cenowy

THAMNOTOXKIT F Procedura testu

Metody mikrobiologiczne, opisane w Farmakopei

Metody ekotoksykologiczne w ocenie jakości wód zbiornika

SPIRODELA DUCKWEED TOXKIT Procedura testu

Skuteczność usuwania substancji czynnych leków w procesach uzdatniania wody

Hygicult. Szybkie testy do dokładnej oceny stanu higienicznego.

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1) z dnia r.

LEKI CHEMICZNE A LEKI BIOLOGICZNE

ĆWICZENIE NR 3 BADANIE MIKROBIOLOGICZNEGO UTLENIENIA AMONIAKU DO AZOTYNÓW ZA POMOCĄ BAKTERII NITROSOMONAS sp.

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1) z dnia 9 listopada 2011 r.

CHARAKTERYSTYKA PRODUKTU LECZNICZEGO 1. NAZWA PRODUKTU LECZNICZEGO

Microtox LX. Rozstrzygające rozwiązanie dla szybkiej oceny toksyczności

II. Badanie lekowrażliwości drobnoustrojów ćwiczenia praktyczne. Ćwiczenie 1. Oznaczanie lekowrażliwości metodą dyfuzyjno-krążkową

Wykres nr 1. Liczba urządzeń wodociągowych zewidencjonowanych w 2015 r.

ROCZN. PZH, 1998, 49, 73-86

Zakład Biologii Sanitarnej i Ekotechniki ĆWICZENIE 2 BUDOWA I FUNKCJE ENZYMÓW. ZASTOSOWANIE BADAŃ ENZYMATYCZNYCH W INŻYNIERII ŚRODOWISKA.

(Akty o charakterze nieustawodawczym) ROZPORZĄDZENIA

Laboratorium 7. Testy na genotoksyczność

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Dyrektywa 98/79/WE. Polskie Normy zharmonizowane opublikowane do Wykaz norm z dyrektywy znajduje się również na

Antybiotyki bakteriobójcze

ROZPORZĄDZENIE DELEGOWANE KOMISJI (UE) / z dnia r.

AmpliTest Salmonella spp. (Real Time PCR)

Traczewska 1, Katarzyna Piekarska 1

OCENA EKOTOKSYCZNOŚCI PRÓBEK OSADÓW PORTOWYCH Z MORSKIEGO PORTU GDAŃSK I MORSKIEGO PORTU GDYNIA

OCENA ZAGROŻENIA ZWIĄZANEGO Z ZAWARTOŚCIĄ METALI CIĘŻKICH W GLEBACH NA TERENIE POWIATU OLKUSKIEGO (WOJ. MAŁOPOLSKIE)

Wartość dodana dla Twojego procesu produkcji. BD s NEW Rapid Microbiology BD FACSMicroCount

DYREKTYWA KOMISJI (UE) / z dnia r.

Zastosowania testów TOXKIT i Microtox / DeltaTox

Pozostałości leków weterynaryjnych i niektórych innych substancji u zwierząt i w produktach zwierzęcych w krajach UE w świetle raportu EFSA za 2014 r.

WNIOSEK O WYDANIE ZGODY NA ZAMKNIĘTE UŻYCIE GMO

USTAWA. z dnia 13 września 2002 r. o produktach biobójczych. (Dz. U. z dnia 21 października 2002 r.) [wyciąg] Rozdział 1.

Kontrola pożywek mikrobiologicznych. Sekcja Badań Epidemiologicznych

Ulotka dołączona do opakowania: informacja dla pacjentki

Biotechnologia w przemyśle farmaceutycznym

GOTOWE PODŁOŻA HODOWLANE NA PŁYTKACH INSTRUKCJE STOSOWANIA PA wer.: April 2013

TOKSYCZNOŚĆ ŚCIEKÓW Z WYBRANYCH KOMUNALNYCH OCZYSZCZALNI ŚCIEKÓW

Pozostałości substancji niepożądanych w żywności i paszach - ocena zagrożeń. Andrzej Posyniak, Krzysztof Niemczuk PIWet-PIB Puławy

Zdobycze biotechnologii w medycynie i ochronie środowiska

CHARAKTERYSTYKA PRODUKTU LECZNICZEGO WETERYNARYJNEGO

Raport z badania Działanie wirusobójcze środka dezynfekującego wobec Feline calicivirus. 25 października 2006

Identyfikacja nigdy nie była tak prosta

Ćwiczenie 4-5 Mikrobiologiczne kryteria oceny sanitarnej wody

Bariery innowacyjności polskich firm

przez zakład skonsolidowana lista ferm jaj konsumpcyjnych, uwzględniająca zmiany wprowadzone w roku poprzednim.

