Laboratorium Podstaw Biofizyki

Podobne dokumenty
Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

ADSORPCJA PARACETAMOLU NA WĘGLU AKTYWNYM

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

Laboratorium z biofizyki

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

3. Badanie kinetyki enzymów

A4.04 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wyznaczanie stałej dysocjacji pk a słabego kwasu metodą konduktometryczną CZĘŚĆ DOŚWIADCZALNA. Tabela wyników pomiaru

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

TRANSPORT NIEELEKTROLITÓW PRZEZ BŁONY WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PRZEPUSZCZALNOŚCI

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Ćwiczenie 1. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp. Część teoretyczna.

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

POLITECHNIKA GDAŃSKA

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

Laboratorium Inżynierii Bioreaktorów

Laboratorium z bionanostruktur. Prowadzący: mgr inż. Jan Procek Konsultacje: WT D- 1 8A

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

OZNACZANIE MASY MOLOWEJ SUBSTANCJI NIELOTNYCH METODĄ KRIOMETRYCZNĄ

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

Q pr [ml/min] A z [j.w.]

PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

Ćwiczenie 30. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna w zakresie UV-VIS, prawa absorpcji, budowa i. Wstęp

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

ANALIZA INSTRUMENTALNA

Laboratorium Inżynierii Bioreaktorów

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

SPEKTROFOTOMETRYCZNA ANALIZA

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

A4.05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

PRZEWODNOŚĆ ROZTWORÓW ELEKTROLITÓW

Ćwiczenie 7. Wyznaczanie stałej szybkości oraz parametrów termodynamicznych reakcji hydrolizy aspiryny.

PROCESY JEDNOSTKOWE W TECHNOLOGIACH ŚRODOWISKOWYCH ADSORPCJA

Ćw. 5 Absorpcjometria I

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Ćwiczenie 31. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: WAŻENIE, SUSZENIE, STRĄCANIE OSADÓW, SĄCZENIE

Deproteinizacja jako niezbędny etap przygotowania próbek biologicznych

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

K02 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie ciepła właściwego cieczy metodą kalorymetryczną

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

13. TERMODYNAMIKA WYZNACZANIE ENTALPII REAKCJI ZOBOJĘTNIANIA MOCNEJ ZASADY MOCNYMI KWASAMI I ENTALPII PROCESU ROZPUSZCZANIA SOLI

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

d[a] = dt gdzie: [A] - stężenie aspiryny [OH - ] - stężenie jonów hydroksylowych - ] K[A][OH

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

Oznaczanie zawartości fluorków w naparze herbacianym z wykorzystaniem potencjometrii bezpośredniej

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 8. Argentometryczne oznaczanie chlorków metodą Fajansa

Sprawdzenie narzędzi pomiarowych i wyznaczenie niepewności rozszerzonej typu A w pomiarach pośrednich

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

POLITECHNIKA BIAŁOSTOCKA

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Porównanie precyzji i dokładności dwóch metod oznaczania stężenia HCl

Katedra Chemii Analitycznej Metody elektroanalityczne. Ćwiczenie nr 5 WOLTAMPEROMETRIA CYKLICZNA

METODYKA POMIARÓW WIDM ABSORPCJI (WA) NA CARY-300 (Varian) i V-550 (JASCO)

Miareczkowanie potencjometryczne

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

POLITECHNIKA BIAŁOSTOCKA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Transkrypt:

CEL ĆWICZENIA Celem ćwiczenia jest zbadanie procesu adsorpcji barwnika z roztworu oraz wyznaczenie równania izotermy Freundlicha. ZAKRES WYMAGANYCH WIADOMOŚCI I UMIEJĘTNOŚCI: widmo absorpcyjne, prawo Lamberta-Beera, zjawisko adsorpcji (adsorpcja fizyczna i chemisorpcja, najczęściej stosowane adsorbenty, adsorpcja z roztworów), równanie izotermy Freundlicha, równowaga adsorpcyjna, adsorpcja i chromatografia, węgiel aktywny zastosowanie oraz działanie z uwzględnieniem procesów biologicznych. ODCZYNNIKI, MATERIAŁY I URZĄDZENIA: błękit metylenowy roztwór 0.5 mm fuksyn zasadowa roztwór 0.5 mm węgiel aktywny w postaci czystego zgranulowanego węgla Spektrofotometr z możliwością badania widma w zakresie widzialnym Statyw na probówki x2 Probówki x26 Waga laboratoryjna + naczynko wagowe x5 Pipeta automatyczna 0.- ml x2 Pipeta automatyczna 20-200 µl Pipeta szklana 0 ml x2 Końcówki do pipet automatycznych Kuweta polistyrenowa x6 Stojak na kuwety x2 Zlewka szklana 00 ml x2 Zlewka 250 ml x Naciągaczka do pipet szklanych WYKONANIE ĆWICZENIA: BADANIE ZJAWISKA ADSORPCJI BARWNIKÓW NA WĘGLU AKTYWNYM:. Do 6 probówek przenieść po ml roztworu wyjściowego błękitu metylenowego i fuksyny zasadowej i rozcieńczyć 8-krotnie wodą destylowaną. 2. Zebrać widmo powstałych roztworów względem wody destylowanej i odczytać wartość absorbancji dla długości fali 542 nm i 664 nm. Wyniki zapisać w tabeli. 3. Do 6 kolejnych probówek przenieść po 6 ml wody destylowanej będzie to próba odniesienia podczas pomiarów absorbancji. 4. Równolegle przygotować 2 serie po 6 porcji węgla aktywnego, każda porcja powinna zawierać o porcję (granulkę) czystego węgla więcej (, 2, 3, 4, 5 i 6 granulek w kolejnych probówkach). Po przygotowaniu, zważyć każdą porcję, wyniki zapisać w tabeli. Masa granulek pomiędzy seriami nie powinna się różnić o więcej niż 0%. 5. Porcje węgla aktywnego z pierwszej serii wsypać do 6 probówek roztworu barwników przygotowanych w punkcie, a drugą serię wsypać do probówek z wodą przygotowaną w punkcie 3. 6. Probówki z roztworem i wodą destylowaną wytrząsać 45 min. 7. Do kuwet pomiarowych przelać po około 3 ml roztworu mieszaniny barwników i oraz wody przygotowanej w punkcie 3.

8. Odczytać wartość absorbancji próbki dla długości fali 542 nm i 664 nm względem wody pobranej z probówki zawierającej węgiel aktywny. Wynik zapisać w tabeli. Pomiar powtórzyć dla wszystkich 6 porcji węgla pamiętając o tym, aby odniesieniem była woda zawierająca taką samą porcję węgla co próbka badana. UWAGA: Procedury od 9-6 mogą być wykonywane równolegle z procedurami -8. W zależności od grupy, do tej części zadania, należy przygotować roztwór albo błękitu metylenowego albo fuksyny zasadowej (zgodnie z zaleceniem prowadzącego). 9. Do 6 probówek przenieść po ml roztworu wyjściowego barwnika i rozcieńczyć go 6-krotnie wodą destylowaną. 0. Odczytać wartość absorbancji dla długości fali 542 nm lub 664 nm (w zależności od barwnika). Wyniki zapisać w tabeli 2.. Do 6 probówek przenieść po 6 ml wody destylowanej będzie to próba odniesienia podczas pomiarów absorbancji. 2. Równolegle przygotować 2 serie po 6 porcji węgla aktywnego, każda porcja powinna zawierać o porcję (granulkę) czystego węgla więcej (, 2, 3, 4, 5 i 6 granulek w kolejnych probówkach). Po przygotowaniu, zważyć każdą porcję, wyniki zapisać w tabeli 2. W jednej serii masa granulek nie powinna się różnić o więcej niż 0%. 3. Porcje węgla aktywnego z pierwszej serii wsypać do 6 probówek roztworu barwnika przygotowanych w punkcie 9, a drugą serię wsypać do probówek z wodą przygotowaną w punkcie. 4. Probówki z roztworem i wodą destylowaną wytrząsać 45 min. 5. Do kuwet pomiarowych pobrać po około 3 ml roztworu barwników oraz wody destylowanej. 6. Odczytać wartość absorbancji dla długości fali 542 nm i 664 nm względem wody pobranej z probówki zawierającej węgiel aktywny. Wynik zapisać w tabeli 2. Pomiar powtórzyć dla wszystkich 6 porcji węgla pamiętając o tym, aby odniesieniem była woda zawierająca taką samą porcję węgla co próbka badana. PRZYGOTOWANIE KRZYWYCH KALIBRACYJNYCH DLA BŁĘKITU METYLENOWEGO ORAZ FUKSYNY ZASADOWEJ:. Pobrać ml roztworu błękitu metylenowego i rozcieńczyć go 8-krotnie 2. Zebrać widmo barwnika względem wody w zakresie 450-800 nm oraz odczytać wartość absorbancji dla długości fali 664 nm. 3. Roztwór rozcieńczyć i ponownie zmierzyć absorbancję. Czynność powtórzyć aby otrzymać minimum 5 punktów pomiarowych. Wyniki zapisać w tabeli 3. UWAGA: Punkty na krzywej kalibracyjnej powinny być równomiernie od siebie oddalone. 4. Analogicznie wykonać serię pomiarów absorbancji dla roztworów fuksyny zasadowej. Absorbancję odczytywać w tym przypadku dla długości fali 542 nm. Po zakończonych pomiarach należy uporządkować stanowisko pracy i umyć wykorzystywany sprzęt laboratoryjny.

