1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

Podobne dokumenty
ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

REAKCJE UTLENIAJĄCO-REDUKCYJNE

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

Piotr Chojnacki 1. Cel: Celem ćwiczenia jest wykrycie jonu Cl -- za pomocą reakcji charakterystycznych.

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

Ćwiczenie 3. Otrzymywanie i badanie właściwości chemicznych alkanów, alkenów, alkinów i arenów.

Ćwiczenie 50: Określanie tożsamości jonów (Farmakopea VII-IX ( )).

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

G-VI. Węgiel i jego związki z wodorem. Pochodne węglowodorów

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

Ćwiczenie 1. Badanie wypierania wodoru z wody za pomocą metali

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Protokół: Reakcje charakterystyczne cukrowców

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

ĆWICZENIE III. Reakcje charakterystyczne na węglowodory (alifatyczne, aromatyczne), alkohole, aldehydy i ketony

Ćwiczenie 1. Zależność szybkości reakcji chemicznych od stężenia reagujących substancji.

INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ- Kwasy i wodorotlenki

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Badanie aktywności enzymów z klasy oksydoreduktaz. Oznaczenie witaminy C

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

Współczesne metody chromatograficzne: Chromatografia cienkowarstwowa

G-VII. Substancje o znaczeniu biologicznym

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Chemia Organiczna Syntezy

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

Ćwiczenia laboratoryjne 2

VI. Chemia opakowań i odzieży

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

TŁUSZCZOWCÓW. Trimetyloamina ma charakterystyczny zapach solanki śledziowej, który pozwala zidentyfikować obecność choliny w fosfolipidach.

ALKACYMETRIA. Ilościowe oznaczanie HCl metodą miareczkowania alkalimetrycznego

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

Odpowiedź:. Oblicz stężenie procentowe tlenu w wodzie deszczowej, wiedząc, że 1 dm 3 tej wody zawiera 0,055g tlenu. (d wody = 1 g/cm 3 )

OTRZYMYWANIE I WŁAŚCIWOŚCI ZWIĄZKÓW KOMPLEKSOWYCH

RÓWNOWAGA I SZYBKOŚĆ REAKCJI CHEMICZNEJ

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Ćwiczenie 2. Analiza jakościowa związków organicznych zawierających azot, siarkę oraz fluorowcopochodne.

ETAP II heksacyjanożelazian(iii) potasu, siarczan(vi) glinu i amonu (tzw. ałun glinowo-amonowy).

ĆWICZENIA LABORATORYJNE WYKRYWANIE WYBRANYCH ANIONÓW I KATIONÓW.

RÓWNOWAGI W ROZTWORACH ELEKTROLITÓW.

STRUKTURA A WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE I FIZYCZNE PIERWIASTKÓW I ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

1. Oznaczanie aktywności lipazy trzustkowej i jej zależności od stężenia enzymu oraz żółci jako modulatora reakcji enzymatycznej.

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

Zmiana barwy wskaźników w roztworach kwaśnych, obojętnych i zasadowych.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 6. Manganometryczne oznaczenia Mn 2+ i H 2 O 2

Po wykonaniu każdego ćwiczenia należy zanotować spostrzeżenia i wnioski dotyczące przebiegu reakcji.

REAKCJE W CHEMII ORGANICZNEJ

Ćwiczenie 1. Reakcje charakterystyczne miedzi(ii)

REAKCJE CHEMICZNE WYBRANYCH PIERWIASTKÓW

TWARDOŚĆ WODY. Ca(HCO 3 ) HCl = CaCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2. Mg(HCO 3 ) 2 + 2HCl = MgCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

Zadania laboratoryjne

STĘŻENIE JONÓW WODOROWYCH. DYSOCJACJA JONOWA. REAKTYWNOŚĆ METALI

ĆWICZENIE 3. I. Analiza miareczkowa mocnych i słabych elektrolitów

III-B. Chemia w kuchni

Projekt współfinansowany przez Unię Europejską w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

BADANIE WŁAŚCIWOŚCI FIZYKOCHEMICZNYCH AMINOKWASÓW

REDOKSYMETRIA ZADANIA

WYCHOWANIE FIZYCZNE - STUDIA ZAOCZNE 2010/2011

V. Węglowodory. Hydroksylowe pochodne węglowodorów alkohole i fenole

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

Identyfikacja wybranych kationów i anionów

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

2. Ekstrakcja cieczy = C1 C2

ETAP II Zadanie laboratoryjne. Wykorzystanie roztwarzania metali w analizie jakościowej

ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

ĆWICZENIE NR 1 Analiza ilościowa miareczkowanie zasady kwasem.

