ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

Podobne dokumenty
ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II. OznaczanieBTEX i n-alkanów w wodzie zanieczyszczonej benzyną metodą GC/FID oraz GC/MS 1

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Rys. 1. Chromatogram i sposób pomiaru podstawowych wielkości chromatograficznych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

1.Wstęp. Ćwiczenie nr 9 Zatężanie z wody związków organicznych techniką SPE (solid phase extraction)

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

BADANIE ZAWARTOŚCI WIELOPIERŚCIENIOWYCH WĘGLOWODORÓW AROMATYCZNYCH (OZNACZANIE ANTRACENU W PRÓBKACH GLEBY).

PORÓWNANIE FAZ STACJONARNYCH STOSOWANYCH W HPLC

CHEMIA ŚRODOWISKA - laboratorium ĆWICZENIE 6. OZNACZANIE ŚLADOWYCH ILOŚCI FENOLU W WODACH POWIERZCHNIOWYCH

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Analityka Zanieczyszczeń Środowiska

ANALITYKA ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA ROK V SEM. IX

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

4-5. Opracowanie metody oznaczania patuliny w soku jabłkowym PRACOWNIA DYPLOMOWAIII ROK AGROCHEMII. Ćwiczenie

ZASTOSOWANIE CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ W BIOTECHNOLOGII ŚRODOWISKOWEJ

Ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

Ćwiczenie 4 Zastosowanie metody wzorca wewnętrznego do analizy ilościowej techniką GC-FID

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

EKSTRAKCJA DO FAZY STAŁEJ (SPE)

OZNACZANIE WYBRANYCH FARMACEUTYKÓW W PRÓBACH WODY.

Oznaczanie wybranych farmaceutyków w próbach wody

Chromatografia kolumnowa planarna

Ćwiczenie 1 Analiza jakościowa w chromatografii gazowej Wstęp

Oznaczanie lekkich węglowodorów w powietrzu atmosferycznym

Ćwiczenie nr 1. Ekstrakcja i oznaczanie fenolu metodą SPE (solid phase extraction) z detekcją UV-Vis

Bifenylo-4-amina. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE. mgr inż. ANNA JEŻEWSKA 1 prof. dr hab. BOGUSŁAW BUSZEWSKI 2 1 Centralny Instytut Ochrony Pracy

EKSTRAKCJA W ANALITYCE. Anna Leśniewicz

Prof. dr hab. inż. M. Kamiński 2006/7 Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny PG. Ćwiczenie: LC / GC. Instrukcja ogólna

Adsorpcyjne oczyszczanie gazów z zanieczyszczeń związkami organicznymi

GraŜyna Chwatko Zakład Chemii Środowiska

Jakościowa i ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką chromatografii gazowej

ROZDZIELENIE OD PODSTAW czyli wszystko (?) O KOLUMNIE CHROMATOGRAFICZNEJ

4,4 -Metylenodianilina

3. Jak zmienią się właściwości żelu krzemionkowego jako fazy stacjonarnej, jeśli zwiążemy go chemicznie z grupą n-oktadecylodimetylosililową?

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 5

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Numer CAS: o C (101,3 kpa)

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 2

Jakościowe i ilościowe oznaczanie alkoholi techniką chromatografii gazowej

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 2

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

OZNACZANIE TOKSYN SINICOWYCH W WODZIE METODĄ SPE-HPLC

Paration metylowy metoda oznaczania

Ćw. 5 Oznaczanie węglowodorów lekkich w powietrzu atmosferycznym

1. Wiadomości ogólne dotyczące pestycydów

Instrukcja ćwiczenia laboratoryjnego HPLC-2 Nowoczesne techniki analityczne

CHROMATOGRAFIA W UKŁADACH FAZ ODWRÓCONYCH RP-HPLC

NH 2. Numer CAS:

RP WPROWADZENIE. M. Kamiński PG WCh Gdańsk Układy faz odwróconych RP-HPLC, RP-TLC gdy:

2-(Dietyloamino)etanol

Ćwiczenie 6 Zastosowanie destylacji z parą wodną oraz ekstrakcji ciecz-ciecz do izolacji eugenolu z goździków Wstęp