PROTOKÓŁ Z POMIARÓW. Autorzy: Tabela. Masy użytego adsorbenta oraz wyniki pomiarów absorbancji barwników przed i po dodaniu adsorbenta. Masa węgla aktywnego Absorbancja początkowa Absorbancja końcowa m i [g] m ii [g] A(0) FZ A(0) BM A(k) FZ A(k) BM 2 3 4 5 6 Średnia X X X X Odchylenie standardowe X X X X gdzie: A BM - absorbancja roztworu błękitu metylenowego przy 664 nm A FZ - absorbancja roztworu fuksyny zasadowej przy 554 nm Tabela 2. Masy użytego adsorbenta oraz wyniki pomiarów absorbancji barwnika przed i po dodaniu adsorbenta. Masa węgla aktywnego m i [g] m ii [g] Absorbancja początkowa (λ= ) Absorbancja końcowa (λ= ) 2 3 4 5 6 Średnia X X X Odchylenie standardowe X X X Tabela 3. Wyniki pomiarów absorbancji błękitu metylenowego (BM) i fuksyny zasadowej (FZ) przy różnych stężeniach ich roztworów. Nr. pomiaru C BM [mol/dm 3 ] A BM C FZ [mol/dm 3 ] A FZ. 2. 3. 4. 5. gdzie: C - stężenie barwnika w roztworze A BM - absorbancja roztworu błękitu metylenowego przy 664 nm

A FZ - absorbancja roztworu fuksyny zasadowej przy 554 nm OPRACOWANIE WYNIKÓW:. Obliczyć stężenie molowe roztworu błękitu metylenowego oraz fuksyny zasadowej po 8- krotnym rozcieńczeniu. 2. Wykonać krzywe kalibracyjne dla obu roztworów barwników. 3. W oparciu o krzywe kalibracyjne dla obu barwników i pomiary absorbancji obliczyć stężenie molowe błękitu metylenowego i fuksyny w mieszaninie barwników dla wszystkich badanych próbek. 4. Sporządzić tabelę. Tabela 4. Wyniki pomiarów izotermy Freundlicha C(0) FZ C(0) BM C(k) FZ [mol/dm 3 ] [mol/dm 3 ] [mol/dm 3 ] gdzie: C(k) BM [mol/dm 3 ] BM błękit metylenowy, FZ fuksyna zasadowa, C(0) początkowe stężenie barwnika (przed wprowadzeniem węgla), C(k) stężenie końcowe barwnika (po adsorpcji), a ilość zaadsorbowanego barwnika wyrażona w molach na kg węgla, ( C(0) C( k)) V a = m ii V objętość roztworu [dm 3 ] 5. Wykorzystując równanie Freundlicha, porównać proces adsorpcji barwnika na węglu aktywnym względem adsorpcji tego barwnika w obecności drugiego barwnika. a = kc n a - ilość moli zaadsorbowanej substancji na kg adsorbentu, c - stężenie substancji w równowadze z substancją zaadsorbowaną na węglu (końcowe), k, n - stałe 6. Sporządzić wykres log(a) = f(log(c ki )) i wyliczyć wartości k i n dla obu barwników. a Rysunek. Wykres ilustrujący zlogarytmowaną postać izotermy Freundlicha. 7. Podać parametry prostych dopasowanych do danych eksperymentalnych. 8. Wykorzystując wiedzę literaturową przeprowadzić analizę procesu adsorpcji barwnika na węglu aktywnym.

Literatura: [] P. Atkins., Chemia fizyczna, Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 200 [2] A. Olszowski, Doświadczenia fizykochemiczne, Oficyna Wydawnicza Politechniki Wrocławskiej, Wrocław 2004 Opracowali: mgr Sylwia Wiśniewska Kubka i mgr inż. Artur Wrona pod opieką dr hab. Krystiana Kubicy Edytował: mgr inż. Jan Procek