CZĘŚĆ 1 TEST KASETKOWY DO WYKRYWANIA KALPROTEKTYNY I LAKTOFERYNY W KALE. 73/PNP/SW/2018 Załącznik nr 1 do SIWZ formularz asortymentowo cenowy

OCENA RYZYKA ŚRODOWISKOWEGO WYBRANYCH POZOSTAŁOŚCI ANTYBIOTYKÓW WYSTĘPUJĄCYCH W OSADACH POŁUDNIOWEGO BAŁTYKU

Diagnostyka mikrobiologiczna zakażeń krwi Paweł Zwierzewicz

BADANIE TOKSYCZNOŚCI ŚRODOWISKA WODNEGO METODĄ BIOINDYKACJI

Wdrażanie metod analizy środowiskowego ryzyka zdrowotnego do ustalania i przestrzegania normatywów środowiskowych

Transkrypt:

Słowa kluczowe: toksyczność, chemioterapeutyki, Vibrio fischeri, MARA Grzegorz NAŁĘCZ-JAWECKI*, Anna PIEKAREK*, Józef SAWICKI* ZASTOSOWANIE TESTU BAKTERYJNEGO MARA DO OCENY EKOTOKSYCZNOŚCI LEKÓW Test MARA (Microbial Assay for Risk Assessment) to innowacyjny system oceny toksyczności chronicznej próbek wykorzystujący jako bioindykatory dziesięć bakterii o różnej taksonomii i jeden organizm eukariotyczny drożdże. Celem niniejszej pracy była ocena wrażliwości systemu MARA na wybrane chemioterapeutyki stosowane w weterynarii i porównanie uzyskanych wyników z wrażliwością chronicznego, 24-godzinnego testu na bakteriach luminescencyjnych Vibrio fischeri. Powstały na płytce MARA swoisty, niepowtarzalny wzór określany terminem FIP (fingerprint) był charakterystyczny dla różnych grup antybiotyków. Zaproponowano nowy, oryginalny, graficzny sposób prezentowania FIP. Oba testy wykazały bardzo wysoką wrażliwość na tetracyklinę i kwas oksolinowy na poziomie około 20 µg/l. Test MARA był 40-razy bardziej wrażliwy niż V. fischeri na streptomycynę a 4-krotnie mniej wrażliwy na chloramfenikol. 1. WSTĘP Leki stanowią nową, wielką grupę ksenobiotyków, na którą zwraca się w ostatnich latach coraz większą uwagę [3,5]. Ponad połowa produkowanych leków przeznaczona jest do leczenia zwierząt. Wraz z rozwojem ferm wielkotowarowych odnotowuje się wzrost produkcji i zużycia leków weterynaryjnych. Obecnie produkcja w krajach UE sięga 4700 ton substancji czynnych rocznie. Szczególna uwaga zwrócona jest na antybiotyki i leki przeciwpasożytnicze stosowane u zwierząt w celach leczniczych i profilaktycznych. Stanowią one ponad połowę ogółu leków weterynaryjnych [7]. Wspomniane grupy leków często stosowane są w sposób masowy (leczenie i profilaktyka całego stada, a nie tylko pojedynczej sztuki). Leki weterynaryjne stosowane u zwierząt hodowlanych trafiają do środowiska różnymi drogami: mogą być bezpośrednio aplikowane do wód (w hodowli ryb), gleb (na pastwiskach), pośrednio - poprzez otwarty system kanalizacji bądź w formie gnojowicy i gnojówki mogą być wywożone na pola. Stają się wówczas niekontrolowanym źródłem zanieczyszczeń środowiska oraz przyczyniają się do zaburzenia równowagi w ekosystemach (glebowym i wodnym). * Zakład Badania Środowiska, Warszawski Uniwersytet Medyczny, ul. Banacha 1, 02-097 Warszawa 237