IZOLACJA WIELOPIERŚCIENIOWYCH WĘGLOWODORÓW AROMATYCZNYCH (WWA) Z GLEBY

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

Lotne związki organiczne

Fenol, o-, m- i p-krezol metoda oznaczania

2-Metylonaftalen. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Adypinian 2-dietyloheksylu

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

GRAWITACYJNE ZAGĘSZCZANIE OSADÓW

CHROMATOGRAFIA II 18. ANALIZA ILOŚCIOWA METODĄ KALIBRACJI

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 3

EKSTRAKCJA I CHROMATOGRAFIA

1,3-Dichloropropan-2-ol

RP WPROWADZENIE. M. Kamioski PG WCh Gdaosk 2013

Naftalen metoda oznaczenia

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 5, 4 dodr. Warszawa, 2015.

Oznaczanie herbicydów z grupy triazyn z zastosowaniem techniki HPLC

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Chromatogramy Załącznik do instrukcji z Technik Rozdzielania Mieszanin

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Nitroetan UWAGI WSTĘPNE. Nitroetan jest bezbarwną oleistą cieczą o charakterystycznym,

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

CH 2 BrCl. Numer CAS:

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

2-Toliloamina metoda oznaczania

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

1,4-Dioksan metoda oznaczania

Kolumnowa Chromatografia Cieczowa I. 1. Czym różni się (z punktu widzenia użytkownika) chromatografia gazowa od chromatografii cieczowej?

Numer CAS: formamid, analiza powietrza, stanowisko pracy, chromatografia gazowa. formamide, air analysis, workplace, gas chromatography.

Dichlorometan. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

CHROMATOGRAFIA ADSORPCYJNA I PODZIAŁOWA. 1. Rozdział barwników roślinnych metodą chromatografii adsorpcyjnej (techniką kolumnową)

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

2-Metyloazirydyna. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

Glifosat. Numer CAS:

Transkrypt:

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II Ćwiczenie 2 Zastosowanie ekstrakcji do fazy stałej (Solid Phase Extraction, SPE) do wydzielenia frakcji wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych (WWA) z wody i oznaczanie ich techniką chromatografii gazowej (GC/FID) 1. Wprowadzenie Wielopierścieniowe węglowodory aromatyczne, powstające z materiału organicznego przez pirolizę lub niepełne spalanie, emitowane są do środowiska naturalnego z różnych źródeł. Występują one w środowisku naturalnym w niewielkim stężeniu, jednak ze względu na toksyczne a nawet rakotwórcze działanie niektórych, wymagane jest oznaczanie ich, zwłaszcza w wodzie pitnej. Występowanie WWA w śladowych ilościach (stężenia na poziomie ppb lub ppm) wymaga stosowania selektywnych metod izolacji i zatężania oraz technik oznaczania charakteryzujących się dużą czułością. Takie wymagania spełnia metoda zatężania za pomocą ekstrakcji do fazy stałej oraz analiza metodami chromatografii cieczowej lub kapilarnej chromatografii gazowej. Rozwój techniki przygotowania próbek poprzez ekstrakcję do fazy stałej nastąpił po pojawieniu się łatwo dostępnych i trwałych sorbentów o różnorodnych właściwościach chemicznych. Szczególne znaczenie ma zastosowanie krzemionki jako nośnika różnych grup funkcyjnych. Zmodyfikowanie powierzchni żelu krzemionkowego poprzez zastąpienie wolnych grup SiOH grupą cyjanową (CN), aminową (NH2) czy diolową (COHCOH) powoduje zmniejszenie siły oddziaływań silnie polarnych związków z krzemionką i umożliwia ich ekstrakcję. Ten typ sorbentów nosi nazwę faz normalnych (NP). Zastąpienie grup silanolowch

