1. Rodzaj materiału klinicznego w zależności od kierunku i metodyki badań



Podobne dokumenty
1. Rodzaj materiału klinicznego w zależności od kierunku i metodyki badań

Załącznik nr 4 Metodyka pobrania materiału przedstawiona jest w osobnym Instrukcja PZH

Poniższe wytyczne dotyczą wszystkich rodzajów materiału klinicznego.

Załącznik nr 1 do instrukcji I-01/PO-21/LEI/D

ZALECENIE POBIERANIE, TRANSPORT I PRZECHOWYWANIE PRÓBKI KRWI DO BADANIA WIRUSOLOGICZNEGO/ BAKTERIOLOGICZNEGO

INSTRUKCJA POBIERANIA MATERIAŁU DO LABORATORYJNYCH BADAŃ DIAGNOSTYCZNYCH OD CHORYCH PODEJRZANYCH O ZAKAśENIE WIRUSEM GRYPY SEZONOWEJ

Wojewódzka Stacja Sanitarno-Epidemiologiczna w Poznaniu

ELIMINACJA ODRY/RÓŻYCZKI PROGRAM WHO REALIZACJA W POLSCE ZASADY INSTRUKCJE

Grypa groźna choroba zakaźna

ZASADY POSTĘPOWANIA W OKREASCH EPIDEMICZNYCH ZACHPROWAŃ NA GRYPĘ W SZPITALU KLINICZNYM IM. K.JONSCHERA UM W POZNANIU

ELIMINACJA ODRY/RÓŻYCZKI

Instrukcja pobierania, przygotowania, przechowywania i transportu materiałów do badań w ZGiIK, pobieranych przez zleceniodawców zewnętrznych

Spis treści: 1. Cel 2. Opis postepowania 3. Dokumenty związane 4. Załączniki

INSTRUKCJE POBIERANIA MATERIAŁU DO BADANIA

Wytyczne dotyczące pobierania, transportu i przechowywania próbek do badań.

Wojewódzka Stacja Sanitarno Epidemiologiczna w Bydgoszczy Dział Laboratoryjny Oddział Mikrobiologii i Parazytologii Lekarskiej

Wojewódzka Stacja Sanitarno Epidemiologiczna w Bydgoszczy Dział Laboratoryjny Oddział Mikrobiologii i Parazytologii Lekarskiej

L.p. Nazwa badania. Czas oczekiwania na wynik. Pobranie materiału do badania BADANIA MIKROBIOLOGICZNE - POSIEWY

INSTYTUT HEMATOLOGII I TRANSFUZJOLOGII

Procedura pobrania i transportu materiału do badania

LABORATORIUM MIKROBIOLOGICZNE INSTRUKCJA POBIERANIA I POSTĘPOWANIA Z PRÓBKAMI DO BADAŃ MIKROBIOLOGICZNYCH

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 639

FORMULARZ ASORTYMENTOWO CENOWY załącznik nr 7

Badania kału wirusologiczne, bakteriologiczne i parazytologiczne

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 448

MATERIAŁY Z GÓRNYCH DRÓG ODDECHOWYCH - badanie bakteriologiczne + mykologiczne

Instrukcja dla Klienta

Pobranie i transport materiału biologicznego do badań mikologicznych

Prawidłowe zasady podawania leków donosowo

Instrukcja Robocza do Procedury Ogólnej PO-05 IR-21/PO-05

2. ZAKRES STOSOWANIA: Zleceniodawcy, pacjenci, osoby pobierające i transportujące materiał biologiczny (próbki) do Oddziału Mikrobiologii.

Pobieranie, transport i przechowywanie materiału biologicznego do badań mikrobiologicznych

KOAGULOLOGIA. Przed każdym pobieraniem krwi należy umyć ręce i nałożyć rękawice.

