Piotr Jan Korzeniowski Międzynarodowy Instytut Biologii Molekularnej i Komórkowej w Warszawie
Przedstawiciel rodziny Cyprynidae zamieszkujący wody płynące i rozlewiskowe Indii, Pakistanu i Nepalu. Engeszer et al., (2007) ZEBRAFISH, vol 4: 20-40
Małe rozmiary ciała i łatwość utrzymania w warunkach laboratoryjnych Krótki cykl rozwojowy Transparentność stadiów larwalnych Zsekwencjonowany genom Podobieństwo genomu do genomu człowieka Kwestie legislacyjne http://www.mun.ca/biology/desmid/brian/biol3530/devo_03/ch03f09.jpg
Linie formy dzikiej WT (wild type) Ryby z określonymi mutacjami Linie transgeniczne
lata 2012 2010 2008 2006 2004 2002 2000 1998 1996 1994 1992 1990 1988 1986 1984 1982 1980 1978 1976 1974 1972 1970 1968 1965 1962 1955 0 500 1000 1500 2000 2500 2012 otwarcie European Zebrafish Resource Center (EZRC) w Niemczech 2001- sklonowanie pierwszej mutacji, otwarcie Zebrafish Interantional Stock Center (ZIRC) w USA 1998 - sekwencjonowanie genomu Sanger w UK 1996 - pierwsze kolekcje mutantów No. publikacji
Badania z zakresu rozwoju kręgowców Badania onkologiczne Badania neurologiczne i neuropatologiczne Badania biochemiczne Badanie behawioralne Badania farmakodynamiczne Badania toksykologiczne Badania z zakresu kontroli środowiska
Wizualizacja osteoblastów
gfp/rfp ryba
Parametry wody: - ph 6,9-7,5 - przewodnictwo 650-900 µs - TwO 7-12 stopni - TwW 4-8 stopni - NO 2-0,0-0,1 mg na litr - NH 4 /NH 3 + 0,0 mg na litr - NO 3-1-5 mg na litr - temp. 25-28 C Cykl świetlny - dzień 14h,noc 10h Żywienie - karmienie 4-5 razy dziennie (pokarmy suche SDS, Zigler, Gemma), Spirulina platensis, Artemia salina - hodowla własna, pantofelek - do karmienia narybku, hodowany w laboratorium Wymiana wody 10-25% objętości na dobę w zależności od obsady i częstości karmienia
Elektroniczna kontrola parametrów wody zgodnie z zadanym programem Wydajny system filtracji mechanicznej i biologicznej oraz automatyczna wymiana wody Całkowite uniezależnienie się od złej jakości wody wodociągowej (system przygotowuje wodę na bazie wody RO z dodanymi roztworami soli) System powiadomień i alarmów zwiększający bezpieczeństwo hodowli
Tarła indywidualne (jedna samica, jeden samiec) Tarła zbiorowe (jeżeli to możliwe z przewagą liczebną samców) Pobieranie ikry i nasienia Zabezpieczenie ikry przed zjadaniem przez tarlaki (ruszty i siatki) Inkubacja ikry na szalkach Petriego w roztworze E3 w cieplarkach, w temp. 28,5 C
Kwarantanna wszystkich ryb sprowadzanych do hodowli Codzienna wielokrotna obserwacja ryb w hodowli Izolacja osobników wykazujących objawy chorobowe i szybka diagnostyka Okresowe badania w kierunku typowych patogenów dla Danio rerio Sterylizacja ikry pochodzącej od ryb z kwarantanny Badanie mikroskopowe i mikrobiologiczne osadów Kontrola parametrów środowiska i jakości żywienia
Obecnie choroby wirusowe nie stanowią dużego zagrożenia dla hodowli laboratoryjnych Danio rerio. Danio pręgowany wykazuje jednak wysoką wrażliwość na zakażenie wirusem martwicowego zapalenia śledziony i nerki Infectious Spleen and Kidney Necrosis Virus.
Mykobakterioza- M.marinum, M.chelonae, M.fortuitum, M.haemophilus, M.peregrinum Pseudomonas spp./aeromonas spp. Flavobacterium columnare, Flavobacterium branchiophilum Edwardsiella spp. Proteus spp. Vibrio spp.
Saprolegnia spp.-nie stanowi zagrożenia w hodowlach laboratoryjnych D.rerio. Zakażenia tego typu stwierdzano jako powikłanie chorób bakteryjnych i przy bardzo złych warunkach środowiskowych. Branchiomyces spp.-infekcje przebiegające z objawami duszności.
Pseudoloma neurophilia (Microsporidia) Pleistophora hyphessobriconis (Microsporidia) Myxidium sp.(myxozoa)/zschokkella Piscinoodinium pillulare (Dinoflagellata) Ichthyophthirius multifiliis Ichthyobodo necatrix (Costia) Capillaria sp.(pseudocapilaria tomentosa) Dactylogyrus spp.(monogenea) Gyrodactylus spp.(monogenea)
29 linii D.rerio (WT, mutanty, transgeniki)- łącznie ponad 6000 ryb. Zestawy do hodowli typu stand alone i multi linking z własną stacją uzdatniania wody (w realizacji dwa kolejne pomieszczenia z zestawami hodowlanymi). 5 stanowisk do mikromanipulacji (nastrzykiwanie i transplantacja) Mikroskopy stereoskopowe świetlne i fluorescencyjne 4 inkubatory Apratura do wytwarzania mikroigieł
Koordynator Projektu: Prof. Jacek Kuźnicki Zastępca Dyrektora ds. naukowych: Prof. Michał Witt Menadżer Projektu: Dr Urszula Białek Wyrzykowska Czas trwania projektu: 01.12.2012 31.05.2016 http://www.fishmed.iimcb.gov.pl