Stosowanie coraz większych dawek znanych od lat antybiotyków ze względu na rosnącą antybiotykooporność, wprowadzanie nowych chemioterapeutyków do lecznictwa weterynaryjnego oraz zwiększanie liczby wielostanowiskowych ferm przemysłowych powoduje zwiększone zanieczyszczenie tymi związkami i ich metabolitami środowiska naturalnego. Dodatkowym problemem jaki obserwujemy w naszym kraju jest niekorzystna dla środowiska struktura stosowanych antybiotyków. W Polsce często jeszcze stosowane są w dużej ilości antybiotyki o znacznej toksyczności np tetracykliny i chloramfenikol, których 50 stosowanej dawki trafia do środowiska [6]. Test MARA (Microbial Assay for Risk Assessment) to innowacyjny system oceny toksyczności chronicznej próbek wykorzystujący jako bioindykatory dziesięć organizmów prokariotycznych bakterii o różnej taksonomii i jeden eukariotyczny drożdże. Liofilizowane bioindykatory umieszczone są przez producenta w celkach polistyrenowej mikropłytki (96-dołkowej), która jest następnie w warunkach aseptycznych hermetycznie pakowana. Dzięki temu do testu MARA nie jest konieczne prowadzenie hodowli organizmów testowych wymagającej odpowiedniego zaplecza mikrobiologicznego i generującej dodatkowe koszty. Zastosowanie do oceny toksyczności próbki mikroorganizmów, których niewielkie rozmiary umożliwiają przeprowadzenie testu jednocześnie na milionach organizmów testowych zebranych na niewielkiej powierzchni, znacząco usprawnia proces oceny toksyczności, obniża jego koszty, a także zwiększa wiarygodność uzyskiwanych wyników [5]. Dodatkowo zastosowanie w jednym teście 11 różnych pod względem taksonomicznym i genetycznym organizmów pozwala stworzyć warunki testowe lepiej odzwierciedlające te panujące w prawdziwym ekosystemie niż testy jednogatunkowe. Badanie toksyczności próbki na wielu organizmach jednocześnie także znacząco zwiększa czułość testu (wzrasta prawdopodobieństwo, iż przynajmniej jeden z bioindykatorów okaże się wrażliwy na badaną próbkę [7]. W systemie MARA toksyczność próbki oceniana jest na podstawie stopnia zahamowania wzrostu organizmów testowych po 18 godzinach inkubacji. Czerwień tetrazoliowa dodawana do pożywki jest redukowana przez zdrowe bakterie do nierozpuszczalnego w wodzie czerwonego barwnika. Płytka jest następnie skanowana, a jej obraz analizowany przez specjalny program analizy obrazu. Celem niniejszej pracy była ocena wrażliwości systemu MARA na wybrane chemioterapeutyki stosowane w weterynarii i porównanie uzyskanych wyników z wrażliwością bakterii luminescencyjnych Vibrio fischeri. 238

2. MATERIAŁY I METODY 2.1. BADANE ZWIĄZKI Oceniono 6 chemioterapeutyków: streptomycynę, tetracyklinę, chloramfenikol, kwas nalidyksowy, kwas pipemidynowy oraz kwas oksolinowy. Wzorce badanych leków zakupiono w firmie Sigma-Aldrich. 2.2. SYSTEM MARA Wszystkie elementy systemu MARA: mikropłytki, odczynniki, program analizy obrazu zakupiono od producenta poprzez Tigret. Analizy wykonano zgodnie z instrukcjami producenta. W skrócie: liofilizowane mikroorganizmy umieszczone w rzędzie H mikropłytki zrehydratowano i preinkubowano przez 4 godziny w temperaturze 30 C. W rzędach G-B mikropłytki wykonano szereg sześciu rozcieńczeń próbki w postępie geometrycznym o ilorazie = 3. Do rzędu A wprowadzono pożywkę (kontrola szczepów). Następnie do każdego rozcieńczenia próbki dodano mikroorganizmy pobrane z rzędu H. Wszystkie czynności wykonywano przy użyciu elektronicznej pipety 12-kanałowej. Mikropłytkę inkubowano w temperaturze 30 C. Po 18 godzinach płytki skanowano w skanerze płaskim. Wyniki opracowywano przy użyciu specjalnego programu analizy obrazu, który umożliwił obliczenie wartości MTC (Microbial Toxic Concentration) dla każdego szczepu. 2.3. BAKTERIE LUMINESCENCYJNE Wyniki toksyczności chronicznej badanych substancji dla bakterii Vibrio fischeri uzyskano z prac Backhaus i Grimme [1] oraz Backhaus i in. [2]. Przedstawiono wartości 24h-EC50. 3. WYNIKI 3.1. SYSTEM MARA Powstały na 96-celkowej płytce swoisty, niepowtarzalny wzór określany jest terminem FIP (fingerprint). Pozwala on nie tylko na analizę toksycznego działania badanej próbki na poszczególne szczepy mikroorganizmów, ale przede wszystkim umożliwia zaobserwowanie zależności między intensywnością reakcji toksycznej a rodzajem organizmu przejawiającego tę reakcję oraz stwierdzenie czy badana próbka wykazuje toksyczność ogólną zaobserwowaną u większości bioindykatorów, czy specyficzną, obserwowaną tylko dla jednego szczepu [4,8]. 239