Jakość próbek do badań serologicznych w ramach monitoringu szczepień lisów przeciwko wściekliźnie. Główny Inspektorat Weterynarii

Rodzaj materiału. Uwagi dla pacjenta. krew, płyny z jam ciała, PMR, punktaty lub inne materiały w podłożach do aparatu BactAlert do 10 dni

Dräger DCD 5000 Pobieranie płynu z jamy ustnej

Pobieranie i transport próbek materiału do badań epidemiologicznych

ZAŁĄCZNIK DO PRZEGLĄDU ZLECEŃ

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W LABORATORIUM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE Nazwa oznaczenia/ Procedura Badawcza PB/EP/PS/03

RAPORT Z BADAŃ 164/Z/ /D/JOGA. Dostarczony materiał: próbki tworzyw sztucznych. Ilość próbek: 1. Rodzaj próbek: tworzywo

10) istotne kliniczne dane pacjenta, w szczególności: rozpoznanie, występujące czynniki ryzyka zakażenia, w tym wcześniejsza antybiotykoterapia,

QMS Quality in Microbiology Scheme Wydanie 14 Data wydania: czerwiec 2018

MIKROBIOLOGIA. Z kanału nosowego pobiera się wymaz oddzielnym jałowym wacikiem (wymazówką) suchym lub zwilżonym jałowym roztworem soli fizjologicznej.

IU-01 PSSE w Ostrowie Wielkopolskim Laboratorium Mikrobiologii i Parazytologii Wyd.6/ strona1/1

CENNIK - DIAGNOSTYKI MIKROBIOLOGICZNEJ

MATERIAŁY SZKOLENIOWE DLA ZAKŁADÓW HIGIENY WETERYNARYJNEJ W ZAKRESIE LABORATORYJNEJ DIAGNOSTYKI AFRYKAŃSKIEGO POMORU ŚWIŃ

Ogólne zasady pobierania i transportu materiału do badań mikrobiologicznych

CENNIK DIAGNOSTYKA NIEPŁODNOŚCI MĘSKIEJ

CZĘŚĆ 1 TEST KASETKOWY DO WYKRYWANIA KALPROTEKTYNY I LAKTOFERYNY W KALE. 53/PNP/SW/2018 Załącznik nr 1 do SIWZ formularz asortymentowo cenowy

Opis przedmiotu zamówienia wraz z wymaganiami technicznymi i zestawieniem parametrów

CZĘŚĆ 1 TEST KASETKOWY DO WYKRYWANIA KALPROTEKTYNY I LAKTOFERYNY W KALE. 73/PNP/SW/2018 Załącznik nr 1 do SIWZ formularz asortymentowo cenowy

HEMATOLOGIA. Przed każdym pobieraniem krwi należy umyć ręce i nałożyć rękawice.

P r o c e d u r a SPRAWDZIŁ(A): Prof. dr hab. Zygmunt Pejsak. Data i podpis

Zakład Diagnostyki Laboratoryjnej, Koagulologii i Mikrobiologii. Transport materiału biologicznego do laboratorium

zarządza się co następuje:

Gorączka Q epidemiologia, patogeneza oraz diagnostyka laboratoryjna. Wskazówki dla lekarzy weterynarii i hodowców

Genomic Micro AX Swab Gravity Plus

Europejska Komisja ds. Kontrolowania Pryszczycy (EUFMD) Vademecum wykrywania ogniska pryszczycy i dochodzenia Wersja 1 (12/2009)

Rekomendacje diagnostyczne inwazyjnych zakażeń bakteryjnych nabytych poza szpitalem M. Kadłubowski, A. Skoczyńska, W. Hryniewicz, KOROUN, NIL, 2009

SHL.org.pl SHL.org.pl

Oferta diagnostyczna Instytutu Mikroekologii. Mgr Małgorzata Drobczyńska Instytut Mikroekologii Ul. Sielska Poznań

Wyniki badań odbierane są osobiście przez pacjenta, przez jego przedstawiciela ustawowego lub przez osobę upoważnioną przez pacjenta.

Pobieranie i transport próbek kału do badania bakteriologicznego w kierunku nosicielstwa pałeczek Salmonella i Shigella /instrukcja dla klienta/

Diagnostyka mikrobiologiczna swoistych i nieswoistych zakażeń układu oddechowego

PROCEDURA BADAWCZA P0BIERANIE I TRANSPORT MATERIAŁU DO BADAŃ MIKROBIOLOGICZNYCH PB - 01/SMiP

Zestaw SIT Szybki Identyfikacyjny Test Szczepów Salmonella Enteritidis i Typhimurium