2 P grupami oktylowymi (C-8), oktadecylowymi (C-18) czy alkilofenylowymi (R-C6H5) sprawia, że krzemionka staje się sorbentem niepolarnym i nosi nazwę faz odwróconych (RP). W tym przypadku powstają silne, ale odwracalne oddziaływania niepolarnych lub słabo polarnych substancji ze zmodyfikowaną powierzchnią krzemionki, co umożliwia ich ekstrakcję z polarnego rozpuszczalnika. Metoda ekstrakcji do fazy stałej znalazła szerokie zastosowanie, zwłaszcza do izolowania substancji organicznych z roztworów wodnych. Do ekstrakcji WWA z wody stosowane są z powodzeniem niepolarne fazy oktadecylowe (C-18), same lub w połączeniu z polarnymi, np. aminopropylową. Zatężanie analitu z wody metodą ekstrakcji do fazy stałej z zastosowaniem odwróconych faz C-18 obejmuje kilka etapów. Pierwszy etap to przemycie kolumienki wraz z wypełnieniem rozpuszczalnikami mającymi wartość eluotropową większą niż stosowane eluenty. Usuwa się w ten sposób substancje (alkeny C16-C24, alkiloftalany, alkany, silanole, siloksany), które mogą się wyekstrahować z gotowych kolumienek, a których ilość zależy od producenta. Związki silanolowe są wynikiem hydrolizy wiązania między grupami silanolowymi a podstawnikami modyfikującymi krzemionkę, dlatego należy bezwzględnie unikać stosowania eluentów mogących ją powodować. Objętość rozpuszczalników służących do przemywania kolumienek należy ustalić doświadczalnie, najczęściej zaleca się wstępne przemywanie rozpuszczalnikami stosowanymi do elucji w objętości 5-10 razy większej od masy wypełnienia. Następnym etapem jest kondycjonowanie (solwatacja) wypełnienia kolumienki (złoża sorbentu) polegające na przygotowaniu powierzchni sorbentu do efektywnej izolacji i wzbogacania analitów z wody. Żel krzemionkowy modyfikowany fazą oktadecylową ma własności lipofilne (fazy RP nie są zwilżane wodą), dlatego złoże najpierw przemywa się metanolem lub 2-propanolem a następnie mieszaniną wody i 2-propanolu. Do kondycjonowania stosuje się zwykle 5 10 objętości pustych używanej kolumienki (1 objętość pusta = 1,0 1,2 µl/mg sorbentu). W trakcie kondycjonowania łańcuchy węglowodorowe ulegają wyprostowaniu oddalając się od powierzchni sorbentu, tworząc tzw. szczotkę o znacznie powiększonej powierzchni aktywnej. Ważne jest użycie do kondycjonowania rozpuszczalnika o właściwościach najbardziej zbliżonych do właściwości matrycy badanej próbki (wody dejonizowanej dla próbek wodnych) oraz utrzymywanie sorbentu w pełni pokrytego rozpuszczalnikiem do momentu naniesienia próbki. Kolejnym etapem jest naniesienie na kolumienkę próbki wody. Jeśli próbka zawiera zawiesiny, przed naniesieniem należy ją odwirować lub przesączyć aby uniknąć zatkania filtru wlotowego kolumienki. Badaną wodę nanosi się z dodatkiem 1-5% metanolu lub 5 15%