Ćwiczenie 5 Izolacja tłuszczów z surowców naturalnych

Synteza Cu(CH 3 COO) 2 H 2 O oraz (NH 4 ) 2 Ni(SO 4 ) 2 6H 2 O

ANALIZA MOCZU FIZJOLOGICZNEGO I PATOLOGICZNEGO I. WYKRYWANIE NAJWAŻNIEJSZYCH SKŁADNIKÓW NIEORGANICZNYCH I ORGANICZNYCH MOCZU PRAWIDŁOWEGO.

Analiza anionów nieorganicznych (Cl, Br, I, F, S 2 O 3, PO 4,CO 3

2.4. ZADANIA STECHIOMETRIA. 1. Ile moli stanowi:

Scenariusz lekcji w technikum z działu Jednofunkcyjne pochodne węglowodorów ( 1 godz.) Temat: Estry pachnąca chemia.

WĘGLOWODANÓW HO H H O H C H C O H O H HC C H O H C H O C C 3 H 2 O. H furfural. H pentoza C H 2 O H O H H C O H HC C C C H.

Wykrywanie obecności enzymów.

I KSZTAŁCENIA PRAKTYCZNEGO. Imię i nazwisko Szkoła Klasa Nauczyciel Uzyskane punkty

Instrukcja do ćwiczenia WŁAŚCIWOŚCI WYBRANYCH ANIONÓW.

ZJAWISKA FIZYCZNE I CHEMICZNE

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

Jak zmierzyć odczyn roztworu. - naturalne i syntetyczne wskaźniki ph.

Rozświetlone laboratorium. mgr inż. Aleksandra Korbut dr inż. Ewelina Ortyl dr inż. Sonia Zielińska Jerzy Dąbrowski

Wykrywanie witaminy C i mierzenie jej zawartości w różnych produktach

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

UWAGA NA WRZĄCY OLEJ!!!!

Pierwiastki bloku d. Zadanie 1.

WOJEWÓDZKI KONKURS PRZEDMIOTOWY Z CHEMII DLA UCZNIÓW GIMNAZJÓW - rok szkolny 2016/2017 eliminacje rejonowe

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

Transkrypt:

ĆWICZENIE IV - WYKRYWANIE WITAMIN Odczynniki: - chloroform bezwodny, - bezwodnik kwasu octowego, - trójchlorek antymonu roztwór nasycony w chloroformie, - 1,3-dichlorohydryna gliceryny - żelazicyjanek potasu roztwór nasycony, - chlorek żelazowy roztwór rozcieńczony, - anilina, - kwas solny stężony, - kwas siarkowy, stężony - 1% roztwór jodu, - kleik skrobiowy, - żelazicyjanek potasu roztwór 1%, - 5% roztwór NaOH, - 10% kwas octowy, - butanol. Sprzęt laboratoryjny: - statyw na probówki, - probówki, - zlewki: 400 cm 3, 100 cm3, - termometr do 50 o C, - pipety: 1 cm 3, 2 cm 3, 5 cm 3, - łaźnia wodna, - pręcik szklany. 1. Wykrywanie witaminy A w próbce 1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu A. Do probówki wlać dwie krople badanej próbki, dodać ok. 0,5 cm 3 chloroformu oraz dwie krople bezwodnika kwasu octowego i zmieszać przez wytrząsanie. B. Następnie dodać pipetką 2 cm 3 chloroformowego roztworu trójchlorku antymonu i wymieszać przez wstrząsanie. C. Obserwować, czy następuje zmiana barwy. Pojawienie się niebieskiego, stopniowo blednącego zabarwienia świadczy o obecności witaminy A. 1.2. Reakcja z 1,3-dichlorohydryną gliceryny Wykonanie A. Do probówki wlać 2 krople badanej próbki, dodać 1 cm3 chloroformu, 1 cm3 bezwodnika kwasu octowego i 4 cm3 1,3-dichlorohydryny gliceryny.

B. Probówkę z mieszaniną wstawić na kilka minut do zlewki z wodą ogrzaną do 25oC. Obserwować, czy następuje zmiana barwy. Pojawienie się niebieskiego zabarwienia świadczy o obecności witaminy A. Uwaga Analogiczną reakcję dają karoteny, prowitaminy A. W tej samej reakcji witaminy D2 i D3 dają zabarwienie zielone. 1.3. Reakcja z kwasem siarkowym Do probówki odmierzyć 2 krople witaminy A oraz 1 cm 3 chloroformu, dodać następnie 0,5 cm 3 stężonego kwasu siarkowego. W obecności witaminy A i β-karotenu powstaje niebieska barwa. 2. Wykrywanie witaminy D w próbce 2.1. Reakcja z 1,3-dichlorohydryną gliceryny A. Do probówki wlać 2 krople badanej próbki, dodać 1 cm3 chloroformu i 4 cm3 1,3- dichlorohydryny gliceryny. B. Obserwować, czy następuje zmiana barwy. Pojawienie się zielonego zabarwienia świadczy o obecności witaminy D w badanej próbce. Uwaga W tych samych warunkach witamina A daje zabarwienie niebieskie. 2.2 Reakcja z aniliną Odczynniki: A. Do probówki odmierzyć 4 cm 3 badanej próbki, dodać 1 cm3 aniliny i 2-3 krople stężonego kwasu solnego (podwarstwić). B. Obejrzeć zabarwienie obu warstw. Intensywnie czerwona barwa dolnej warstwy świadczy o obecności witaminy D w badanej próbce. 2.,3 Reakcja z kwasem siarkowym Do probówki odmierzyć 2 krople witaminy D oraz 1 cm 3 chloroformu, wymieszać, dodać następnie 0,1 cm 3 bezwodnika octowego oraz 0,1 cm 3 stężonego kwasu siarkowego i całość ostrożnie wymieszać. W obecności witaminy D powstaje zabarwienie czerwone, szybko przechodzące w fiolet i często błękitne, a potem zielone (w zależności od zawartości witaminy w próbce).