Genomic Mini AX Milk Spin

ZALECENIE POBIERANIE, TRANSPORT I PRZECHOWYWANIE PRÓBKI KAŁU DO OGÓLNEGO BADANIA BAKTERIOLOGICZNEGO

Załącznik nr 1A do siwz Część I - Zestaw testowy do szybkiej identyfikacji Escherichia coli

Zestaw SIT InHaVi Szybki Identyfikacyjny Test Szczepów Salmonella Infantis, Hadar oraz Virchow

SNAP* BVD. Bovine Virus Diarrhea Antigen Test Kit. Zestaw diagnostyczny do wykrywania antygenu wirusa biegunki i choroby błon śluzowych bydła (BVD-MD)

Zakład Patologii i Diagnostyki Laboratoryjnej

OFERTA TEMATÓW PRAC DYPLOMOWYCH (MAGISTERSKICH) do zrealizowania w Katedrze MIKROBIOLOGII

Załącznik nr 3 Szczegółowa oferta cenowa Lista badań

Genomic Maxi AX Direct

GENODIET ZDROWIE ZAPISANE W GENACH

- podłoża transportowo wzrostowe..

WYKAZ METODYK BADAWCZYCH STOSOWANYCH DO BADAŃ MATERIAŁU BIOLOGICZNEGO WYKONYWANYCH W ODDZIALE LABORATORYJNYM MIKROBIOLOGII KLINICZNEJ

Genomic Mini AX Plant Spin

WSSE WROCŁAW IM-01/PM-09. Strona / stron 1 z 6 Data wydania

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W LABORATORIUM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE

WOJEWÓDZKA STACJA SANITARNO-EPIDEMIOLOGICZNA W O L S Z T Y N I E LABORATORIUM BADAŃ EPIDEMIOLOGICZNO-KLINICZNYCH INSTRUKCJA I-01/PO-03

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W LABORATORIUM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE Nazwa oznaczenia/

Transport próbek materiału biologicznego do laboratorium

WYKAZ METOD BADAWCZYCH STOSOWANYCH W LABORATORIUM EPIDEMIOLOGII WSSE W SZCZECINIE Nazwa oznaczenia/ IV z dnia immunoenzymatyczną ELISA -

WSSE WROCŁAW IM-01/PM-09. Strona / stron 1 z 8 Data wydania

WARSZTATY ODCHOWU CIELĄT

PDF created with pdffactory Pro trial version

INFORMACJA DLA PACJENTA

Medycyna Praktyczna - portal dla lekarzy. 1 z :52

Lista badań prowadzonych w ramach zakresu elastycznego nr 2/Z Załącznik do zakresu akredytacji nr AB1029

ROTA-ADENO Virus Combo Test Device

IMMUNOCHEMIA. Przed każdym pobieraniem krwi należy umyć ręce i nałożyć rękawice.

DETEKCJA PATOGENÓW DRÓG ODDECHOWYCH

INSTRUKCJA ROBOCZA I'i.ILIHZ.2. Wyd. nr 1 z dnia r. Data zatwierdzenia. 06o'72pqq

Saccharomyces Transformer Kit zestaw do przygotowywania i transformacji komórek kompetentnych Saccharomyces cerevisiae. Metoda chemiczna.

ZLECANIE BADAŃ. WARUNKI POBRANIA I TRANSPORTU MATERIAŁU

Zakład Mikrobiologii Klinicznej [1]

Wysypka i objawy wielonarządowe

Status oznaczenia / pomiaru Bakteriologiczne badanie krwi. Metoda badawcza

Transkrypt:

Zalecenia dotyczące pobierania, przechowywania i transportu materiałów klinicznych przeznaczonych do badań diagnostycznych w Pracowni Diagnostycznej Laboratorium Zakładu Badania Wirusów Grypy (obowiązuje od 16.12.2013 r.) 1. Rodzaj materiału klinicznego w zależności od kierunku i metodyki badań Poz.* 1. Badanie (zgodnie z Cennikiem Badań Diagnostycznych Laboratorium Zakładu Badania Wirusów Grypy w NIZP-PZH, taryfa opłat nr 15) Oznaczenie poziomu przeciwciał antyhemaglutyninowych w surowicy w kierunku 3 szczepów wirusa grypy typu/podtypu A(H1N1), A(H3N2) i B Rodzaj materiału klinicznego** - surowica krwi 1 - krew 1 2. 3. 8. 9. 10. Wykrywanie wirusa grypy (typ A i B) metodą RT-PCR - wymaz z gardła 2 Wykrywanie wirusa grypy (typ A i B) oraz wirusa RS metodą RT-PCR Wykrywanie 12 wirusów oddechowych: grypy typu A i B, wirusa RS typu A i B, parainfluenzy typu 1, 2 i 3, ludzkiego metapneumowirusa (hmpv), adenowirusa, rhinowirusa, coronawirusa 229E/NL63 i OC43/HKU1 metodą PCR Wykrywanie wirusa grypy (typ A i B) metodą immunologiczną (tzw. szybki test) w przypadku uzyskania dodatniego wyniku badania należy wykonać badanie potwierdzające metodą molekularną Wykrywanie wirusa grypy (typy A i B oraz subtypy A/H1N1/, A/H1N1/pdm09, A/H3N2/) metodą RT-PCR. - aspirat lub popłuczyny z nosogardzieli - popłuczyny z nosa - popłuczyny z drzewa oskrzelowego 3 - płyn mózgowo-rdzeniowy 4 - wysięk z ucha środkowego 5 - wymaz z gardła 2 - wymaz z gardła 2 - aspirat lub popłuczyny z nosogardzieli - popłuczyny z nosa - popłuczyny z drzewa oskrzelowego 3 - płyn mózgowo-rdzeniowy 4 - wysięk z ucha środkowego 5 * numer pozycji, zgodnie z Cennikiem Badań Diagnostycznych Laboratorium Zakładu Badania Wirusów Grypy w NIZP-PZH, taryfa opłat nr 15 ** wykonanie badania w innym materiale może być możliwe po wcześniejszym uzgodnieniu z laboratorium 1 dla właściwej interpretacji wyników badanie powinno zostać wykonane dla pary surowic, tj. surowicy z ostrego okresu choroby, a następnie surowicy pobranej w okresie rekonwalescencji 2 wskazane jest dostarczenie łączonej próbki do badań, tj. wymazu z gardła wraz z wymazami z nosa 3 w przypadku zajęcia dolnych dróg oddechowych 4 w przypadku powikłań ze strony układu nerwowego 5 w przypadku zapalenia ucha środkowego Str. 1/5

2. Sposób pobrania, przechowywania i transportu materiału klinicznego Wszystkie materiały powinny być dokładnie, czytelnie i w sposób trwały oznakowane i zawierać informację dotyczącą daty pobrania materiału. Zgodnie ze standardowymi środkami ostrożności wszystkie próbki należy traktować jako materiał potencjalnie zakaźny. 2.1. Surowica krwi lub krew (Poz. 1 Cennika) Pojedyncza próbka może nie stanowić poparcia diagnozy klinicznej dlatego też badanie serologiczne należy wykonać dla pary surowic: z ostrego okresu choroby, a następnie z okresu rekonwalescencji. Próbka z ostrej fazy choroby powinna być pobrana zaraz po wystąpieniu pierwszych objawów klinicznych, ale nie później niż 7 dni po ich wystąpieniu. Próbki surowicy od rekonwalescentów powinny być pobierane po 2-4 tygodniach od zachorowania. surowica w objętości 0,5 ml - 1 ml: Krew pobraną na skrzep należy odwirować (10 min. 2000 r.p.m.), a następnie uzyskaną surowicę (niezhemolizowaną, bez włóknika) należy przenieść do jałowej, podpisanej danymi pacjenta oraz datą pobrania materiału, szczelnie zamykanej probówki. Surowicę należy przechowywać i transportować w temp. chłodni (5±3 C) maksymalnie 48 godz. od chwili uzyskania surowicy. Powyżej 48 godz. próbkę należy przechowywać i transportować w stanie zamrożenia. krew pełna w objętości około 5 ml: Krew pełna pobrana na skrzep. Próbkę należy dostarczyć do laboratorium bezzwłocznie w przeciągu 2 h od pobrania. 2.2. Wymaz z gardła, wymaz z nosa, wymaz z nosogardzieli (Poz. 2, Poz. 3, Poz. 8, Poz. 9, Poz. 10 Cennika) 2.2.1. Materiał najlepiej jest pobrać do 7 dnia od momentu wystąpienia objawów choroby. Sposób pobrania wymazów z gardła i nosa opisano w pkt. 2.2.2. Pobrany materiał należy przechowywać i transportować w pozycji pionowej w temp. chłodni (5±3 C) i dostarczyć do laboratorium tak szybko jak jest to możliwe, najlepiej w ciągu 24 godz. od chwili pobrania. Jeśli dostarczenie próbki w takim czasie nie jest możliwe, wówczas z pobranych materiałów musi być przygotowana zawiesina w objętości do 2 ml podłoża transportowego wirusologicznego lub ewentualnie roztworu soli fizjologicznej lub PBS. Zawiesinę należy przygotować w sterylnej, szczelnie zamykanej probówce, nadającej się do mrożenia w temp. -70 C. Do probówki należy przelać płyn, w którym zawieszone są wymazy, a następnie uzupełnić go do objętości nie więcej niż 2 ml podłożem transportowym wirusologicznym lub ewentualnie jałowym PBS lub roztworem soli fizjologicznej. Przygotować zawiesinę poprzez przeniesienie każdego z patyczków wymazowych do próbówki i energiczne poruszanie patyczkiem wymazowym, tak by materiał kliniczny obecny na patyczku mógł znaleźć się w ten sposób z roztworze. Zawiesinę taką (bez patyczków wymazowych) należy zamrozić w temp. -70 C lub niższej i dostarczyć do laboratorium w warunkach uniemożliwiających rozmrożenie. Str. 2/5