3 P 2-propanolu. Dodatek alkoholu do wody badanej powoduje, że powierzchnia sorbentu jest aktywna (łańcuchy węglowodorowe wyprostowane) podczas wszystkich etapów zagęszczania (dynamiczna solwatacja), co umożliwia przepuszczenie przez kolumnę większej objętości próbki bez przebicia (przekroczenia pojemności sorpcyjnej) złoża oraz zmniejsza adsorpcję analitów na ściankach kolumienki. Roztwory wodne zawierające analit przepuszcza się przez kolumienkę z szybkością 1 25 cm 3 /min przy stosowaniu odpowiedniego podciśnienia (pompka wodna) lub nadciśnienia (sprężony gaz obojętny). Kolejny etap obejmuje usunięcie z przestrzeni między cząstkami sorbentu oraz z wnętrza jego porów substancji niezwiązanych przez przemycie czystym rozpuszczalnikiem, w którym znajdował się analit. Można zastosować inne rozpuszczalniki, o sile eluotropowej większej, jeśli nie spowodują wymycia analitu. W ten sposób usuwa się ewentualne interferenty pochodzące z matrycy, co zwiększa czystość frakcji analizowanej. Resztki rozpuszczalnika przemywającego usuwa się przez suszenie strumieniem powietrza (zasysanym przez pompkę wodną). Czas suszenia zależy od lotności rozpuszczalnika i masy sorbentu i wynosi od 1 20 minut. W przypadku rozpuszczalników wysokowrzących (w tym wody) suszenie przy użyciu podciśnienia może być niewystarczające i powinno go poprzedzić wirowanie. Odwirowanie rozpuszczalnika należy stosować, gdy mamy do czynienia z analitami lotnymi lub łatwo ulegającymi utlenieniu. Przy nielotnych analitach można zastosować również liofilizację. Elucja analitów wymaga rozpoznania pochodzenia próbki, potencjalnych substancji przeszkadzających (interferentów) i właściwości fizyko-chemicznych oznaczanych substancji. Dobór rozpuszczalnika do elucji zależy od miejsca rozpuszczalnika w szeregu eluotropowym w stosunku do analitu, rodzaju fazy stałej oraz potrzeb związanych z kolejnymi etapami procedury oznaczania (np. lotność, możliwość zastosowania detektora spektrofotometrycznego UV/Vis). W przypadku ekstrakcji WWA z wody z zastosowaniem niepolarnych faz oktadecylowych (C-18) najczęściej stosuje się elucję takimi rozpuszczalnikami, jak: dichlorometan, pentan, heksan, aceton, octan etylu, acetonitryl lub ich mieszaninami (zawsze pierwszą porcję rozpuszczalnika wprowadza się bez użycia podciśnienia, pozwalając jej wsiąknąć w złoże). Można też wymywać substancje kolejno różnymi rozpuszczalnikami, różniącymi się siłą elucyjną - ekstrakcja sekwencyjna. Efektywność zagęszczania metodą SPE wyraża się współczynnikiem wzbogacenia analitu k, opisanego wzorem k = VW/VE gdzie: VW - objętość wody przepuszczona przez sorbent, VE - objętość eluentu użyta do wymycia analitów. Wzrost wartości współczynnika można osiągnąć przez zwiększenie objętości wody przepuszczanej przez sorbent lub przez zmniejszenie objętości eluentu. Zmniejszenie objętości

4 P eluentu wiąże się z użyciem mniejszej ilości sorbentu. Użycie eluentu o większej sile wymywania też prowadzi do zmniejszenia jego objętości, ale może się wiązać z wymyciem interferentów. W warunkach optymalnych wartość odzysku wyrażonego w % dla 16 WWA po zagęszczeniu i desorpcji z fazy RP wynosi ok. 90% przy współczynniku wzbogacenia 1000 dla próbek o objętości 0,5 do 1,0 dm 3 wody. Na rysunku przedstawiono zestaw do ekstrakcji do fazy stałej z zastosowaniem próżni z pompki wodnej. 2. Wykonanie ćwiczenia 2.1. Cel ćwiczenia Celem ćwiczenia jest wyizolowanie frakcji wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych (WWA) z próbki wody metodą ekstrakcji do fazy stałej (SPE) a następnie oznaczenie ich zawartości w wodzie metodą wzorca wewnętrznego i techniką chromatografii gazowej z detektorem płomieniowo-jonizacyjnym (GC/FID).

5 P 2.2. Przygotowanie próbki do ekstrakcji 250 cm 3 badanej wody umieścić w kolbie stożkowej o pojemności 500 cm 3, dodać 2,5 cm 3 roztworu wzorca wewnętrznego 9-metyloantracenu o stężeniu 128 g/cm 3 i zawartość kolby wymieszać. 2.3. Kondycjonowanie kolumienki SPE C-18 Kolumienkę C-18 podłączyć do odbieralnika (rys.1), przemyć 3 cm 3 metanolu następnie 2 razy po 3 cm 3 mieszaniny woda - metanol (9:1,v:v). Kolumienkę należy kondycjonować powoli, nie dopuszczając do wysuszenia złoża. Należy pamiętać, że warstwa sorbentu przed naniesieniem próbki musi być pokryta rozpuszczalnikiem! 2.4. Wprowadzenie próbki na kolumienkę i ekstrakcja Na przygotowaną kolumienkę wprowadzić bez użycia próżni 2-3 cm 3 próbki, podłączyć kolumienkę do zbiornika i powoli, unikając zapowietrzania wlać do zbiornika resztę próbki wody. Próbkę przepuszczać przez kolumienkę z prędkością 5-10 cm 3 /min, używając podciśnienia z pompki wodnej. 2.5. Przemycie kolumienki i suszenie Przepuścić powoli przez kolumienkę 3 cm 3 mieszaniny metanolu i wody dejonizowanej (1:1,v:v) a następnie suszyć pod próżnią 15-20 min. 2.6. Wymywanie frakcji WWA Odłączyć kolumienkę od zestawu, umieścić jej wylot w naczynku, do którego będzie zbierany eluat i całość umieścić w zlewce dla zabezpieczenia przed przewróceniem. Wprowadzić na kolumnę 2 razy po 500 µl dichlorometanu, przy czym pierwszej porcji pozwolić powoli wsiąknąć w złoże. Eluat w naczynku przenieść pod zestaw do odparowywania w strumieniu azotu i zatężyć do ok. 100 µl (lub według wskazówek prowadzącego). Po zebraniu eluatu kolumienkę ponownie umieścić w zestawie (bez zbiornika na próbkę) i przemyć 4 razy po 500 µl dichlorometanu a następnie 2 razy po 3 cm 3 metanolu, stosując niewielkie podciśnienie i wysuszyć. 2.7. Analiza właściwa WWA Wydzieloną i zatężoną frakcję WWA analizować techniką chromatografii gazowej. Warunki rozdziału: chromatograf gazowy z detektorem FID