3. Wykrywanie witamin A i D w tranie A. Do probówki A pobrać 1,0 cm 3 tranu dodać 5 cm 3 chloroformu zatkać korkiem i całość wytrząsać energicznie przez 10 minut. B. Do probówki B odmierzyć 1 cm 3 odczynnika Carra-Price a C. Do probówki B pobrać 2,0 cm 3 roztworu chloroformowego tranu uzyskanego w pierwszym punkcie, wstawić do łaźni wodnej i obserwować zabarwienie roztworu.

Powstanie niebieskiego a następnie czerwono-fiołkowego zabarwienia świadczy o obecności witamin A i D. 4. Badanie rozpuszczalności karotenoidów w rozpuszczalnikach organicznych Wykonanie Przygotowanie ekstraktu chloroformowego 1. Do probówek odmierzyć po 1 cm3 soku pomidorowego i soku z marchwi. 2. Dodać 5 cm3 chloroformu i wytrząsać przez 5 minut. W obecności karotenoidów: likopenu w soku pomidorowym i β-karotenu w soku marchwiowym warstwa chloroformowa barwi się odpowiednio na pomarańczowo i żółto. 5. Wykrywanie witaminy C w próbce 5.1. Reakcja z żelazicyjankiem potasu A. Do probówki wlać ok. 2 cm3 badanej próbki, 1 kroplę nasyconego roztworu żelazicyjanku potasu i 1 kroplę rozcieńczonego roztworu chlorku żelazowego. B. Obserwować, czy nastąpi zmiana barwy. Pojawienie się niebieskiego lub zielonego zabarwienia świadczy o obecności witaminy C. 5.2. Reakcja z jodem Do 2 probówek wlać kilka kropli kleiku skrobiowego i kilka kropli roztworu jodu. Do 1 probówki wlewać po kropli roztwór kwasu askorbinowego, do 2 probówki sok z cytryny. Zanotować liczbę kropli badanych roztworów potrzebnych do odbarwienia roztworu jodu. Następnie oba roztwór kwasu askorbinowego i sok z cytryny gotować na łaźni wodnej przez 5 minut. Powtórzyć reakcję z jodem i ponownie zanotować liczbę kropli zużytych do odbarwienia jodu. 6. Wykrywanie tiaminy Tiamina w środowisku alkalicznym w obecności żelazicyjanku potasu lub chlorku rtęciowego ulega utlenieniu do tiochromu związku przyjmującego niebieską fluorescencję.

Do jednej probówki wlać 1 cm 3 roztworu tiaminy, zaś do drugiej 1 cm 3 roztworu drożdży, następnie do obu probówek dodać 1 cm 3 1% roztworu K 3 Fe(CN) 6 i 1 cm 3 20% NaOH, wymieszać i odstawić na 10 minut. Następnie dodać 5 ml alkoholu butylowego, zamknąć szczelnie probówki i wytrząsać przez 5 minut. Po oddzieleniu warstw fazę alkoholową przenieść do suchych probówek. Obserwować fluorescencję fazy alkoholowej w świetle lampy UV. 7. Wykrywanie witaminy B2. W wodnych alkalicznych roztworach pod wpływem światła i tlenu ryboflawina ulega rozpadowi na lumiflawinę i tetrozę. Lumiflawina fluoryzuje żółtozielono w świetle lampy UV i w tej postaci jest rozpuszczalna w chloroformie. Do1 probówki wlać 1 cm 3 roztworu ryboflawiny, do drugiej 1 cm 3 serwatki, do obu dodać 1 cm 3 5% NaOH i wytrząsać przez 2 minuty. Następnie zawartość probówek zakwasić 5 kroplami 10% kwasu octowego i zmieszać z równą objętością chloroformu. Wytrząsać 5 minut. Po oddzieleniu się warstw, fazę chloroformową oglądać w świetle lampy UV. Przeanalizować uzyskane wyniki. Podać przebieg reakcji