Dla lepszego porównywania FIP różnych substancji przedstawiono je na specjalnie opracowanym wykresie. W tym celu wartości MTC przekształcono na jednostki toksyczności: TU = 100 / MTC, a następnie obliczono procent TU dla każdego szczepu przyjmując wartość TU dla najbardziej wrażliwego szczepu za 10. Zastosowane szczepy mikroorganizmów reagowały w różnym stopniu na badane substancje (rys. 1). Na streptomycynę najbardziej wrażliwy był szczep 7, następnie 1, zaś wzrost pozostałych szczepów praktycznie nie uległ zahamowaniu. Odmienny obraz uzyskano w przypadku tetracykliny. Szczep 2 był najbardziej wrażliwy, następnie 6 i 7 (odpowiednio i 18% maksymalnej czułości), pozostałe mikroorganizmy były co najmniej 10-krotnie mniej wrażliwe. Chloramfenikol i chinolony wykazały największą toksyczność dla szczepu 6. Jednakże chloramfenikol działał toksycznie także na większość pozostałych szczepów wrażliwość powyżej 1 wrażliwości maksymalnej wykazały szczepy: 7, 4, 1, 2, 8 oraz 3. Natomiast chinolony oprócz 6 działały negatywnie tylko na dwa szczepy: 3 i 4. Na uwagę zasługuje fakt, iż FIP kwasów: nalidyksowego, oksolinowego i pipemidynowego są bardzo podobne czyli stosunek wrażliwości poszczególnych szczepów zastosowanych w teście MARA był zbliżony. Można stąd wysnuć wnioski, iż leki te mają to samo spektrum działania przeciwbakteryjnego, aczkolwiek różnią się siłą tego działania. W Tabeli 1 przedstawiono minimalne wartości MTC dla każdej badanej substancji. Są to wartości uzyskane dla najbardziej wrażliwego szczepu w teście MARA. Jak widać spośród chinolonów najbardziej toksyczny był kwas oksolinowy powodujący zaburzenie wzrostu bakterii już w stężeniu 13 µg/l. Kwasy nalidyksowy i pipemidynowy były odpowiednio prawie 15 i 30 razy mniej toksyczne. 3.2. PORÓWNANIE WRAŻLIWOŚCI SYSTEMU MARA I BAKTERII V. FISCHERI W tabeli 1 zamieszczono wyniki toksyczności uzyskane przez Backhaus [1,2] w 24-godzinnym teście chronicznym z bakteriami luminescencyjnymi V. fischeri oraz minimalne wartości MTC uzyskane w teście MARA w niniejszej pracy. Oba testy wykazują bardzo wysoką wrażliwość na tetracyklinę i kwas oksolinowy. Antybiotyki te były oznaczane w ściekach na podobnym poziomie - kilkunastu µg/l. Wskazuje to na możliwość toksycznego oddziaływania tych związków na wrażliwe mikroorganizmy. Test MARA jest zdecydowanie bardziej wrażliwy niż V. fischeri na streptomycynę. Z drugiej strony bakterie luminescencyjne reagują na 4-krotnie niższe stężenia chloramfenikolu. Przedstawione wyniki wskazują na wysoką wrażliwość systemu MARA na badane chemioterapeutyki. Należy zwrócić uwagę na fakt, iż na różne grupy leków zareagowały różne szczepy mikroorganizmów. 240