2.2.2. Instrukcja pobrania wymazów z gardła i nosa. NALEŻY STOSOWAĆ WYŁĄCZNIE STERYLNE WYMAZÓWKI, WYKONANE W CAŁOŚCI Z TWORZYWA SZTUCZNEGO, Z WACIKIEM Z WŁÓKNA SYNTETYCZNEGO NP. SZTUCZNY JEDWAB, WISKOZA, DACRON ITP. WYMAZÓWKI Z DREWNIANYM PATYCZKIEM oraz BAWEŁNIANYM WACIKIEM MOGĄ ZAWIERAĆ SUBSTANCJE, KTÓRE INAKTYWUJĄ NIEKTÓRE WIRUSY ORAZ HAMUJĄ REAKCJĘ PCR, W ZWIAZKU Z CZYM NIE NALEŻY ICH UŻYWAĆ. a. wymaz z gardła należy poprosić pacjenta o szerokie otwarcie jamy ustnej. Używając szpatułki docisnąć język ku dołowi, co pozwoli uniknąć kontaminacji wymazu śliną i za pomocą suchego sterylnego patyczka wymazowego energicznie potrzeć obie powierzchnie migdałków oraz tylną ścianę gardła (bez dotykania powierzchni jamy ustnej) zwracając szczególną uwagę na miejsca zapalnie zmienione. Koniec patyczka wymazowego (tuż przy zakrętce) odłamać. Patyczek wymazowy z pobranym materiałem umieścić następnie w jałowej probówce transportowej (bez dotykania wacikiem jej ścianek), z którą został on dostarczony i do której należy dodać ok. 1-2 ml podłoża transportowego wirusologicznego, ewentualnie soli fizjologicznej lub PBS. Wacik i tylko wacik patyczka wymazowego musi znajdować się w płynie transportowym. Nie stosować innych podłóż, np. bakteriologicznych (węgiel, agar itp.). Probówkę zakręcić i podpisać (identyfikacja pacjenta/próbki, data pobrania wymazu). Patrz: ryc. 1. Ryc. 1. b. wymazy z nosa (z obu nozdrzy) należy upewnić się czy przed pobraniem materiału pacjent nie wydmuchiwał nosa. W celu pobrania wymazu należy delikatnie odchylić głowę pacjenta do tyłu i przytrzymać za podbródek. Drugą ręką umieścić koniec suchego sterylnego patyczka wymazowego w prawym nozdrzu pacjenta, równoległe do podniebienia. Pozostawić przez kilka sekund, a następnie powolnym ruchem rotacyjnym wyjąć. Koniec patyczka wymazowego (tuż przy zakrętce) odłamać. Patyczek wymazowy umieścić w probówce, z którą został on dostarczony. Probówkę Str. 3/5