6 P kolumna kapilarna RTX-5; 30 m; 0,25 mm średnica wewnętrzna; 0,25 µm grubość filmu fazy ciekłej; początkowa temp. kolumny 50ºC, narost 6ºC/min do 300ºC; 10 min izotermicznie w 300ºC temperatura dozownika 320ºC; temperatura detektora 320ºC, czułość (range) 1 10-1 ; gaz nośny Ar, stały przepływ 1 ml/min, spliter 1:50 2.8. Obliczenie zawartości WWA w wodzie i sporządzenie sprawozdania Należy obliczyć zawartości poszczególnych WWA oraz ich sumę w badanej próbie wody (w µg/dm 3 ) i porównać je ze standardami jakości wody. Wyniki umieścić w sprawozdaniu, w którym powinno się znajdować: zwięzły opis zastosowanych do izolacji WWA technik chromatograficznych i metody ilościowej, opis próbki, schemat blokowy, ideowy wykonania oznaczenia, wyniki, porównanie ze standardami wody, wnioski, na osobnej stronie przykłady obliczeń zawartości analitów. 2.9. Zakres wymaganych wiadomości etapy procesu analitycznego, pobieranie próbek do analizy, przygotowanie próbek do analizy, chromatografia gazowa, podstawowe pojęcia i definicje, ekstrakcja do fazy stałej, metoda wzorca wewnętrznego, WWA. Literatura 1. Szczepaniak W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej. W-wa, PWN, 1996. 2. Minczewski J., Marczenko Z., Chemia analityczna. W-wa, PWN, 1985, tom 3. 3. Ewing G. W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej. W-wa, PWN, 1980. 4. Kocjan R. Chemia analityczna, podręcznik dla studentów, W-wa, PZWL, 2000, tom 2.

7 P Odczynniki i sprzęt laboratoryjny zestaw do SPE: kolumienka cylindry miarowe o poj. 10 cm 3-3 CHROMABOND C-18, 6 cm 3 /500 szt., 250 cm 3-1 szt., mg, kolba ssawkowa o poj. 500 cm 3, zbiornik na wodę badaną o poj. ok 300 pipeta o poj. 5 cm 3-3 szt., o poj. 1 cm 3-1 szt., o poj. 0,1 cm 3-1 szt., cm 3, łącznik kolumienki z kolbą lejek szklany, ssawkową, pompka wodna, statyw; kolbki stożkowe o poj. 25 cm 3-3 szt., metanol destylowany, naczynko zakręcane o poj. 2 cm 3, dichlorometan destylowany, mikrostrzykawka o poj. 10 µl metanol do mycia, chlorek metylenu do mycia strzykawki woda dejonizowana, V = 25 ml kolba stożkowa o poj. 500 cm 3 z korkiem, kolbka miarowa o poj. 10 cm 3, Tabela 1. Lista WWA, które mogą występować w badanej próbce wody Nazwa Wzór Masa cząsteczkowa naftalen 128.17 fenantren 178.23 antracen 178.23 fluoranten 202.25 perylen 252.31 9-metyloantracen (wzorzec wewnętrzny) 192.26