10 1 10 1 10 1 10 1 A) D) B) C) 10 1 10 1 E) F) Rys. 1. Wzory toksyczności - FIP (fingerprints) związków w teście MARA. A) Streptomycyna; B) Tetracyklina; C) Chloramfenikol; D) Kwas nalidyksowy; E) Kwas oksolinowy; F) Kwas pipemidynowy. Stąd zastosowanie w jednym teście aż 11 mikroorganizmów podnosi znacznie jego wrażliwość, ale także umożliwia wstępne scharakteryzowanie spektrum przeciwbakteryjnego działania badanej próbki. System MARA może pełnić ważną rolę w zestawie testów przeznaczonych do oceny ekotoksyczności istniejących i nowowprowadzanych leków. Jednocześnie może służyć do monitoringu środowiska pod kątem toksyczności próbek dla mikroflory. 241

Tabela 1. Porównanie toksyczność badanych związków dla bakterii luminescencyjnych oraz najbardziej wrażliwego szczepu w teście MARA. Związek Vibrio fischeri MARA 24h-EC50[µg/l] minimalne MTC [µg/l] Chloramfenikol 64 [1] 250 Streptomycyna 8210 [1] 190 Tetracyklina 25 [1] 16 Kwas nalidyksowy 200 [2] 190 Kwas pipemidynowy 1019 [2] 410 Kwas oksolinowy 23 [2] 13 PODZIĘKOWANIA Badania finansowano ze środków Ministerstwa Nauki (grant nr N305 270134) oraz z tematu statutowego Zakładu Badania Środowiska WUM. LITERATURA [1] Backhaus T., Grimme L.H. 1999. The toxicity of antibiotic agents to the luminescent bacterium Vibrio fischeri. Chemosphere 38: 3291-3301. [2] Backhaus T., Scholtze M., Grimme LH. 2000. The single substance and mixture toxicity of quinolones to the bioluminescent bacterium Vibrio fischeri. Aquat Toxicol. 49: 49-61. [3] Fent K., Weston A A., Caminada D. 2006. Ecotoxicology of human pharmaceuticals. Aquat Toxicol. 76: 122-159. [4] Gabrielson J., Kühn I. 2003. Microplate-based microbial assay for risk assessment and (eco)toxic fingerprinting of chemicals. Anal Chim Acta 485: 121-130. [5] Halling-Sorensen B., Nielsen S.N., Lanzky P.F., Ingerslev F., Holten-Lützhoft H.C., Jorgensen SE. 1998. Occurrence, fate and effects of pharmaceutical substances in the environment a review. Chemosphere 36: 357-393. [6] Halling-Sorensen B., Sengeklov G., Tjornelund J. 2002. Toxicity of tetracyclines and tetracycline degradation products to environmentally relevant bacteria, including selected tetracycline-resistant bacteria. Arch Environ Contam Toxicol. 42: 263-271. [7] Koschorrek J., Koch C., Rönnefahrt I. 2002. Environmental risk assessment of veterinary medicinal products in EU a regulatory perspective. Toxicol Lett. 131: 117-124. [8] Wadhia K., Dando T., Thompson C. 2007. Intra- laboratory evaluation of Microbial Assay for Risk Assessment (MARA) for potential application in the implementation of the Water Framework Directive (WFD). J Environ Monit. 9: 953-958. APPLICATION OF MICROTOX AND MARA BIOTESTS IN EVALUATION OF ECOTOXICITY OF PHARMACEUTICALS MARA - Microbial Assay for Risk Assessment is a new chronic bioassay, which uses ten species of Procaryota and one Eucaryotic yeast. The goal of the study was the evaluation of sensitivity of MARA to selected veterinary chemioterapeutics and comparison of the results with the sensitivity of chronic 24-h test with luminescent bacteria Vibrio fischeri. The unique MARA fingerprint is specific for each group of antibiotics. In this study new way of presentation of the fingerprint is proposed. Both MARA and luminescent bacteria test were the most sensitive to tetracycline and oxolinic acid at the level close to 20 µg/l. MARA was 40-folds more sensitive than V. fischeri to streptomycin, while 4-times less sensitive to chloramfenicol. 242