zakręcić. Wg tej samej procedury za pomocą nowego sterylnego patyczka wymazowego należy pobrać wymaz z lewego nozdrza i umieścić w probówce, której znajduje się już wymaz z prawego nozdrza. Patrz Ryc. 2. Do próbówki należy dodać ok. 1-2 ml podłoża transportowego wirusologicznego, ewentualnie soli fizjologicznej lub PBS. Waciki i tylko waciki patyczków wymazowych muszą znajdować się w płynie transportowym. Nie stosować innych podłóż, np. bakteriologicznych (węgiel, agar itp.). Probówkę zakręcić i podpisać (identyfikacja pacjenta/próbki, data pobrania wymazów). W ten sposób w jednej probówce znajdują się dwa patyczki wymazowe (Fot. 1). Ryc. 2. Fot. 1. Str. 4/5

c. łączona próbka wymazu z gardła z wymazami z nosa wymazy z gardła i wymazy z obu nozdrzy należy pobrać zgodnie z opisem w pkt. 2.2.2.a i 2.2.2.b. Wszystkie trzy patyczki wymazowe (wymaz z gardła, wymaz z prawego nozdrza, wymaz z lewego nozdrza) umieścić w jednej próbówce, do której dodać ok. 1-2 ml podłoża transportowego wirusologicznego, ewentualnie soli fizjologicznej lub PBS. Waciki i tylko waciki patyczków wymazowych muszą znajdować się w płynie transportowym. Nie stosować innych podłóż, np. bakteriologicznych (węgiel, agar itp.). Probówkę zakręcić i podpisać (identyfikacja pacjenta/próbki, data pobrania wymazów). W ten sposób w jednej W ten sposób w jednej probówce znajdują się dwa patyczki wymazowe probówce znajdują się trzy patyczki wymazowe. 2.3. Aspirat i popłuczyny z nosogardzieli, popłuczyny z nosa, popłuczyny z drzewa oskrzelowego, płyn mózgowo-rdzeniowy (Poz. 2, Poz. 3, Poz. 8, Poz. 10 Cennika) Każdy z wyżej wymienionych materiałów do badań w objętości 1 ml 2 ml w jałowej zamkniętej probówce należy przechowywać i transportować w pozycji pionowej w temp. chłodni (5±3 C) i dostarczyć do laboratorium tak szybko jak jest to możliwe, najlepiej w ciągu 24 godz. od chwili pobrania, a jeśli to jest niemożliwe to zamrozić w temp. -70 C lub niższej. 2.4. Wysięk z ucha środkowego (Poz. 2, Poz. 3, Poz. 8, Poz. 10 Cennika) Próbkę wysięku z ucha środkowego w jałowej zamkniętej probówce należy przechowywać i transportować w pozycji pionowej w temp. chłodni (5±3 C) i dostarczyć do laboratorium tak szybko jak jest to możliwe, najlepiej w ciągu 24 godz. od chwili pobrania, a jeśli to jest niemożliwe to zamrozić w temp. -70 C lub niższej. 3. Miejsce dostarczenia próbek do badań Materiały należy przesyłać na adres: ZAKŁAD BADANIA WIRUSÓW GRYPY. KRAJOWY OŚRODEK DS. GRYPY NARODOWY INSTYTUT ZDROWIA PUBLICZNEGO PAŃSTWOWY ZAKŁAD HIGIENY UL. CHOCIMSKA 24 00-791 WARSZAWA UWAGA: Należy wyraźnie zaznaczyć adresata próbek, tj. ZAKŁAD BADANIA WIRUSÓW GRYPY. KRAJOWY OŚRODEK DS. GRYPY. W przeciwnym razie materiał może zostać dostarczony do niewłaściwej pracowni oraz być przechowywany w niewłaściwych warunkach. 4. Dodatkowe informacje W razie jakichkolwiek wątpliwości i pytań, dotyczących rodzaju materiału do badań, jego wymaganej objętości, sposobu pobrania, przechowywania, opakowania i transportowania oraz czasu oczekiwania na wynik badania prosimy o kontakt z Zakładem Badania Wirusów Grypy. Krajowym Ośrodkiem ds. Grypy w NIZP-PZH: tel. (22) 54 21 274, (22) 54 21 413, faks (22) 54 21 294. Str. 5/5